Misurazione dell'attivazione delle funzioni effettrici mediate da FC da parte degli anticorpi HA

0 visualizzazioni3:03 min • July 8th, 2025

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Prendiamo le diluizioni seriali di un anticorpo che ha come bersaglio l'emoagglutinina del virus dell'influenza, o HA, una glicoproteina costituita da una testa globulare e un gambo.

Aggiungere le diluizioni su cellule di mammifero trasfettate che esprimono HA legato alla superficie. Gli anticorpi si legano alle regioni del gambo dell'HA, formando complessi immunitari.

Introdurre cellule T ingegnerizzate che esprimono recettori Fc e codificano un reporter di luciferasi sotto il controllo del fattore di trascrizione NFAT.

Durante l'incubazione, l'anticorpo legato all'HA si lega al recettore Fc, mentre la testa HA si lega all'acido sialico, innescando l'attivazione delle cellule T e aumentando la concentrazione citosolica di calcio.

Questa attivazione avvia una cascata di segnalazione che provoca la defosforilazione di NFAT, innescando la sua traslocazione nucleare.

NFAT si lega ai suoi elementi di risposta nel genoma, guidando l'espressione della luciferasi.

Aggiungere un substrato bioluminescente permeabile alle cellule. La luciferasi ossida il substrato, producendo un segnale.

La diminuzione della luminescenza con la diminuzione della concentrazione di anticorpi conferma l'attivazione delle cellule T mediata da anticorpi specifici per lo stelo HA.

Per valutare la capacità di specifici anticorpi di interesse di colpire le cellule che esprimono emoagglutinina, sostituire il surnatante delle colture cellulari infettate viralmente con 25 microlitri di terreno di prova di citotossicità cellulo-mediata anticorpo-dipendente, o ADCC.

Successivamente, in una piastra separata da 96 pozzetti, eseguire diluizioni di 4 volte degli anticorpi di interesse in triplicato e terreno ADCC fresco a partire da 10 microgrammi per millilitro secondo lo schema e facendo attenzione a includere il fondo e nessun controllo anticorpale.

Quando tutto l'anticorpo è stato diluito, trasferire 25 microlitri dell'anticorpo diluito nei pozzetti corrispondenti appropriati nella piastra cellulare sperimentale e posizionare la piastra nell'incubatore per colture cellulari. Dopo 15 minuti, aggiungere 7,5 volte 10 alla 4a cellula effettrice Jurkat modificata, esprimendo il recettore Fc appropriato per pozzetto in 25 microlitri di terreno ADCC per un volume finale di 75 microlitri di terreno ADCC per pozzetto.

Rimettere la piastra nell'incubatore per colture cellulari per 6 ore, scongelando il tampone del substrato di luciferasi in un bagno d'acqua a 37 gradi Celsius durante l'ultima ora dell'incubazione. Quando il tampone è pronto, aggiungere 75 microlitri di tampone substrato di luciferasi a tutti i pozzetti tranne il pozzetto di controllo del fondo e leggere la piastra su un luminometro. È quindi possibile calcolare l'induzione del fold della citotossicità cellulo-mediata anticorpo-dipendente nelle colture cellulari trasfettate o infette.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026