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Le
proteine di rimodellamento della cromatina ATP-dipendenti regolano l'espressione genica nella cromatina strettamente impacchettata alterando la conformazione del DNA in modo ATP-dipendente.
Per studiare le interazioni rimodellatore della cromatina-DNA utilizzando il dicroismo circolare, o spettroscopia CD, prendere una soluzione di oligonucleotidi di DNA a doppio filamento. Scaldare per denaturare gli oligonucleotidi e metterli sul ghiaccio.
Il raffreddamento rapido provoca la rinatura del DNA mentre forma strutture secondarie. La regione di transizione da doppio a singolo filamento fornisce un sito di legame ottimale per i rimodellatori della cromatina.
Aggiungi il DNA raffreddato a caldo in una cuvetta. Aggiungere un tampone contenente rimodellatore della cromatina ATP-dipendente, ATP e ioni magnesio.
Il rimodellatore si lega al DNA, seguito dal legame dell'ATP complessato con ioni magnesio alla proteina, attivandola. Il rimodellatore attivato idrolizza l'ATP, inducendo una conformazione stem-loop nel DNA.
Far passare la luce polarizzata circolarmente a sinistra e a destra, con una differenza di fase di 90°, attraverso il campione. Il DNA otticamente chirale assorbe la luce polarizzata circolarmente sinistra e destra in misura diversa.
L'assorbimento differenziale, chiamato dicroismo circolare, fa sì che la luce trasmessa sia polarizzata ellitticamente, che viene misurata come ellitticità. Due picchi positivi a specifiche lunghezze d'onda negli spettri CD confermano la struttura stem-loop.
Aggiungere EDTA per chelare gli ioni magnesio, inibendo l'attività dell'ATPasi.
Un cambiamento negli spettri CD dopo la chelazione - che mostra un picco negativo e un ampio picco positivo a lunghezze d'onda specifiche - indica l'interruzione della conformazione staminale-loop in assenza di idrolisi dell'ATP.
Raccogli gli spettri CD in cuvette di quarzo ad alta trasparenza. Utilizzare cuvette rettangolari o cilindriche. Per pulire le cuvette, lavarle più volte con acqua, quindi eseguire una scansione dell'acqua o del tampone nella cuvetta per verificare se è pulita.
Per le reazioni, utilizzare oligonucleotidi di DNA purificati con PAGE. Per un raffreddamento rapido, riscaldare il DNA a 94 gradi Celsius per 3 minuti sul blocco riscaldante e raffreddarlo immediatamente con ghiaccio. Per un raffreddamento lento, dopo aver riscaldato il DNA a 94 gradi Celsius per 3 minuti, lasciarlo raffreddare a temperatura ambiente a una velocità di 1 grado Celsius al minuto.
Per registrare gli spettri di base, impostare un totale di 5 reazioni di controllo, una per una, in provette da centrifuga da 1,5 millilitri. Mantenere il volume di reazione a 300 microlitri in tutte le reazioni.
Per registrare gli spettri CD, impostare un totale di cinque reazioni sperimentali una per una in provette da centrifuga da 1,5 millilitri.
Per registrare la scansione, accendere il gas e accendere lo spettrometro CD. Dopo 10-15 minuti, accendere la lampada, accendere il bagnomaria e impostare la temperatura del supporto a 37 gradi Celsius.
Quindi, apri il software dello spettro CD e imposta la temperatura a 37 gradi Celsius, l'intervallo di lunghezze d'onda da 180 a 300 nanometri, il tempo per punto a 0,5 secondi e il numero di scansione a 5. Quindi, fai clic su Pro-Data Viewer, crea un nuovo file e rinominalo con i dettagli dell'esperimento e la data.
Successivamente, miscelare le reazioni di base e sperimentali mediante pipettaggio e trasferire con cura le miscele di reazione una per una nella cuvetta, assicurandosi che non vi siano bolle d'aria.
Se si esegue un esperimento nel corso del tempo, incubare le reazioni a 37 gradi Celsius per il tempo richiesto. Quindi, fai la scansione. Aggiungere l'EDTA al tampone contenente il DNA, l'ATP, il magnesio e le proteine per fermare l'idrolisi dell'ATP. Per inibire completamente l'attività dell'ATPasi, aumentare la concentrazione di EDTA e il tempo di incubazione.
Sottrarre le linee di base dalle reazioni corrispondenti nel software e smussare i dati nel software dello spettro CD o nel software di tracciatura dei dati. Quindi, traccia un grafico della lunghezza d'onda rispetto all'ellitticità media dei residui e analizza i picchi.