$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Le cellule dendritiche plasmacitoidi, o pDC, sono cellule immunitarie che rispondono all'infezione producendo l'interferone citochina di tipo I.
Per generare pDC in vitro, assumere una sospensione di cellule progenitrici linfoidi comuni, o CLP, isolate dal midollo osseo di topo. I CLP possono differenziarsi in linfociti e cellule dendritiche.
Aggiungere la sospensione cellulare su uno strato di cellule alimentatrici - cellule stromali aderenti - irradiate con raggi gamma per inibire la proliferazione. Le cellule di alimentazione forniscono le citochine e il contatto cellula-cellula necessari per la differenziazione dei CLP.
Aggiungere un'adeguata concentrazione di ligando tirosin-chinasi 3 simile a Fms-like, o FL – una citochina bivalente che promuove lo sviluppo di pDC – e incubare.
I CLP migrano tra le cellule di alimentazione e proliferano per formare gruppi di cellule, chiamate aree di ciottoli.
Il FL nel mezzo si lega al recettore Flt3 - un recettore tirosin-chinasico - sui CLP. Il legame induce la dimerizzazione del recettore e l'autofosforilazione dei residui di tirosina sul dominio citoplasmatico.
Le proteine adattatrici citoplasmatiche si legano a questi residui e vengono fosforilate, trasducendo il segnale ai componenti di segnalazione a valle. La cascata di segnalazione provoca la differenziazione dei CLP in pDC - piccole cellule rotonde che crescono in sospensione - così come in cellule dendritiche convenzionali, o cDC - cellule aderenti più grandi a forma di fuso.
Raccogli le cellule. Aggiungere anticorpi contro i marcatori di superficie specifici per pDC e cDC. Analizzare le cellule utilizzando la citometria a flusso.
Le cellule positive per i marcatori specifici per la pDC e negative per i marcatori specifici per la cDC indicano il successo dello sviluppo della pDC.
Per analizzare i progenitori linfoidi comuni, o CLP, mediante citometria a flusso, quindi, Fc blocca le cellule con anti-CD16/32 per uno o due minuti, seguito dalla colorazione simultanea delle cellule con il cocktail di anticorpi appropriato.
Dopo 15 minuti in ghiaccio, lavare le celle in tre millilitri di tampone FACS e risospendere il pellet in 300 microlitri di tampone FACS fresco. Quindi, filtrare la sospensione cellulare attraverso un colino da 40 micrometri e selezionare immediatamente le cellule su un citometro a flusso utilizzando i filtri e le tensioni appropriati, raccogliendo le cellule di interesse in una provetta da 15 millilitri contenente 8 millilitri di RPMI completo.
Per generare una popolazione di pDC altamente arricchita, è fondamentale selezionare la giusta popolazione di CLP da cellule di midollo osseo raccolte per la coltura in vitro con sistema di alimentazione AC-6.
Alla fine della cernita, far girare le cellule e risospendere il pellet di cellule CLP con un RPMI completo sufficiente per ottenere una densità cellulare di circa 5 volte 10 per la quarta cella per millilitro. Successivamente, seminare 500 cellule per pozzetto nella piastra a 12 pozzetti contenente le cellule di alimentazione AC-6 e integrare le co-colture con 100 nanogrammi per millilitro di ligando FLT3. Quindi, incubare le cellule a 37 gradi Celsius e al 5% di anidride carbonica con un monitoraggio visivo periodico della cellula dendritica, o sviluppo delle DC, al microscopio.
Il giorno 12, raccogliere le cellule nel surnatante di co-coltura e lavare ogni pozzetto una volta con mezzo millilitro di terreno RPMI completo, raggruppando i surnatanti e i lavaggi risultanti. Quindi, aggiungi mezzo millilitro di terreno fresco a ciascun pozzetto e usa un raschietto cellulare per staccare le cellule aderenti. Combinare le celle staccate con le celle galleggianti e centrifugare la sospensione cellulare risultante, risospendendo il pellet in 50 microlitri di tampone FACS.
Quindi, contare le cellule e colorarle per l'espressione di CD11c, CD11b e B220 dopo il blocco Fc, come appena dimostrato. Le cellule co-coltivate possono quindi essere analizzate per la presenza di popolazioni convenzionali CD11c positive, CD11b positive, B220 negative e plasmocitoidi CD11c positive, CD11b negative, B220 positive.