Una tecnica in vitro per studiare il traffico del recettore del glutammato nei neuroni dell'ippocampo

0 visualizzazioni5:27 min • July 8th, 2025

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Prelevare tre campioni di colture neuronali ippocampali su vetrini.

Introdurre anticorpi primari per marcare i recettori del glutammato espressi in superficie.

Aggiungere un terreno condizionato al secondo e al terzo campione per indurre l'endocitosi dei recettori legati agli anticorpi.

Sul terzo campione, aggiungere frammenti di Fab per bloccare gli epitopi sugli anticorpi non endocitati.

Introdurre un inibitore per bloccare l'endocitosi del recettore consentendo il riciclo del recettore in superficie.

In tutti i campioni, fissare le celle e aggiungere una soluzione bloccante per evitare l'etichettatura non specifica.

Introdurre anticorpi secondari marcati con fluorofori per marcare gli anticorpi primari sui recettori legati alla superficie, compresi quelli riciclati.

Permeabilizzare le membrane cellulari.

Aggiungere nuovamente l'anticorpo primario al primo campione per marcare i recettori endocitosi preesistenti.

Introdurre un diverso anticorpo secondario marcato con fluoroforo in tutti i campioni per marcare gli anticorpi primari legati al recettore endocitato, distinguendo tra recettori endocitosi e recettori legati alla superficie.

Utilizzando un microscopio confocale, quantificare i recettori espressi in superficie, endocitosi e riciclati nei diversi trattamenti.

Per iniziare questa procedura, trasferire i vetrini coprioggetti con il lato della cella verso l'alto in un vassoio coperto di pellicola di paraffina per risparmiare i reagenti e facilitare la manipolazione. Conservare e mantenere il terreno condizionato a 37 gradi Celsius per le fasi di incubazione e lavaggio.

Incubare le cellule con anticorpi primari diluiti in terreno condizionato a temperatura ambiente per 15 minuti. Successivamente, utilizzare una pipetta sottovuoto per aspirare con cura il terreno contenente anticorpi e lavare le cellule tre volte con terreno condizionato.

Se si studia l'espressione del recettore di superficie rispetto a quella intracellulare, fissare le cellule con paraformaldeide dopo questo passaggio come descritto nel protocollo di testo. Mantenere le cellule in terreni condizionati senza anticorpi e rimetterle nell'incubatore a 37 gradi Celsius per consentire l'internalizzazione. Se si studia il processo di internalizzazione, fissare le cellule con paraformaldeide dopo questo passaggio, come indicato nel protocollo di testo.

Per bloccare gli epitopi sull'anticorpo primario attaccato ai recettori espressi in superficie che non sono stati internalizzati, incubare le cellule con frammenti di anticorpi Fab anti-IgG non coniugati diluiti in terreno condizionato per 20 minuti a temperatura ambiente. Successivamente, lavare le celle tre volte con mezzi condizionati. Incubare i pozzetti lavati con terreno condizionato contenente 80 dinasori micromolari a 37 gradi Celsius per consentire il riciclaggio dei recettori internalizzati.

Dopo aver terminato le modifiche sulle cellule vive, lavare le cellule una volta con PBS+. Aggiungere alle cellule una soluzione di paraformaldeide al 4% e saccarosio al 4% in PBS e incubare in una cappa aspirante a temperatura ambiente per 7-8 minuti per fissare le cellule. Quindi, lavare le celle tre volte con PBS regolare. Aggiungere alle cellule una soluzione di siero di capra normale al 10% in PBS e incubare a temperatura ambiente per 30 minuti per bloccare i siti di legame aspecifici.

Successivamente, incubare le cellule con un anticorpo secondario marcato in fluorescenza diluito in NGS al 3% in PBS a temperatura ambiente per un'ora per marcare i recettori primari marcati con anticorpi. Successivamente, lavare le celle tre volte con PBS.

Per iniziare a marcare i recettori intracellulari, aggiungere una soluzione di Triton-X allo 0,25% in PBS e incubare a temperatura ambiente per 5-10 minuti per permeabilizzare le cellule. Quindi, bloccare con il 10% di NGS a temperatura ambiente per 30 minuti. Se si studia la superficie rispetto al totale, incubare le cellule con lo stesso anticorpo primario utilizzato in precedenza, diluito in NGS al 3% in PBS a temperatura ambiente per un'ora per marcare i recettori intracellulari.

Quindi, lavare le celle tre volte con PBS. Etichetta con secondo anticorpo secondario marcato in fluorescenza diluito in NGS al 3% in PBS a temperatura ambiente per un'ora. Successivamente, lavare le celle tre volte con PBS. Innanzitutto, posizionare delicatamente i vetrini, con la cella rivolta verso il basso, su 12-15 microlitri del terreno di montaggio appropriato per montare le cellule. Quindi, visualizza le cellule sul microscopio confocale appropriato e analizza le cellule come descritto nel protocollo di testo.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026