JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 visualizzazioni • 3:34 min • July 8th, 2025
Inizia con cellule di mammifero infettate da virus che producono più caspasi, inclusa la caspasi-3.
Aggiungere un terreno di coltura al pozzetto di controllo e un terreno integrato con inibitore della caspasi-3 al pozzetto del test.
Nel pozzetto di controllo, la caspasi-3 riconosce e degrada le nucleoproteine virali e le proteine dell'ospite essenziali per la propagazione virale.
Nel pozzetto del test, l'inibitore entra nella cellula, inibendo l'attività della caspasi-3 e prevenendo la degradazione delle proteine.
Staccare le celle dalla piastra. Aggiungere un reagente lisanti e riscaldare per indurre la lisi cellulare, rilasciando proteine intracellulari.
Caricare entrambi i campioni su un gel di poliacrilammide SDS e su un elettroforese per separare le proteine in base alle dimensioni.
Dopo l'elettroforesi, trasferire il gel su una membrana assorbente.
Trattare la membrana con anticorpi primari contro le nucleoproteine virali e le proteine dell'ospite.
Lavare e sovrapporre con anticorpi secondari coniugati con fluorofori che si legano agli anticorpi primari, generando bande fluorescenti.
La maggiore fluorescenza nel campione di prova indica una ridotta scissione virale e proteica dell'ospite mediata dalla caspasi-3 rispetto al controllo.
Per iniziare, seminare le cellule MDCK o A549 in una piastra di coltura cellulare a 12 pozzetti, incubare le cellule durante la notte a 37 gradi Celsius in un'atmosfera di anidride carbonica al 5%. Il giorno successivo, rimuovere il vecchio terreno di coltura dalle cellule e lavare le cellule in ciascun pozzetto due volte con 1 millilitro di MEM privo di siero.
Quindi infettare le cellule aggiungendo 400 microlitri di inoculo del virus dell'influenza A e posizionare la piastra per l'incubazione per un'ora. Dopo l'incubazione, rimuovere l'inoculo virale e lavare le cellule con MEM. Aggiungere 1 millilitro di MEM privo di siero a ciascun pozzetto e incubare le cellule come mostrato nel passaggio precedente.
Dopo 24 ore, raccogliere le cellule raschiandole con uno stantuffo della siringa da 1 millilitro e trasferirle in una provetta da 1,5 millilitri. Centrifugare la provetta a 12.000 g per due minuti a temperatura ambiente e raccogliere il surnatante. Lavare il pellet cellulare con 250 microlitri di soluzione salina tamponata con fosfato e centrifugare. Rimuovere il surnatante e aggiungere 100 microlitri di tampone di lisi cellulare. Mescolare a vortice.
Riscaldare la provetta a 98 gradi Celsius per 10 minuti per lisare completamente le cellule. Quindi, risolvere quantità uguali di proteine da campioni non infetti e infetti mediante elettroforesi su gel di poliacrilammide SDS standard. Dopo l'elettroforesi, trasferire il gel proteico su una membrana di nitrocellulosa o PVDF ed eseguire il western blotting. Confrontare i livelli di proteine nelle corsie dei campioni infetti trattate con mock e inibitori.
Questo studio indaga il ruolo della caspasi-3 nella degradazione delle nucleoproteine virali e delle proteine dell'ospite in cellule mammifere infettate da virus. Utilizzando un inibitore della caspasi-3, la ricerca mira a chiarire l'impatto dell'attività della caspasi-3 sul taglio delle proteine e sulla propagazione virale.
La scissione proteica mediata dalle caspasi nelle cellule infette da virus rappresenta un punto di controllo meccanicistico fondamentale per comprendere le interazioni tra ospite e patogeno e per la validazione degli obiettivi nella scoperta di antivirali. La valutazione quantitativa dell'attività delle caspasi e della sua inibizione fornisce un grado di affidabilità predittiva nella modulazione del percorso e supporta l'avanzamento, corretto in base al rischio, di candidati antivirali. Questo flusso di lavoro consente ai team della biotecnologia farmaceutica di ridurre i rischi nelle decisioni di scoperta precoce chiarificando l'impatto funzionale dell'attività delle caspasi sulla stabilità delle proteine virali e dell'ospite.
Questo metodo si integra nelle fasi iniziali di scoperta e di validazione del bersaglio, collegando l'analisi meccanicistica allo sviluppo di saggi e alla valutazione preclinica nei processi di ricerca e sviluppo antivirali.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026