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Neuroscienze
0 visualizzazioni • 5:42 min • July 8th, 2025
Prendi una micropiastra con una coltura aderente di cellule gliali derivate da un cervello di ratto. La coltura contiene astrociti, microglia e oligodendrociti.
Rimuovere il terreno, incubare con una soluzione enzimatica per staccare le cellule, quindi trasferirle in una provetta.
Centrifugare e rimuovere il surnatante con i detriti cellulari. Risospendere le cellule in un mezzo caldo.
Triturare con una siringa per rompere i grumi cellulari e filtrare con un colino per ottenere una sospensione unicellulare.
Aggiungi un biopolimero fotoreticolabile, agenti reticolanti e componenti della matrice extracellulare.
Versare il composto in uno stampo attaccato a un vetrino coprioggetti. Esporre la miscela alla luce ad alta intensità per indurre la reticolazione, formando un gel e incapsulando le cellule gliali.
Togliete lo stampo e mettete i vetrini coprioggetti in una micropiastra. Aggiungere un terreno caldo e incubare il gel in condizioni fisiologiche.
Le cellule proliferano all'interno della matrice extracellulare di supporto e creano una rete cellulare, stabilendo una coltura tridimensionale di cellule gliali.
24 ore prima dell'incapsulamento cellulare, aspirare il terreno da colture primarie di due settimane e aggiungere 1 millilitro di terreno fresco a ciascun pozzetto. Il giorno dell'incapsulamento cellulare, preparare 12,5 millilitri di tripsina diluita e 25 millilitri di terreno per ogni piastra a 12 pozzetti e scaldare a 37 gradi Celsius a bagnomaria. Quindi, utilizzare una pipetta sierologica da 10 millilitri per aggiungere circa 1 millilitro di tripsina diluita a ciascun pozzetto della piastra a 12 pozzetti.
Incubare per 20-30 minuti a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica fino a quando lo strato cellulare confluente non si stacca dalla piastra. Dopo l'incubazione, utilizzare una pipetta da 1 millilitro per recuperare le cellule staccate, che dovrebbero apparire come un unico pezzo galleggiante, e trasferirle in una provetta da centrifuga conica da 15 millilitri. Diluire con un volume equivalente di terreno e centrifugare a 200 volte g per 2 minuti a temperatura ambiente.
Dopo la centrifugazione, scartare il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 10 millilitri di terreno caldo. Triturare le cellule cinque volte con la pipetta, quindi centrifugare nuovamente a 200 volte g per due minuti. Dopo la centrifuga, decantare il surnatante, risospendere le cellule in 5 millilitri di terreno caldo e trasferire le cellule in una provetta da centrifuga conica da 50 millilitri.
Quindi, utilizzando una siringa da 10 millilitri con un ago calibro 18, triturare la soluzione cellulare tre volte e filtrare la sospensione attraverso un setaccio cellulare da 40 micron in una nuova provetta da centrifuga conica. Quindi, raccogliere 10 microlitri di sospensione cellulare e diluire da 1 a 100 in terreno caldo e contare le cellule con un contatore di cellule automatizzato.
Incubare le cellule rimanenti in un bagno d'acqua a 37 gradi Celsius fino alla fase di incapsulamento. Scaldare 12,5 millilitri di terreno naive e 12,5 millilitri di terreno condizionato per ogni pianta Piastra a 12 pozzetti di idrogel 3D. Quindi, pesare 7 milligrammi di HAMA per pianta con piastra a 12 pozzetti e aggiungere al filtro sterile per una concentrazione del 2% in peso per volume. Sonicare la soluzione per 60 minuti a 20 kilohertz fino a quando l'HAMA non è completamente disciolto.
Durante la sonicazione, preparare singole soluzioni al 10% di TEA e NVP. Preparare anche una soluzione da 1 millimolare di eosina in aliquote da 1 millilitro di PBS sterile. Quindi, per ogni piastra a 12 pozzetti, creare una miscela finale da 1,4 1,4 millilitri di 1 x 107 cellule, 0,5% HAMA, 20% miscela di lamina basale in PBS, 0,1% TEA, 0,1% NVP e 0,01 millimolare eosina Y.
Dopo aver mescolato delicatamente la soluzione, utilizzare una pipetta dotata di puntale da 1 millilitro per erogare 100 microlitri in ogni stampo PDMS. Quindi, esporre i campioni a una luce LED verde ad alta intensità in una scatola chiusa per 5 minuti a temperatura ambiente.
L'esposizione di cinque minuti al LED verde è essenziale per formare il gel 3D. Il colore rosso introdotto dall'eosina Y diventerà trasparente e indicherà la fine della reazione.
Quindi, aggiungere 1 millilitro di terreno caldo e condizionato a ciascun pozzetto di una piastra a 12 pozzetti; afferrare ciascun vetrino coprioggetti tra pollice e indice e utilizzare una pinzetta curva per staccare lentamente lo stampo PDMS senza spostare il gel. Mettere lo stampo in una fontana con terreno condizionato.
La rimozione dello stampo è il passaggio più impegnativo. Dovrebbe essere fatto con la massima cura per evitare di spostare il gel e fratturare il vetrino coprioggetti. Questo può richiedere pratica.
Dopo che tutti gli stampi sono stati trasferiti nei pozzetti della piastra, aggiungere un ulteriore 1 millilitro di terreno caldo DMEM/F12 a ciascun pozzetto. Incubare le piastre a 37 gradi Celsius con il 5% di anidride carbonica per due settimane prima dell'imaging.
In questo articolo viene descritto un metodo per incapsulare cellule gliali in una matrice idrogel tridimensionale. Il processo prevede il distacco delle cellule da una coltura, la preparazione di una sospensione cellulare e l'incrocio di un biopolimero per formare un gel di supporto.
La creazione di modelli di cellule gliali fisiologicamente rilevanti è fondamentale per la validazione degli obiettivi nella neuroinfiammazione e per la riduzione dei rischi meccanicistici nella scoperta di farmaci per il sistema nervoso centrale. Questo metodo di incapsulamento in idrogel 3D consente sistemi riproducibili e pertinenti alle malattie, sostenendo una maggiore affidabilità predittiva nei test iniziali delle ipotesi sugli obiettivi. Fornendo una piattaforma scalabile per la proliferazione delle cellule gliali e la formazione di reti cellulari, la tecnica affronta un punto critico nella biologia della scoperta, in cui la continuità traslazionale dai modelli in vitro a quelli in vivo è spesso limitata.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dalla validazione del bersaglio all'identificazione del composto leader, fornendo una piattaforma potenziata dai glia per lo screening meccanicistico e la valutazione fenotipica prima dell'impegno preclinico.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026