Name: I dosaggi farmacologici genetica e funzionale di manipolare Rigenerazione del Planaria Japonica Dugesia /em (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 58 s
Description: Scopri come manipolare la rigenerazione nelle planarie Dugesia japonica con metodi farmacologici e RNAi in vivo. Questo protocollo permette di studiare la differenziazione delle cellule staminali.

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Lavoro in laboratorio è supportato da NSF (MCB0919933) e NIH (GM088790).

1. Tronco frammento saggio rigenerazione <ol><li> Smettere di alimentare una coorte di vermi per almeno 5 giorni prima del test rigenerativa per assicurare gli animali sono liberi di rifiuti e di cibo ingerito (~ 30 vermi intatti, ogni verme ~ 8-10 mm lungo post-fame). </li><li> Il giorno del test, lavare un pre-congelato piatto ghiaccio livellato con acqua e coprire la superficie piana ghiacciata con pellicola trasparente. Uso di pinze, mettete una carta da filtro sulla pellicola di plastica. </li><li> Bagnare la carta da filtro con qualche goccia di acqua di sorgente. Trasferimento planarie sul filtro (&lt;20 vermi per filtro) con una pipetta di trasferimento. Worm può essere riposizionato sul filtro, se necessario, repipetting con acqua di sorgente più. Rimuovere il liquido in eccesso. </li><li> Usando un bisturi, amputare la testa da un unico taglio fatto circa metà strada tra l'apice anteriore dell'animale e la fine anteriore della faringe (Figura 1A). </li><li> Usando un bisturi, amputare la regione coda da un unico taglio fatto circa metà strada tra l'estremità della coda dell'animale e la fine posteriore della faringe (Figura 1A). Rimuovere il muco in eccesso sul bisturi con un fazzoletto di carta imbevuto di etanolo al 70% dopo il taglio. Pulire l'etanolo in eccesso dal bisturi. </li><li> Trasferimento del filtro tramite pinze in una capsula di Petri (100 x 25mm profondità) contenente acqua di sorgente. Attendere ~ 3 minuti (per la chiusura della ferita, osservabili da un pizzicotti e oscuramento della ferita). </li><li> Sciacquare frammenti di tronco da carta da filtro nella piastra di Petri contenente supporto desiderato per il dosaggio rigenerativa e trasferimento termostatati incubatore (24 ° C). </li><li> Punteggio fenotipo rigenerativa dopo ~ 1 settimana, quando le strutture rigenerati sono identificabili (Figura 1A). </li></ol> 2. Manipolazione farmacologica della rigenerazione: bipolarismo indotto dal praziquantel <ol><li> Preparare praziquantel (PZQ) stock di farmaci solubilizzanti in DMSO (62.4mg PZQ in 1 ml di magazzino 200mm). Usa il giorno stesso. </li><li> Fai 50mL di droga contenenti soluzione (90 mM PZQ) di sali Montjuch tamponata. Vortex per ~ 1 minuto per garantire la dispersione. </li><li> Eseguire frammento saggio rigenerativa tronco come sopra [protocollo # 1], esponendo una coorte di frammenti di tronco di PZQ al passo finale [1.7]. </li><li> Dopo 24-48 ore, cambio PZQ contenenti supporti per acqua di sorgente, il lavaggio vermi diversi (&gt; 3) volte. </li><li> Ritorna worm per incubatrice. Punteggio bipolarità (a due teste, Figura 1B) una settimana dopo il taglio. </li></ol> 3. Manipolazione genetica di rigenerazione: nel protocollo vivo alimentazione RNAi <ol><li> Prima del dosaggio, la preparazione del fegato omogeneizzato di pollo. Eliminare grassi, le sezioni di colore giallo da foodstock, fegato e purea rimanente. Filtro purea attraverso mesh e sospensione aliquota per la conservazione (1,5 ml tubi, -20 ° C). </li><li> Prima del dosaggio, preparare bovina globuli rossi (RBC) da aliquoting fornitura in campioni di 1 ml, conservati a -20 ° C. </li><li> Seleziona worm per RNAi. Tre coorti sono utilizzati: gene di interesse, controllo positivo (gene noto con fenotipo RNAi; Figura 1C, D &amp; E) e di controllo negativo (gene senza fenotipo RNAi, utile anche per la valutazione dei livelli knockdown rispetto alla coorte sperimentale). Per ciascuna coorte, utilizzare ~ 250 vermi (~ 8-10 mm molto tempo dopo muore di fame per almeno 5 giorni). Conservare in acqua di sorgente in vasca di plastica. </li><li> Per ogni stock disgelo coorte RNAi, di E. coli che esprimono dsRNA gene targeting di interesse [8], insieme ad un tubo di omogenato di fegato di pollo [3.1] e un tubo di GR [3.2]. </li><li> Pellet di batteri (13.000 g, 1 minuto). Rimuovere il surnatante e risospendere pellet in 2xYT media (~ 700μl). Recentrifuge, scartare il surnatante, posto a pellet su ghiaccio. </li><li> Creare un grande foro P200 punta della pipetta, tagliando la fine della punta. Accuratamente risospendere il pellet batterico in una miscela di fegato omogeneizzato di pollo (150 mL) e di globuli rossi (50 mL) per creare mix RNAi di alimentazione. Rimuovere le bolle d'aria per centrifugazione. </li><li> Per l'alimentazione, rimuovere la maggior