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Prendi una coltura di Staphylococcus aureus, un batterio patogeno che secerne leucocidina - una tossina che forma i pori - comprendente componenti monomerici S e F.
Pellet le cellule e diluisci in serie il surnatante. Trasferire il surnatante contenente leucocidina in una micropiastra contenente leucociti polimorfonucleati, o PMN, e incubare.
La componente S si lega a specifici recettori transmembrana sui PMN, seguita da etero-oligomerizzazione con la componente F da inserire nella membrana cellulare, con conseguente formazione di pori.
Il poro provoca una diminuzione degli ioni potassio intracellulari, attivando il dominio della pirina della famiglia NLR contenente la proteina 3 o NLRP3.
NLRP3 si lega a una proteina simile a uno speck associata all'apoptosi contenente un dominio di reclutamento della caspasi, o ASC, che recluta la pro-caspasi-1, formando un inflammasoma.
L'auto-proteolisi converte la pro-caspasi-1 in caspasi-1 attiva, innescando la morte cellulare.
Raccogli le celle a intervalli definiti. Aggiungere ioduro di propidio o PI, che entra nelle cellule morte attraverso le membrane danneggiate per legare il DNA, emettendo fluorescenza.
Utilizzando la citometria a flusso, quantifica le cellule colorate di PI per valutare l'effetto citotossico sia della concentrazione di leucocidina che del tempo di incubazione.
Coltura di S. aureus durante la notte in terreni appropriati, utilizzando un'incubatrice vibrante impostata a 37 gradi Celsius il giorno prima dell'esperimento. Sottocoltura di S. aureus eseguendo una diluizione da 1 a 100 di colture batteriche notturne con terreni freschi. Incubare a 37 gradi Celsius agitando fino a quando i batteri raggiungono la fase iniziale di crescita stazionaria. Dopo cinque ore di crescita, trasferire 1 millilitro di S. aureus di sottocoltura in una provetta da microcentrifuga da 1,5 millilitri e centrifugare a 5000 g per 5 minuti a temperatura ambiente.
Dopo la centrifugazione, aspirare i surnatanti. Passare i surnatanti aspirati attraverso un filtro per siringa da 0,22 micron in una nuova provetta per microcentrifuga da 1,5 millilitri e metterli sul ghiaccio. Eseguire diluizioni seriali del surnatante con terreni ghiacciati utilizzati per la coltura dello Stafilococco aureo. Aggiungere delicatamente campioni di surnatante o terreni da soli per controlli negativi e positivi ai singoli pozzetti di una piastra a 96 pozzetti contenente PMN e ghiaccio, come descritto in precedenza.
Scuotere delicatamente la piastra per distribuire surnatanti e pozzetti e incubare a 37 gradi Celsius. Al momento desiderato, togliere il piatto dall'incubatrice e metterlo sul ghiaccio. Aggiungere 300 microlitri di DPBS ghiacciato contenente 1 microlitro di ioduro di propidio a ciascuna provetta per citometria a flusso. Trasferire i campioni in provette per citometria a flusso su ghiaccio. Per ottenere il pozzetto di controllo positivo, aggiungere 20 microlitri di Triton X al 10% al campione prima di trasferirlo in una provetta per citometria a flusso. Analizzare la colorazione con ioduro di propidio di PMN intossicati utilizzando la citometria a flusso.