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Prelevare il tessuto polmonare murino tritato in un tampone di digestione e incubarlo a una temperatura fisiologica.
Gli enzimi tampone scompongono la matrice tissutale, allentando le cellule.
Triturare per dissociare la massa cellulare e filtrare la sospensione utilizzando un colino per isolare le singole cellule.
Centrifugare per rimuovere il surnatante con i detriti di tessuto. Incubare le cellule con un tampone di lisi per lisare i globuli rossi.
Centrifugare per scartare il surnatante contenente detriti cellulari. Risospendere le cellule e trasferirle su una micropiastra.
Aggiungere anticorpi per bloccare i recettori Fc, prevenendo la colorazione di fondo.
Introdurre un cocktail di anticorpi marcati con fluorofori mirati a specifici marcatori di superficie sulle cellule immunitarie innate: monociti, macrofagi, cellule dendritiche, cellule natural killer, neutrofili, eosinofili e cellule immunitarie adattative, linfociti B e T.
Fissare e permeabilizzare le cellule. Aggiungere anticorpi marcati con fluorofori specifici per un marcatore intracellulare su monociti, macrofagi, cellule dendritiche ed eosinofili.
Utilizzando la citometria a flusso, classificare le cellule immunitarie marcate.
Trasferire il polmone in una capsula di Petri. Tritarlo con due bisturi sottili, quindi metterlo in un tubo conico da 50 millilitri. Aggiungere 5 millilitri di tampone digestivo per lavare il piatto. Fissare il coperchio della provetta e digerire il polmone per 30 minuti su uno shaker orbitale a una velocità di 150 rotazioni al minuto a 37 gradi Celsius. Arrestare la reazione aggiungendo 10 millilitri di tampone BSA freddo.
Dopo la digestione, mescolare e sciogliere i pezzi di polmone utilizzando un ago calibro 18. Posizionare un filtro da 70 micrometri sopra un nuovo tubo conico da 50 millilitri e trasferire la miscela polmonare digerita nel filtro.
Utilizzare il lato in gomma di uno stantuffo della siringa da 10 millilitri per rompere i pezzi di polmone rimanenti sul filtro e lavarlo con un tampone BSA. Centrifugare la sospensione monocellulare a 350 g per 8 minuti a 7 gradi Celsius. Scartare il surnatante e risospendere le cellule in 1 millilitro di tampone di lisi ACK. Mescolare la sospensione con una pipetta da 1 millilitro e incubarla per 90 secondi a temperatura ambiente.
Aggiungere 10 millilitri di tampone BSA freddo alla miscela di reazione e centrifugarla a 350 g per 7 minuti a 4 gradi Celsius. Scartare il surnatante. Risospendere il pellet nel tampone di colorazione e contare le cellule utilizzando un emocitometro. Risospendere le cellule a una concentrazione di 5 milioni di cellule per millilitro per la colorazione superficiale.
Trasferire 1 milione di cellule in 200 microlitri per pozzetto in una piastra a 96 pozzetti e centrifugare la piastra a 350 g per 7 minuti a 4 gradi Celsius. Preparare una soluzione di blocco per citometria a flusso diluendo l'anticorpo anti-16/32 nel tampone di colorazione.
Risospendere le cellule in 50 microlitri della soluzione di blocco per citometria a flusso. Incubare la sospensione per 15-20 minuti a 4 gradi Celsius o con ghiaccio. Quindi, aggiungere 150 microlitri di tampone colorante alla piastra e centrifugarla a 350 g per 5 minuti a 4 gradi Celsius.
Preparare la soluzione di anticorpi di superficie diluendo gli anticorpi di superficie nel tampone di colorazione. Risospendere le cellule in 50 microlitri della soluzione di anticorpi di superficie e incubare la piastra a 4 gradi Celsius al buio. Quindi, lavare le celle due volte con un tampone colorante.
Preparare il tampone di fissazione e permeabilizzazione mescolando tre parti di diluente per la fissazione e la permeabilizzazione e una parte di tampone per la colorazione. Risospendere le cellule in 50 microlitri di tampone prepreparato per pozzetto della piastra a 96 pozzetti e incubarle per 20-25 minuti a 4 gradi Celsius al buio.
Diluire il tampone di permeabilizzazione con acqua deionizzata purificata per preparare un tampone di permeabilizzazione una tantum e utilizzarlo per lavare le cellule. Preparare una soluzione di anticorpi intracellulari diluendo con 1 millilitro di tampone di permeabilizzazione. Risospendere le cellule in 50 microlitri della soluzione di anticorpi intracellulari diluita per pozzetto della piastra a 96 pozzetti e incubare per 40 minuti a 4 gradi Celsius al buio.
Lavare le cellule con il tampone di permeabilizzazione, quindi con il tampone di colorazione. Dopo il lavaggio finale, risospendere le cellule in 200 microlitri di tampone colorante. Acquisire un minimo di 1,5 milioni di cellule per campione sul citometro a flusso.