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Iniziate assemblando un vetrino di analisi microarray pretrattato con punti distinti contenenti anticorpi di cattura specifici per la proteina per la rilevazione di più proteine.
Caricare le diluizioni dello standard proteico e i campioni di siero pre-diluiti in pozzetti separati. Queste diluizioni creano una gamma di concentrazioni proteiche per una quantificazione accurata.
Incubare per facilitare le interazioni proteina-anticorpo. Lavare per rimuovere le proteine non legate, smontare e asciugare il vetrino.
Capovolgere il vetrino di analisi in un apparecchio a scatto contenente un vetrino di trasferimento reidratato individuato con anticorpi di rilevazione biotinilati specifici per la proteina nelle stesse posizioni del vetrino di prova.
Chiudere l'apparecchio e premere per far scattare i vetrini l'uno sull'altro. Ciò facilita il trasferimento degli anticorpi di rilevazione nei punti corrispondenti sul vetrino del saggio, riducendo al minimo la reattività crociata.
Separare i vetrini per consentire l'interazione degli anticorpi di rilevamento con le proteine legate, formando immunocomplessi.
Rimontare il vetrino, sciacquarlo e introdurre la streptavidina coniugata con fluorofori, che interagisce con gli anticorpi biotinilati.
Utilizzando uno scanner, è possibile rilevare i punti di fluorescenza in varie posizioni, indicando più proteine nel campione di siero. Confrontare le intensità spot con lo standard per la quantificazione delle proteine.
Per iniziare il test immunologico, rimuovere il vetrino preparato dal congelatore e lasciarlo riscaldare a temperatura ambiente nella sua busta sigillata per 30 minuti. Preparare sette soluzioni diluite in serie di proteine in PBS con polisorbato-20 allo 0,05%. Preparare soluzioni campione opportunamente diluite nello stesso tampone.
Fissare una guarnizione in silicone a 24 pozzetti sul vetrino del saggio a temperatura ambiente. Caricare le sette diluizioni proteiche in sette degli otto pozzetti di una colonna. Caricare il PBS privo di proteine con polisorbato-20 allo 0,05% nell'ultimo pozzetto di quella colonna. Caricare le soluzioni campione nei pozzetti rimanenti.
Agitare i vetrini a 450 giri/min per 1 ora a temperatura ambiente o a 4 gradi Celsius durante la notte. Quindi, lavare il vetrino tre volte. Rimuovere la guarnizione e asciugare il vetrino sotto un getto di azoto gassoso.
Quindi, lasciare che il vetrino di trasferimento degli anticorpi di rilevamento si riscaldi a temperatura ambiente per 30 minuti nella sua busta sigillata. Quindi, incubare i vetrini per 20 minuti in una camera chiusa con un'umidità relativa del 60% per reidratare gli array. Utilizzare i perni pogo per fissare il vetrino di trasferimento di rilevamento rivolto verso l'alto nell'apparecchio a scatto.
Posizionare il vetrino del test a faccia in giù sui perni pogo e allineare il vetrino con i perni dritti. Chiudere l'apparecchiatura e trasferire a scatto gli anticorpi di rilevamento sul vetrino del saggio. Rimuovere i vetrini dall'apparecchio e incubare il vetrino per un'ora.
Fissare una guarnizione in silicone a 24 pozzetti al vetrino e lavare il vetrino tre volte. Quindi, caricare in ciascun pozzetto 80 microlitri di una soluzione da 2,5 microgrammi per millilitro di streptavidina fluoroforo in PBS. Agitare il vetrino a 450 giri/min per 20 minuti.
Lavare il vetrino tre volte con una soluzione allo 0,1% di polisorbato-20 in PBS e una volta con acqua distillata. Quindi, rimuovere la guarnizione e asciugare la slitta. Scansiona il vetrino con uno scanner fluorescente e misura l'intensità dello spot. Determinare i limiti di rilevamento e le concentrazioni proteiche.