Stabilire una coltura tridimensionale di cellule gliali derivate dal cervello di ratto

0 visualizzazioni5:42 min • July 8th, 2025

Prendi una micropiastra con una coltura aderente di cellule gliali derivate da un cervello di ratto. La coltura contiene astrociti, microglia e oligodendrociti.

Rimuovere il terreno, incubare con una soluzione enzimatica per staccare le cellule, quindi trasferirle in una provetta.

Centrifugare e rimuovere il surnatante con i detriti cellulari. Risospendere le cellule in un mezzo caldo.

Triturare con una siringa per rompere i grumi cellulari e filtrare con un colino per ottenere una sospensione unicellulare.

Aggiungi un biopolimero fotoreticolabile, agenti reticolanti e componenti della matrice extracellulare.

Versare il composto in uno stampo attaccato a un vetrino coprioggetti. Esporre la miscela alla luce ad alta intensità per indurre la reticolazione, formando un gel e incapsulando le cellule gliali.

Togliete lo stampo e mettete i vetrini coprioggetti in una micropiastra. Aggiungere un terreno caldo e incubare il gel in condizioni fisiologiche.

Le cellule proliferano all'interno della matrice extracellulare di supporto e creano una rete cellulare, stabilendo una coltura tridimensionale di cellule gliali.

24 ore prima dell'incapsulamento cellulare, aspirare il terreno da colture primarie di due settimane e aggiungere 1 millilitro di terreno fresco a ciascun pozzetto. Il giorno dell'incapsulamento cellulare, preparare 12,5 millilitri di tripsina diluita e 25 millilitri di terreno per ogni piastra a 12 pozzetti e scaldare a 37 gradi Celsius a bagnomaria. Quindi, utilizzare una pipetta sierologica da 10 millilitri per aggiungere circa 1 millilitro di tripsina diluita a ciascun pozzetto della piastra a 12 pozzetti.

Incubare per 20-30 minuti a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica fino a quando lo strato cellulare confluente non si stacca dalla piastra. Dopo l'incubazione, utilizzare una pipetta da 1 millilitro per recuperare le cellule staccate, che dovrebbero apparire come un unico pezzo galleggiante, e trasferirle in una provetta da centrifuga conica da 15 millilitri. Diluire con un volume equivalente di terreno e centrifugare a 200 volte g per 2 minuti a temperatura ambiente.

Dopo la centrifugazione, scartare il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 10 millilitri di terreno caldo. Triturare le cellule cinque volte con la pipetta, quindi centrifugare nuovamente a 200 volte g per due minuti. Dopo la centrifuga, decantare il surnatante, risospendere le cellule in 5 millilitri di terreno caldo e trasferire le cellule in una provetta da centrifuga conica da 50 millilitri.

Quindi, utilizzando una siringa da 10 millilitri con un ago calibro 18, triturare la soluzione cellulare tre volte e filtrare la sospensione attraverso un setaccio cellulare da 40 micron in una nuova provetta da centrifuga conica. Quindi, raccogliere 10 microlitri di sospensione cellulare e diluire da 1 a 100 in terreno caldo e contare le cellule con un contatore di cellule automatizzato.

Incubare le cellule rimanenti in un bagno d'acqua a 37 gradi Celsius fino alla fase di incapsulamento. Scaldare 12,5 millilitri di terreno naive e 12,5 millilitri di terreno condizionato per ogni pianta Piastra a 12 pozzetti di idrogel 3D. Quindi, pesare 7 milligrammi di HAMA per pianta con piastra a 12 pozzetti e aggiungere al filtro sterile per una concentrazione del 2% in peso per volume. Sonicare la soluzione per 60 minuti a 20 kilohertz fino a quando l'HAMA non è completamente disciolto.

Durante la sonicazione, preparare singole soluzioni al 10% di TEA e NVP. Preparare anche una soluzione da 1 millimolare di eosina in aliquote da 1 millilitro di PBS sterile. Quindi, per ogni piastra a 12 pozzetti, creare una miscela finale da 1,4 1,4 millilitri di 1 x 107 cellule, 0,5% HAMA, 20% miscela di lamina basale in PBS, 0,1% TEA, 0,1% NVP e 0,01 millimolare eosina Y.

Dopo aver mescolato delicatamente la soluzione, utilizzare una pipetta dotata di puntale da 1 millilitro per erogare 100 microlitri in ogni stampo PDMS. Quindi, esporre i campioni a una luce LED verde ad alta intensità in una scatola chiusa per 5 minuti a temperatura ambiente.

L'esposizione di cinque minuti al LED verde è essenziale per formare il gel 3D. Il colore rosso introdotto dall'eosina Y diventerà trasparente e indicherà la fine della reazione.

Quindi, aggiungere 1 millilitro di terreno caldo e condizionato a ciascun pozzetto di una piastra a 12 pozzetti; afferrare ciascun vetrino coprioggetti tra pollice e indice e utilizzare una pinzetta curva per staccare lentamente lo stampo PDMS senza spostare il gel. Mettere lo stampo in una fontana con terreno condizionato.

La rimozione dello stampo è il passaggio più impegnativo. Dovrebbe essere fatto con la massima cura per evitare di spostare il gel e fratturare il vetrino coprioggetti. Questo può richiedere pratica.

Dopo che tutti gli stampi sono stati trasferiti nei pozzetti della piastra, aggiungere un ulteriore 1 millilitro di terreno caldo DMEM/F12 a ciascun pozzetto. Incubare le piastre a 37 gradi Celsius con il 5% di anidride carbonica per due settimane prima dell'imaging.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026