parte delle acque dalla vasca di plastica contenente vermi (lasciare profondità ~ 1 pollice). Vasca Swirl per concentrare i vermi al centro di questo contenitore, e pipetta mix di alimentazione RNAi in un cerchio corralling vermi. Utilizzare una pipetta di trasferimento di convincere attentamente fuggitivi di nuovo sul mix di alimentazione RNAi senza perturbare altri commensali! </li><li> Dopo l'alimentazione (~ 1 ora), identificare planarie che alimentava bene. Questi worm mostrano una colorazione rosso intenso da globuli rossi ingerito. Scartare gli altri. </li><li> Ricollocare accuratamente soluzione di alimentazione con acqua di sorgente fresca, riducendo al minimo disturbo per impedire egestion di cibo. Per fare questo, delicatamente localizzare i vermi su un lato della provetta con una pipetta di trasferimento, versare l'acqua torbida, e sostituire con acqua fresca versate nella parete opposta della vasca. Planarie Resubmerge velocemente come l'esposizione prolungata all'aria risultati anche in egestion cibo. </li><li> Liberamente séal coperchio del contenitore e tornare alla incubatore (24 ° C) </li><li> Ripetere l'alimentazione protocollo RNAi su più cicli (~ 2-3 giorni di distanza), intervallati da cicli di rigenerazione [protocollo # 1] per lo screening della fenotipi RNAi. Un protocollo standard per l'alimentazione e la rigenerazione efficace per molti geni è mostrato in figura 2, che si ~ 1 mese di durata totale. </li></ol> Modificare questo schema per i geni diversi, come il protocollo ottimale dipenderà da fattori quali la stabilità di mRNA, localizzazione dei tessuti, perdurance proteine, o lo sviluppo di un fenotipo che preclude cicli di alimentazione multipla dopo la rigenerazione. Valutare i livelli di knockdown semplicemente screening per penetranza del fenotipo (se apparente), o da approcci qPCR per confrontare i livelli di mRNA bersaglio con coorte di controllo negativo. 4. Rappresentante dei risultati: Il frammento saggio tronco rigenerazione è robusto in modo che tutti i worm dovrebbe rigenerarsi con le normali antero-posteriore ('testa alla coda') polarità. Questo può essere segnata appena cinque giorni dopo il taglio, facilitato dalla nascita del ocelli anteriore (asterixed, Figura 1A). Tuttavia, completo ripristino morfologico delle strutture perso si verifica dopo una settimana. Manipolazione farmacologica della rigenerazione tronco frammento da PZQ di cedere a due teste vermi (Figura 1B) è robusto (EC 50 = 87 (+ -) frammenti bipolare 11%, 70μM PZQ per 48 ore 20). Bipolarità avviene su un singolo ciclo rigenerativo. Minore efficacia in questi saggi si riferisce probabilmente a problemi con la solubilità della droga e / o stoccaggio o l'utilizzo di una specie di verme piatto diverso dove PZQ è inefficace. Per i farmaci con la più bassa penetranza, un indice anteriorization è spesso usato per punteggio fenotipi intermedi a parte da 22 bipolarità completa. Fenotipi che derivi dalla RNAi di costrutti di controllo positivo sono mostrati in figura 1: RNAi di Dugesia japonica sei-1 (D j-sei-1) si traduce in un fenotipo senza occhi 23 (Figura 1C), RNAi di Dugesia japonica PC2 (Dj-PC2) traduce in una perdita della risposta avversione luce 24 (Figura 1D) e RNAi di Dugesia japonica βcatenin-1 (Dj-βcatenin-1) si traduce in un due teste fenotipo 16-19, 21 da frammenti tronco (figura 1E). Questi fenotipi possono essere raggiunti utilizzando i seguenti protocolli di RNAi semplice: Dj-sei-1 (FFxFx), Dj-PC2 (FFFx), Dj-βcatenin-1 (FFxFx), dove F = ciclo di alimentazione e x = rispettivamente ciclo rigenerativo. <img src="/files/ftp_upload/3058/3058fig1.jpg" alt="Figura 1"> Figura 1:... Frammento saggio Tronco rigenerazione A sinistra, immagine di planaria (in alto) e schematica (al centro) per mostrare posizione del frammento asportato tronco diritto, timecourse di rigenerazione del tronco frammento che mostra l'aspetto del frammento rigenerante, a volte indicati (giorni) B immagine di due teste planaria prodotti dall'esposizione PZQ. C verme 'Eyeless' prodotta da Dj-sei-1 RNAi. D Perdita di risposta avversione luce in immobile Dj-PC2 RNAi vermi (macchiato rosso), rispetto al verme di controllo mobile (macchiata verde). E bipolare planaria prodotto da Dj-βcatenin-1 RNAi. In BE, la fine originale anteriore del worm RNAi è orientato a sinistra. <img src="/files/ftp_upload/3058/3058fig2.jpg" alt="Figura 2"> Figura 2: Sequenza di alimentazione e cicli di taglio tipico protocollo per RNAi composto da alimentazioni multiple (F), ed i cicli di rigenerazione (x) che è efficace per atterramento di molti geni in D. japonica. Modifica di questo protocollo per singoli geni possono essere necessari per ottenere risultati ottimali, per esempio utilizzando un numero inferiore (tra parentesi) o un numero maggiore di alimentazione e cicli di rigenerazione.

