JoVE Encyclopedia of Experiments
Tecniche Biologiche
0 visualizzazioni • 3:36 min • July 8th, 2025
Per studiare l'interazione tra una proteina legante i fosfolipidi e un doppio strato lipidico attraverso la microgravimetria dissipativa, prendere una microbilancia con un sensore al quarzo. Dopo l'applicazione di una tensione adeguata, lo strato di quarzo, inserito tra due elettrodi metallici, oscilla a una frequenza specifica.
Aggiungere una sospensione di piccole vescicole unilamellari, costituite da un singolo doppio strato lipidico, sul sensore. Le vescicole si adsorbono sulla superficie idrofila rivestita di silice, aumentando la massa del sensore e diminuendo proporzionalmente la sua frequenza di oscillazione.
Le vescicole riempite di tampone agiscono come uno strato viscoelastico, portando alla dissipazione, ovvero allo smorzamento dell'oscillazione. Le vescicole adsorbite si rompono, rilasciando il tampone racchiuso. La conseguente diminuzione della massa aumenta la frequenza di oscillazione.
Le vescicole rotte formano un doppio strato continuo, imitando una membrana biologica. La rigidità del doppio strato diminuisce la dissipazione.
Aggiungi un tampone contenente ioni calcio, insieme alla proteina bersaglio. Gli ioni calcio si legano alla proteina e ne modificano la conformazione, consentendo il legame con le molecole lipidiche nel doppio strato.
Il legame con le proteine aumenta la massa del sensore, portando a una diminuzione della frequenza. L'integrità strutturale del doppio strato rimane inalterata, causando solo un leggero aumento della dissipazione.
Aggiungere un agente chelante per chelare gli ioni calcio, dissociando le proteine dal doppio strato.
L'assenza di proteine legate riporta la frequenza e la dissipazione dell'oscillazione ai livelli non legati alle proteine, confermando che il legame è esclusivamente calcio-dipendente e che il doppio strato rimane intatto.
Agganciare con cura i sensori puliti al plasma alle quattro camere di flusso utilizzando una pinzetta. Evitare qualsiasi pressione o torsione delle camere e dei tubi che potrebbe causare perdite. Lavare il sistema con tampone citrato in modalità a flusso aperto per 10 minuti.
Avvia il programma. Iniziare a registrare eventuali cambiamenti nella frequenza e nella dissipazione del primo tono fondamentale e degli armonici utilizzando il software fino a quando le linee di base di frequenza e dissipazione non sono stabili.
Quando le linee di base sono stabili, applicare le sospensioni SUV in tampone citrato. Utilizzando un recipiente di reazione, rimuovere 1,5 millilitri del volume morto. Quindi, chiudere il sistema in modalità loop flow. Registrare lo spostamento di dissipazione di frequenza per altri 10 minuti.
Quando l'SLB è stabile, equilibrare il sistema con il tampone in esecuzione alle concentrazioni di calcio richieste in modalità a flusso aperto per 40 minuti. Aggiungi la proteina al tampone di corsa contenente calcio. Eseguire l'applicazione della proteina in modalità loop-flow fino al raggiungimento di uno stato stazionario di equilibrio.
Questo studio analizza l'interazione tra una proteina legante i fosfolipidi e un doppio strato lipidico mediante microgravimetria dissipativa. Il metodo prevede il monitoraggio delle variazioni di frequenza e dissipazione mentre le vescicole interagiscono con la superficie del sensore e la proteina bersaglio si lega al doppio strato lipidico.
La microgravimetria dissipativa consente il monitoraggio in tempo reale e senza etichette delle interazioni tra proteine e bicapte lipidiche, fornendo informazioni quantitative sulle cinetiche di legame e sulla stabilità della membrana. Questa capacità supporta la validazione del bersaglio confermando meccanismi di legame dipendenti dal calcio e valutando l'integrità della bicapa durante lo screening di composti. Il metodo agevola la riduzione del rischio meccanicistica nella fase iniziale della scoperta, fornendo dati riproducibili e complementari sull'interazione con il bersaglio in condizioni fisiologicamente rilevanti.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione della proteina bersaglio all'identificazione del composto attivo, fornendo una conferma ortogonale dell'interazione con la proteina bersaglio prima di procedere con saggi funzionali.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026