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Per studiare specifiche interazioni proteina-proteina nei batteri vivi utilizzando la microscopia di imaging a fluorescenza, FLIM, combinato con il trasferimento di energia per risonanza di Förster, FRET, inizia con una sospensione batterica ricombinante. I batteri esprimono specifiche proteine citoplasmatiche coinvolte nelle vie metaboliche, marcate con proteine fluorescenti donatrici e accettori adatte per FRET.
Individuare la sospensione batterica su un tampone di agarosio, che immobilizza i batteri su un vetrino da microscopio. Posizionare un vetrino coprioggetti sul vetrino e sigillare.
Posizionare il vetrino sul tavolino di un microscopio a scansione invertita a due fotoni per microscopia FLIM-FRET. Utilizzare una lampada a fluorescenza per selezionare e scansionare una regione di interesse sul monostrato batterico.
L'interazione tra le proteine citoplasmatiche espresse avvicina le proteine fluorescenti donatrici e accettori con un orientamento appropriato. Dopo l'illuminazione laser con una lunghezza d'onda adeguata, la proteina fluorescente del donatore si eccita.
La stretta vicinanza delle proteine fluorescenti innesca FRET, portando al trasferimento di energia non radiativa dal donatore all'accettore, che si eccita e alla fine ritorna allo stato fondamentale, emettendo fluorescenza.
Il trasferimento di energia non radiativa riduce il tempo impiegato dalla proteina fluorescente del donatore eccitato per tornare al suo stato fondamentale, il tempo di vita della fluorescenza del donatore, misurato da FLIM. La diminuzione del tempo medio di fluorescenza della proteina fluorescente del donatore grazie alla FRET conferma l'interazione proteina-proteina nei batteri.
Posizionare un vetrino da microscopio su una superficie piana orizzontale e disporre due vetrini sormontati da due strati di nastro adesivo attorno ad esso. Pipettare una goccia da 70 microlitri di agarosio fuso all'1% sul vetrino e posizionare un quarto vetrino sopra per appiattire la gocciolina di agarosio. Premere delicatamente per circa un minuto.
Togli il vetrino superiore e rilascia circa tre microlitri di batteri in tre o quattro punti in punti diversi sul cuscinetto di agarosio. Coprire il tampone di agarosio con un vetrino coprioggetti per microscopia e fissarlo con paraffina fusa per sigillarlo sul vetrino, iniziando dai quattro angoli.
Posizionare il vetrino per microscopia sul tavolino, con il vetrino coprioggetti rivolto verso l'obiettivo. Ruotare la torretta del cubo del filtro per selezionare il cubo eGFP e aprire l'otturatore della lampada a fluorescenza. Quindi, inviare la luce a fluorescenza verso l'oculare del microscopio. Focalizzare l'obiettivo sui batteri utilizzando la manopola del microscopio.
Selezionare una regione di interesse nel campione utilizzando il joystick che controlla il tavolino motorizzato. Inviare il percorso di emissione della fluorescenza verso il rivelatore, quindi ruotare indietro la torretta del cubo del filtro per selezionare il cubo dicroico per il laser a 930 nanometri e impostare la potenza del laser su 20 milliwatt. Imposta la dimensione della regione di interesse a 30 micrometri, che regola la tensione che aziona i galvo-specchi e definisce la gamma dei loro movimenti.
Accendere il rilevatore e avviare la scansione del campione. Scegli il campo visivo per l'imaging, spostando infine il tavolino dall'interfaccia del computer. Questo può essere fatto sulla configurazione spostando la croce sull'immagine nel software di controllo del microscopio che definirà il nuovo centro dell'immagine e premendo "Sposta tavolino".
Un buon campo visivo per l'acquisizione dovrebbe contenere da 10 a 30 batteri immobili, tutti a fuoco. Se siete interessati a estrarre i dati FLIM-FRET di singole cellule, assicuratevi che i batteri siano ben individualizzati.