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<li>Iglesias, M., Gomez-Skarmeta, J. L., Saló, E., Adell, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silencing+of+Smed-betacatenin1+generates+radial-like+hypercephalized+planarians%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Silencing of Smed-betacatenin1 generates radial-like hypercephalized planarians.</a> Development. 135, 1215-1221 (2008).</li>
<li>Nogi, T., Zhang, D., Chan, J. D., Marchant, J. S., S, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+biological+activity+of+praziquantel+requiring+voltage-operated+Ca2%2B+channel+beta+subunits%3A+subversion+of+flatworm+regenerative+polarity%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Negl+Trop+Dis%22%5BJournal%5D)">A novel biological activity of praziquantel requiring voltage-operated Ca2+ channel beta subunits: subversion of flatworm regenerative polarity.</a> PLoS Negl Trop Dis. 3, e464-e464 (2009).</li>
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</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

I protocolli descritti dettagliatamente i test per lo studio e la manipolazione di rigenerazione della planaria Dugesia japonica. Sono semplici e non richiedono attrezzature specializzate tale da poter essere facilmente eseguito in laboratorio o in aula. Test può essere effettuato singolarmente o combinate (per lo screening genetico chimica dell&#39;efficacia dei farmaci in vivo) e può essere eseguita a livello del gene candidato, o sono adattabili a imparziali, screening ad alto 8. Sia per lo studio della biologia intrigante di planarie in sé, o per la valutazione della funzione in vivo di omologhi mammiferi in un modello alternativo per studiare la rigenerazione dei tessuti, questi approcci dovrebbero catalizzare l&#39;interesse di una vasta gamma di ricercatori.

