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Inizia con cellule tumorali prive di solfato che esprimono una proteina di superficie marcata con GFP.
Aggiungere solfato radiomarcato e nanocorpi anti-GFP modificati, un anticorpo a catena singola che trasporta un motivo di solfatazione tirosina, e incubare.
Le cellule prive di solfato internalizzano i solfati radiomarcati, incorporandoli nei componenti cellulari.
Il nanocorpo anti-GFP si lega alla proteina di superficie marcata con GFP e viene endocitosizzato in una vescicola. Questa vescicola trasporta il complesso proteico nanocorpo-superficie lungo specifici percorsi intracellulari, tra cui la rete trans-Golgi, o TGN.
All'interno del TGN, la sulfotransferasi in presenza di un substrato trasferisce un solfato radioattivo a specifici residui di tirosina sul nanocorpo, radiomarcandolo.
Lavare le celle. Quindi, lisare le cellule.
Centrifugare il lisato per rimuovere i detriti cellulari di grandi dimensioni. Isolare i nanocorpi utilizzando un metodo di purificazione a base di perle di nichel.
Caricare la frazione isolata su un gel SDS-PAGE per separare il nanocorpo radiomarcato in bande distinte.
Sottoporre il gel ad autoradiografia.
L'autoradiografia risultante rivela regioni scure, indicando la presenza del nanocorpo radiomarcato.
In una cappa di coltura cellulare, seminare tra le 400.000 e le 500.000 cellule HeLa che esprimono stabilmente una proteina reporter marcata con GFP in piastre da 35 mm o in cluster a 6 pozzetti, con un terreno completo contenente antibiotici. Incubare le cellule a 37 gradi Celsius con il 7,5% di anidride carbonica durante la notte. Il giorno successivo, rimuovere l'intero terreno e lavare le celle due volte con 1X PBS a temperatura ambiente. Affamare le celle con un terreno privo di solfati per 1 ora a 37 gradi Celsius con il 7,5% di anidride carbonica.
Nel frattempo, in una cappa ventilata o in un banco destinato al lavoro di radioattività, preparare un mezzo di marcatura con solfati contenente 0,5 millicurie per millilitro di solfato di sodio S35 in mezzo privo di solfati. Quindi, miscelare VHH a doppio strato di solfo in 1X PBS con il mezzo di marcatura dei solfati fino a una concentrazione finale di 2 microgrammi per millilitro. Al termine dell'incubazione, sostituire il terreno privo di solfati con 0,7 millilitri della miscela di terreno preparata, contenente solfato di sodio S35 e VHH a doppio strato di solfo. Incubare le cellule per 1 ora a 37 gradi Celsius in un incubatore al 7,5% di anidride carbonica, progettato per lavorare con la radioattività.
Successivamente, rimuovere il mezzo di etichettatura e lavare le celle due o tre volte con 1X PBS ghiacciato su una piastra di raffreddamento o su ghiaccio. Aggiungere 1 millilitro di tampone di lisi, integrato con due PMSF millimolari e un cocktail di inibitori della proteasi 1X. Incubare le cellule per 10-15 minuti su una piattaforma a dondolo a 4 gradi Celsius. Quindi, raschiare e trasferire il lisato in un nuovo tubo da 1,5 millilitri, agitare il lisato e posizionarlo su un rotatore end-over-end a 4 gradi Celsius per 10-15 minuti. Centrifugare a 10.000 g e a 4 gradi Celsius per 10 minuti per preparare un lisato post-nucleare. Trasferire il lisato post-nucleare in una provetta da 1,5 millilitri contenente perle di nichel preparate e incubare su un agitatore end-over-end a 4 gradi Celsius per 1 ora per isolare i nanocorpi.
Successivamente, lavare le perle tre volte con 1X PBS o tampone di lisi pellettando delicatamente a 1000 g per 1 minuto. Rimuovere con cautela tutto il tampone di lavaggio dalle perle e aggiungere 50 microlitri di tampone campione 2X. Far bollire a 95 gradi Celsius per 5 minuti. Quindi, caricare le perle bollite su un gel midi 12,5% SDS-PAGE e far funzionare secondo il protocollo standard PAGE fino a quando il colorante di riferimento non ha raggiunto la fine del gel separatore. Fissare il gel separatore in circa 30 millilitri di tampone di fissazione per 1 ora a temperatura ambiente. Lavare il gel tre volte con circa 50 millilitri di acqua deionizzata, quindi asciugare il gel, come indicato nel protocollo di testo. Al termine dell'essiccazione, utilizzare un imager al fosforo per eseguire l'autoradiografia del gel.