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Tecniche Biologiche
0 visualizzazioni • 3:35 min • July 8th, 2025
Il CD95 – un recettore di morte – si lega ai suoi anticorpi agonisti, innescando l'assemblaggio di un complesso di segnalazione che induce la morte, o DISC – un complesso multiproteico che recluta la procaspasi 8. Al DISC, la procaspasi 8 dimerizza e si elabora per formare vari prodotti intermedi di scissione e, infine, una forma attiva che avvia l'apoptosi.
Per analizzare il processamento della caspasi-otto mediante western blotting chemiluminescente, prendere in una provetta un lisato contenente prodotti intermedi di scissione della caspasi 8 associati a DISC. Integralo con anticorpi anti-CD95 catturati da perle di proteina A-agarosio. Gli anticorpi anti-CD95 si legano al componente DISC, il CD95, formando complessi proteici.
Caricare il campione su un gel di poliacrilammide SDS per separare gli intermedi della caspasi immunoprecipitata 8 di diverse dimensioni in bande distinte. Posizionare il gel su una membrana assorbente e applicare una corrente elettrica. Gli intermedi della caspasi 8 escono dal gel sulla membrana assorbente.
Trattare la membrana con una soluzione contenente proteine bloccanti per saturare i siti di legame delle proteine, prevenendo legami non specifici.
Aggiungere una soluzione di anticorpi primari, che si legano ai prodotti della caspasi-otto in un sito specifico.
Aggiungere anticorpi secondari marcati con enzimi che si legano specificamente alla regione Fc complementare dell'anticorpo primario per formare un complesso di scissione caspasi-otto prodotto-anticorpo primario-anticorpo secondario.
Aggiungere un substrato chemiluminescente che reagisce con l'enzima secondario coniugato con anticorpi ed emette luce. L'intensità della luce emessa è correlata alla quantità di prodotto di scissione della caspasi-otto.
Per eseguire il western blot, aggiungere 20 microlitri di tampone di caricamento 4X alle perle e riscaldare a 95 gradi Celsius per 10 minuti. Contemporaneamente, riscaldare i controlli del lisato a 95 gradi Celsius per 5 minuti. Caricare i lisati, gli immunoprecipitanti e uno standard proteico su un gel SDS al 12,5% e far funzionare con una tensione costante di 80 volt.
Al termine della corsa del gel, trasferire le proteine dal gel SDS a una membrana di nitrocellulosa. Al termine del trasferimento, posizionare la membrana tamponata in una scatola e incubarla per un'ora in soluzione bloccante, agitandola delicatamente. Quindi, lavare la membrana tre volte per 5 minuti con PBST.
Per rilevare le proteine, aggiungere il primo anticorpo primario alla diluizione indicata alla membrana e incubarlo per una notte a 4 gradi Celsius con una leggera agitazione. Il giorno successivo, lavare la membrana con tre lavaggi PBST di 5 minuti, quindi incubare la membrana con 20 millilitri di anticorpo secondario agitando delicatamente per 1 ora a temperatura ambiente.
Lavare nuovamente la membrana tre volte con PBST. Dopo aver eliminato l'ultimo lavaggio PBST, aggiungere circa 1 millilitro di substrato di perossido di rafano alla membrana e rilevare il segnale chemioluminescente.
In questo articolo si discute il ruolo di CD95 nell'apoptosi attraverso la formazione di un complesso di segnalazione inducente la morte (DISC). Vengono descritte nel dettaglio le procedure per analizzare l'elaborazione della caspasi-8 mediante immunoblotting chemiluminescente.
Il blotting western chemiluminescente di lisati immunoprecipitati consente una quantificazione precisa degli eventi di processamento proteico centrali alla segnalazione dell'apoptosi. Questa capacità è fondamentale per la validazione degli bersagli e la riduzione del rischio meccanicistico nella fase iniziale della scoperta, in particolare quando si analizzano vie recettoriali della morte cellulare come l'apoptosi mediata da CD95. Il metodo supporta un'elevata affidabilità predittiva in punti critici della pipeline di scoperta, fornendo letture quantitative e riproducibili degli stati di attivazione delle proteine.
Questo saggio chemiluminescente di western blot si integra nel percorso dalla scoperta alla fase preclinica, supportando sia studi meccanicistici iniziali sia la validazione successiva di interventi mirati all'apoptosi.
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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026