<table border="1"><tbody><tr><th> Reagente </th><th> Venditore </th><th> Numero di catalogo </th><th> Commenti </th></tr><tr><td> Sorgente d&#39;acqua </td><td> Kandiyohi. Premio Waters Inc. Minneapolis, MN </td><td> n / a </td><td> Altre forme di acqua di sorgente funzionano bene anche. Prima prova nei test di vitalità. </td></tr><tr><td> 1 x tamponata Montjuïch sali: NaCl (1,6 mm), CaCl2 (1 mm), MgSO4 (1 mm), MgCl2 (0,1 mm), KCl (0,1 mm), NaHCO3 (1,2 mm), HEPES (1,5 mm). pH 7,4 a 24 ° C. </td><td> Diversi fornitori </td><td> n / a </td><td> Acqua artificiale per trattamenti farmacologici durante i test di rigenerazione per garantire buffer pH. Soluzione 5 / 8 Holtfreter è un&#39;alternativa. </td></tr><tr><td> 2xYT brodo </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP2467-500 </td><td> Media = 31 g / L. Sterilizzati in autoclave. </td></tr><tr><td> Petri Dish (100x25mm) </td><td> Fisher Scientific </td><td> 08-757-11 </td><td> Worm alloggio durante i cicli di rigenerazione </td></tr><tr><td> Piazza Dish (100x100x15mm) </td><td> Fisher Scientific </td><td> 08-757-11A </td><td> Riempire con acqua, congelare per il vassoio del ghiaccio utilizzato come superficie di taglio verme </td></tr><tr><td> Vaschetta di plastica: Ziploc Twist &#39;n Loc (16 once). </td><td> Vari rivenditori </td><td> n / a </td><td> Contenitori per l&#39;acqua comoda stretto per coorti RNAi </td></tr><tr><td> Fegato di pollo </td><td> Commerciale di generi alimentari </td><td> n / a </td><td> Propensione fornisce organico, a causa di evitare gli antibiotici. </td></tr><tr><td> Mano Blender </td><td> Ogni cucina fornitore </td><td> n / a </td><td> Utilizzare per le purea di fegato di pollo </td></tr><tr><td> Filo 1 millimetro mesh </td><td> Ogni cucina fornitore </td><td> n / a </td><td> Utilizzare per filtrare purea di fegato di pollo </td></tr><tr><td> Bovina globuli rossi </td><td> Lampire Biological Laboratories </td><td> 7240807 </td><td> 100% lavato e raccolto sospensione RBC </td></tr><tr><td> Filtri circolari </td><td> Whatman # 3 </td><td> 1003 055 </td><td></td></tr><tr><td> Trasferimento Pipettare </td><td> Fisher Scientific </td><td> 13-711-41 </td><td></td></tr><tr><td> Sterili, lame chirurgiche </td><td> I fornitori multipli </td><td> n / a </td><td></td></tr><tr><td> ± Praziquantel </td><td> Sigma Aldrich </td><td> P4668 </td><td> Aliquote polvere Conservare al buio a 4 ° C. Essiccare. </td></tr><tr><td> Dj-sei-1 </td><td></td><td> GenBank AJ557022.1 </td><td> RNAi controllo positivo per fenotipo &quot;occhio-less&quot; 23 </td></tr><tr><td> Dj-βcatenin-1 </td><td></td><td> GenBank AB181913.1 </td><td> RNAi controllo positivo per due teste fenotipo 17 </td></tr><tr><td> Dj-PC2 </td><td></td><td></td><td> RNAi controllo positivo per la perdita del fenotipo avversione leggeri 24 </td></tr></tbody></table>

i dosaggi farmacologici genetica e funzionale di manipolare rigenerazione del planaria japonica dugesia</em

Pharmacological and Functional Genetic Assays to Manipulate Regeneration of the Planarian Dugesia japonica

