Isolamento di neuroni marcati in fluorescenza da un cervello murino

0 visualizzazioni4:35 min • July 8th, 2025

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Prendiamo una corteccia di topo transgenica contenente neuroni fluorescenti che esprimono proteine.

Fissarlo su un portacampioni.

Montare il supporto sul vassoio del vibratomo contenente aCSF ossigenato per mantenere le condizioni fisiologiche del tessuto.

Utilizzando i parametri impostati, ottenere fette coronali.

Metti le fette in un supporto a rete contenente aCSF ossigenato e bloccanti dell'attività per stabilizzarle.

Trattare le fette con proteasi per digerire la matrice extracellulare e sciogliere le cellule.

Lavare con aCSF per rimuovere le proteasi.

Trasferire le fette su una piastra di coltura con aCSF e siero.

Sotto un microscopio a fluorescenza, sezionare le regioni della fetta contenenti neuroni fluorescenti.

Trasferire i frammenti sezionati in una provetta contenente aCSF e siero.

Dissociare meccanicamente il tessuto per formare una sospensione unicellulare. Trasferire le cellule in una piastra di coltura contenente aCSF.

Sotto un microscopio a fluorescenza, utilizzare una pipetta capillare per raccogliere i neuroni fluorescenti.

Dispensa questi neuroni in una piastra di coltura contenente aCSF per ulteriori analisi.

Seziona il cervello da un topo soppresso aprendo il cranio con una piccola forbice ed estraendo il cervello fresco usando una pinza fine senza danneggiare la corteccia. Posizionare il cervello in aCSF raffreddato e ossigenato, lasciando una pietra porosa attaccata al 5% di ossigeno bilanciato con anidride carbonica durante l'intera durata del sezionamento.

Posizionare il cervello sul mandrino vibrante e tagliare le sezioni coronali o sagittali a uno spessore di 300 micron. Raccogli tutte le sezioni necessarie per ottenere un minimo di 10-50 celle etichettate. Mettere le fette su un portafette a rete di cotone posto all'interno di un becher in modo che siano immerse in aCSF ossigenato.

Spostare le fette nel becher contenente aCSF con bloccanti dell'attività e bloccare per 15-20 minuti a temperatura ambiente mentre l'ossigeno gorgoglia con una pietra porosa. Spostare le fette nel becher contenente aCSF con la soluzione di proteasi per eseguire una digestione delicata a temperatura ambiente. Dopo la digestione, lavare via la proteasi spostando nuovamente le fette nel becher contenente aCSF con soluzione bloccante dell'attività per 5-10 minuti a temperatura ambiente. Continua a far gorgogliare ossigeno.

Successivamente, preparare una piastra di Petri da 100 millimetri contenente aCSF con l'1% di FBS a temperatura ambiente e spostare le singole sezioni nella piastra per la microdissezione. Sotto un cannocchiale di dissezione fluorescente, utilizzare un paio di pinze sottili per micro-sezionare aree e strati di interesse con un minimo di 10-50 cellule.

Utilizzando una pipetta Pasteur, spostare i pezzi micro-sezionati in una provetta da microcentrifuga da 2 millilitri contenente circa 0,8 millilitri di FBS all'1% in soluzione aCSF. Triturare il tessuto sezionato nella provetta per microfugo a temperatura ambiente.

Eseguire circa 10 colpi con ciascuna delle pipette Pasteur fiammate, iniziando dalla più grande e terminando con il diametro di uscita più piccolo. Erogare le cellule dissociate in una capsula di Petri da 100 millilitri contenente aCSF ossigenato e attendere da 5 a 7 minuti affinché le cellule si stabilizzino gradualmente.

Osservare il segnale GFP e RFP al microscopio da dissezione. Identifica i detriti esaminando la morfologia sotto l'illuminazione in campo chiaro. Una volta identificata un'area di cellule con pochi detriti, utilizzare il capillare e il tubo collegato per prelevare le cellule bloccando l'estremità della valvola del tubo con la lingua. Quindi, posizionare il capillare vicino alle cellule. Rilasciare il blocco sul capillare e bloccare rapidamente di nuovo per catturare la cellula utilizzando l'azione capillare.

Spostare il capillare in una piastra di Petri da 100 millimetri con aCSF ossigenato fresco e soffiare delicatamente nel tubo osservando la punta del capillare sotto l'ottica di fluorescenza per erogare le cellule nella piastra. Ripetere la procedura di raccolta fino a quando non vengono raccolte da 100 a 150 celle, assicurandosi che i contaminanti come i detriti siano minimi nelle ottiche a contrasto interferenziale differenziale in campo chiaro.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026