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I mastociti, globuli bianchi contenenti granuli citoplasmatici pieni di mediatori dell'infiammazione, svolgono un ruolo importante nelle risposte immunitarie innate e adattative.
Per isolare i mastociti di tipo tessuto connettivo dalla cavità peritoneale – uno spazio pieno di liquido che ospita gli organi addominali – prendi un topo soppresso fissato in posizione supina. Praticare un'incisione longitudinale fino allo sterno, esponendo la parete addominale.
La cavità peritoneale si trova sotto la parete addominale e contiene un liquido che ospita diverse cellule immunitarie tra cui macrofagi, linfociti, leucociti polimorfonucleati e mastociti.
Per isolare le cellule mediante lavaggio peritoneale, aspirando il contenuto intraperitoneale, iniettare un mezzo di crescita ghiacciato nella cavità peritoneale senza perforare gli organi, evitando perdite di sangue. Il terreno freddo aiuta a mantenere la vitalità cellulare.
Agitare con cura il topo per una durata adeguata, mescolando le cellule immunitarie con il terreno. Inserire una siringa vuota nella cavità. Aspirare lentamente il terreno, recuperando la maggior parte del fluido iniettato per una migliore resa cellulare.
Trasferire la sospensione cellulare in una provetta di raccolta. Centrifuga per far precipitare le celle sotto forma di pellet. Scartare il surnatante. Risospendere il pellet in un mezzo appropriato.
Placcare le cellule e incubarle in condizioni fisiologiche, consentendo alle cellule di aderire al recipiente di coltura. Aggiungere citochine specifiche che si legano ai loro recettori sui mastociti, inducendo la proliferazione cellulare.
Le cellule proliferate sono pronte per i saggi a valle.
Per iniziare questa procedura, spruzzare il topo eutanasia con etanolo al 70% e fissarlo su un blocco di schiuma con il lato dorsale rivolto verso il basso usando degli spilli. Utilizzando le forbici a lama smussata, rimuovere la pelle sopra l'addome del topo ed evitare di danneggiare la cavità peritoneale.
Successivamente, iniettare 7 millilitri di terreno RPMI ghiacciato nella cavità peritoneale inserendo con cura un ago calibro 27 nel peritoneo. Non perforare alcun organo e utilizzare una macchia nella regione del grasso dell'epididimo per ridurre il rischio di perforazione di un organo.
Dopo l'iniezione, agitare il topo per 1 minuto per staccare le cellule peritoneali nel mezzo RPMI. Non scuotere il topo troppo forte per evitare di danneggiare gli organi interni e contaminare la cavità peritoneale con il sangue. Quindi, riutilizzare la siringa dotandola di una nuova cannula calibro 20.
Sposta gli organi interni da un lato inclinando il blocco di schiuma e picchiettandolo delicatamente sul banco per facilitare l'aspirazione media dall'altro lato. Successivamente, inserire un ago calibro 20, smussato verso l'alto, per aspirare il fluido dall'addome delicatamente e lentamente per evitare l'intasamento da parte degli organi interni.
Raccogli quanto più liquido possibile. Quindi, rimuovere l'ago dalla siringa e trasferire la sospensione cellulare raccolta in una provetta di raccolta con ghiaccio. Gettare una provetta del campione se c'è una contaminazione visibile del sangue.
Centrifugare la provetta con una sospensione di cellule pulite a 300 x g per 5 minuti. Sotto una cappa sterile, aspirare il surnatante. Risospendere i pellet del campione in un mezzo PMC freddo e trasferire la sospensione cellulare in un pallone di coltura cellulare di 25 centimetri quadrati.
Successivamente, aggiungere i fattori di crescita IL3 e SCF alle concentrazioni finali rispettivamente di 10 nanogrammi per millilitro e 30 nanogrammi per millilitro. Incubare le cellule per circa 48 ore a 37 gradi Celsius, fino alla procedura successiva.