A vita libera planaria vermi piatti hanno una lunga storia di causa dell&#39;utilizzo sperimentale della loro notevoli capacità rigenerative 1. Piccoli frammenti prelevati da questi animali riformare il piano originale corpo dopo la rigenerazione delle strutture del corpo mancanti. Per esempio se frammento di un &#39;tronco&#39; viene tagliato da un worm intatta, la &#39;testa&#39; di un nuovo rigenererà anteriormente e una &#39;coda&#39; rigenererà posteriormente ripristinare l&#39;originaria polarità &#39;testa-coda&#39; delle strutture del corpo prima amputazione (Figura 1A). La rigenerazione è guidato da cellule staminali planaria, noto come &#39;neoblasts&#39;, che si differenziano in circa 30 diversi tipi di cellule normali del corpo durante l&#39;omeostasi e la rigenerazione dei tessuti applicati. Questo processo rigenerativo è robusto e facile da dimostrare. Grazie alla dedizione di alcuni laboratori d&#39;avanguardia, molti strumenti e metodi di genetica funzionale sono stati ottimizzati per questo sistema modello. Di conseguenza, notevoli recenti progressi sono stati fatti nella comprensione e manipolare gli eventi molecolari alla base planaria plasticità dello sviluppo 2-9. Il sistema modello planaria sarà di interesse per una vasta gamma di scienziati. Per i neuroscienziati, il modello offre l&#39;opportunità di studiare la rigenerazione di un intero sistema nervoso, piuttosto che semplicemente la ricrescita / riparazione del singolo processo delle cellule nervose che normalmente sono oggetto di studio in molti modelli consolidati. Planarie esprimere una pletora di neurotrasmettitori 10, rappresentano un importante sistema per lo studio dell&#39;evoluzione del sistema nervoso centrale 11, 12 e hanno un potenziale di screening comportamentale 13, 14. Risultati rigenerativa sono suscettibili di manipolazione da parte apparoaches farmacologiche e genetiche. Per esempio, i farmaci possono essere sottoposti a screening per gli effetti sulla rigenerazione semplicemente inserendo frammenti di corpo in soluzioni contenenti farmaci in diversi momenti dopo l&#39;amputazione. Il ruolo dei singoli geni possono essere studiati utilizzando metodi knockdown (RNAi in vivo), che può essere realizzato attraverso cicli di microiniezione o alimentando batteri-espresso costruisce dsRNA 8, 9, 15. Entrambi gli approcci possono produrre fenotipi di grande impatto visivo ad alta penetranza, ad esempio, la rigenerazione degli animali bipolare 16-21. Per facilitare l&#39;adozione di questo modello e implementazione di tali metodi, che in vetrina protocolli articolo il video per le analisi farmacologiche e genetiche (RNAi in vivo per l&#39;alimentazione) utilizzando il Dugesia planaria japonica.

Un modello interessante per studiare la differenziazione delle cellule staminali in un animale vivo è il verme piatto planaria. La rigenerazione è studiato da amputazione esperimenti semplici che sono facili da eseguire in un laboratorio di base e sono suscettibili di (farmacologica e genetica<em&gt; In vivo</em&gt; RNAi) manipolazione come descritto dai protocolli in questo articolo.

I dosaggi farmacologici genetica e funzionale di manipolare Rigenerazione del Planaria Japonica Dugesia</em

I platelminti planari a vita libera hanno una lunga storia di utilizzo sperimentale grazie alle loro straordinarie capacità rigenerative1. Piccoli frammenti escissi da...

L'obiettivo generale dei seguenti esperimenti è eseguire e manipolare saggi di rigenerazione nei vermi piatti di Parian utilizzando metodi farmacologici e/o di silenziamento genetico. Il primo passo consiste nel padroneggiare il saggio base di amputazione e rigenerazione. Successivamente, si mostra come i farmaci possano essere utilizzati per alterare la polarità rigenerativa, ad esempio, per ottenere animali con due teste.Infine, viene fornita una descrizione su come eseguire l'RNAi in vivo mediante alimentazione, al fine di esaminare gli effetti della perdita di funzione di geni specifici. I risultati mostrano che il trattamento con il farmaco quintal altera la rigenerazione producendo vermi a due teste e che l'abbattimento genetico di una isoforma della betaina produce un fenotipo grossolanamente simile.Ciao, mi chiamo John Chan, sono uno studente laureato nel laboratorio di Marching e mostrerò queste procedure. La dimostrazione visiva di questi metodi è importante perché, sebbene nessun singolo passaggio sia in sé difficile, la dimostrazione complessiva di queste tecniche sarà d'aiuto ai ricercatori che si avvicinano per la prima volta a questo sistema modello.In previsione del saggio, interrompere l'alimentazione di un gruppo di circa 30 pariani per almeno cinque giorni dopo la privazione di cibo. Il verme dovrebbe avere una lunghezza compresa tra otto e dieci millimetri nel giorno del saggio. Sciacquare una piastra ghiacciata precedentemente livellata con acqua e coprire la superficie piana ghiacciata con pellicola trasparente utilizzando pinzette.Posizionare un foglio di carta da filtro sulla pellicola di plastica. Inumidire la carta da filtro con alcune gocce di acqua di sorgente utilizzando una pipetta di trasferimento, quindi depositare non più di 20 plin sulla carta da filtro. Se necessario, i vermi possono essere riposizionati sulla carta da filtro mediante ripipettaggio con ulteriore acqua di sorgente.Una volta che i vermi sono in posizione, rimuovere il liquido in eccesso utilizzando un bisturi, quindi amputare la testa effettuando un singolo taglio approssimativamente a metà strada tra l'apice anteriore dell'animale e l'estremità anteriore della faringe. Successivamente, amputare la regione della coda effettuando un singolo taglio approssimativamente a metà strada tra l'estremità posteriore dell'animale e l'estremità posteriore della faringe. Rimuovere il muco in eccesso dal bisturi utilizzando un fazzoletto di carta inumidito con etanolo al 70% dopo ogni taglio, quindi asciugare l'eccesso di etanolo dal bisturi prima di effettuare il taglio successivo.Prendere il filtro con una pinzetta e trasferirlo in una piastra di Petri contenente acqua di sorgente. Attendere circa tre minuti per la chiusura della ferita, che è osservabile attraverso un restringimento e un annerimento della lesione. Risciacquare i frammenti del tronco dalla carta filtro in una piastra di Petri contenente il mezzo desiderato per il saggio di rigenerazione e trasferire in un incubatore termostatato impostato a 24 gradi Celsius.Valutare il fenotipo rigenerativo dopo circa una settimana. Quando le strutture rigenerate sono identificabili, preparare una soluzione madre di quintale o PZ Q a 200 millimoli solubilizzando il farmaco in DMSO, da utilizzare fresca nella stessa giornata. Successivamente, preparare 50 millilitri di soluzione contenente il farmaco aggiungendo 22,5 microlitri della soluzione madre di PZ Q ai sali magici tamponati, quindi vortexare per circa un minuto.Per garantire una corretta dispersione, posizionare i vermi su carta da filtro inumidita con acqua di sorgente e amputare sia la regione cefalica che quella caudale come descritto nel saggio di rigenerazione per frammentazione del tronco. Dopo l'amputazione e la chiusura della ferita, trasferire i frammenti del tronco in una piastra di Petri contenente acqua di sorgente. Sostituire il mezzo con una soluzione di PZ Q a 90 micromolare e trasferire la piastra di Petri nell'incubatore a 24 gradi Celsius. Dopo 24-48 ore, sostituire il mezzo contenente PZ Q con acqua di sorgente, lavando il verme più volte, riportare i vermi nell'incubatore e, dopo una settimana, valutare il fenotipo di bipolarità o di doppia testa prima del saggio.Preparare un omogeneato di fegato di pollo, scartando le sezioni gialle e grasse dal campione alimentare, quindi omogeneizzare il fegato rimanente e filtrare l'omogeneato attraverso un setaccio. Conservare la sospensione acquosa ottenuta. Successivamente, preparare globuli rossi bovini o RBC mediante Ali, suddividendo il campione in aliquote da un millilitro da conservare a meno 20 gradi Celsius.Utilizzare vermi che sono stati sottoposti a digiuno per cinque giorni e raggrupparli in tre coorti. Il gene di interesse, un controllo positivo con un fenotipo RNAi noto e un controllo negativo, ovvero un gene privo di fenotipo RNAi.Per ogni coorte, utilizzare circa 250 vermi lunghi tra gli otto e i dieci millimetri. Scongelare una provetta di e coli per ogni coorte che esprime RNA a doppio filamento, mirato ai geni di interesse, insieme a una provetta di fegato di pollo, omogeneizzato, e una provetta di globuli rossi. Raccogliere i batteri in pellet mediante centrifugazione a 13.000 G per un minuto, rimuovere il soprannatante e risospendere il pellet in 700 microlitri di mezzo 2XYT.Ricentrifugare, scartare il soprannatante e quindi mettere il pellet sul ghiaccio. Creare un'ampolla pipetta P 200 con grande apertura tagliando via completamente la punta, quindi risospendere accuratamente il pellet batterico in 150 microlitri di omogenato di fegato di pollo più 50 microlitri di globuli rossi per ottenere una miscela di alimentazione per RNAi. Rimuovere le bolle d'aria mediante una breve pulsazione di centrifugazione prima dell'alimentazione.Rimuovere la maggior parte dell'acqua dal contenitore di plastica contenente i vermi, lasciando un livello di circa 2,5 cm. Ruotare il contenitore per concentrare i vermi al centro. Quindi pipettare la miscela di alimentazione RNAi in cerchio, delimitando i vermi.Utilizzare una pipetta Pasteur per riportare con attenzione nell'area del terreno di alimentazione a RNAi eventuali individui fuggiti, senza disturbare gli altri vermi, dopo circa un'ora di alimentazione; identificare i pariani che si sono alimentati correttamente e rimuovere i vermi che non appaiono ben nutriti. I vermi ben nutriti mostrano una colorazione rossa intensa derivante dai globuli rossi ingeriti.Sostituire con attenzione la soluzione nutritiva con acqua di sorgente fresca, avendo cura di minimizzare le perturbazioni per prevenire l'ingestione di cibo. Per fare ciò, localizzare delicatamente i vermi su un lato della vasca utilizzando una pipetta di trasferimento. Versare via l'acqua sporca e sostituirla accuratamente con acqua fresca, versandola lungo la parete opposta della vasca; riimmergere rapidamente i parian, poiché un'esposizione prolungata all'aria potrebbe nuocere loro.Determina anche un'ingestione alimentare approssimativa. Chiudere ermeticamente il coperchio del contenitore e riposizionare i vermi nell'incubatrice a 24 gradi Celsius. Ripetere questo protocollo di alimentazione con RNAi per più cicli, alternati a cicli di rigenerazione, al fine di effettuare alla fine uno screening dei fenotipi da RNAi.Viene mostrato qui un programma standard di alimentazione e rigenerazione efficace per molti geni. F rappresenta il protocollo di alimentazione e X rappresenta il saggio di rigenerazione. In totale, il protocollo richiede circa un mese ed è modificabile per geni diversi includendo meno alimentazioni, indicate tra parentesi F, o alimentazioni più frequenti, poiché il protocollo ottimale dipenderà da fattori quali la stabilità dell'mRNA, la localizzazione nei tessuti, la proteina, P dur, oppure lo sviluppo di un fenotipo che esclude cicli multipli di alimentazione dopo la rigenerazione.Di seguito sono riportati risultati tipici del saggio di rigenerazione del tronco. A sinistra, un parian è mostrato sopra uno schema che indica i tagli di amputazione. A destra è riportata una serie temporale della rigenerazione del frammento del tronco, che si verifica nell'arco di sette giorni con l'apparizione degli occhiolini entro il terzo giorno.Qui, la subversione farmacologica della rigenerazione di frammenti del tronco mediante trattamento con PZ Q. Treatment ha prodotto vermi a due teste utilizzando RNAi contro il gene DJ 61. In un protocollo di alimentazione FX FX si ottiene un fenotipo ilis, la perdita della risposta di avversione alla luce osservata dopo un protocollo di alimentazione FFFX che porta a vermi immobili DJ PC due, colorati di rosso rispetto al controllo mobile. Verme colorato di verde, RNAi inattivato per DJ beta catine in uno.L'utilizzo di un protocollo di alimentazione FXFX determina la rigenerazione di una testa a partire dalla ferita posteriore. Seguendo queste procedure, i ricercatori potranno mirare a geni di interesse per la loro ricerca mediante metodi di silenziamento genico o agenti farmacologici selettivi, al fine di esplorarne il ruolo nella biologia pariana e nella rigenerazione dei tessuti.

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