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Inizia con il tessuto periventricolare del midollo spinale di un ratto adulto, una regione ricca di cellule staminali/progenitrici neurali.
Trasferire il tessuto in una soluzione contenente papaina e DNasi.
La papaina, un enzima proteolitico, slega la matrice extracellulare del tessuto, mentre la DNasi degrada il DNA contaminante rilasciato dalle cellule danneggiate.
Dissociare meccanicamente il tessuto per ottenere una sospensione unicellulare.
Trasferire la sospensione in una provetta e centrifugarla. Rimuovere il surnatante. Risospendere le cellule in una soluzione contenente proteina albumina e un inibitore della proteasi.
L'albumina e l'inibitore disattivano la papaina.
Sovrapporre la sospensione cellulare su una soluzione contenente albumina e un inibitore della proteasi.
La differenza di densità tra gli strati forma un gradiente di densità discontinuo.
Centrifuga per depositare le cellule intatte, mentre i frammenti della membrana cellulare rimangono all'interfaccia.
Scartare il surnatante. Risospendere le cellule nei terreni di crescita e piastrarle.
I fattori di crescita promuovono selettivamente la proliferazione delle cellule staminali/progenitrici neurali e la loro aggregazione in neurosfere tridimensionali.
Per iniziare l'isolamento delle cellule staminali neurali di ratto, utilizzare le micro-forbici per tritare il tessuto periventricolare sezionato in pezzi di 1 millimetro cubo. Successivamente, preparare il tampone di dissociazione enzimatica aggiungendo prima 5 millilitri di soluzione salina bilanciata di Earl a una fiala di papaina da un kit di dissociazione della papaina.
Posizionare la fiala a 37 gradi Celsius per 10 minuti, in modo che la papaina sia completamente sciolta e la soluzione appaia limpida. Quindi, aggiungere 500 microlitri di soluzione salina bilanciata di Earl alla fiala di DNasi del kit di dissociazione e mescolare delicatamente.
Aggiungere 250 microlitri della soluzione di DNasi al flaconcino contenente papaina e mescolare delicatamente. Quindi, aggiungere il fazzoletto tritato, circa 0,2 grammi, nella fiala e posizionare la fiala su una piattaforma a dondolo a 37 gradi Celsius per 45 minuti a un'ora.
Dopo l'incubazione, triturare la miscela con una pipetta da 10 millilitri per dissociare eventuali pezzi di tessuto rimanenti e ottenere una sospensione cellulare torbida. Trasferire la sospensione cellulare in una provetta conica sterile da 15 millilitri e centrifugare a 300 g per 5 minuti a temperatura ambiente.
Durante la centrifugazione, preparare la soluzione di ovomucoide mescolando 2,7 millilitri di soluzione salina bilanciata di Earl con 300 microlitri di soluzione di inibitore degli ovomucoidi di albumina ricostituita in una provetta conica da 15 millilitri. Aggiungere 150 microlitri della soluzione di DNasi precedentemente preparata alla soluzione di ovomucoidi e mescolare capovolgendo la provetta.
Scartare il surnatante dalle cellule pellettate e risospendere immediatamente il pellet cellulare nella miscela diluita DNasi-inibitore dell'albumina. Successivamente, preparare un gradiente di densità discontinuo aggiungendo 5 millilitri di soluzione di inibitore dell'albumina a una provetta da 15 millilitri e, utilizzando una pipetta da 5 millilitri, sovrapporre delicatamente e lentamente la sospensione cellulare sopra la soluzione di inibitore dell'albumina.
Centrifugare il campione a 70 g per sei minuti a temperatura ambiente. Una volta terminato, scartare il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 1 millilitro di terreno EFH di ratto preriscaldato che viene preparato come descritto nel protocollo di testo allegato.
Contare la densità delle cellule vive con un emocitometro e piastreggiare le cellule in un pallone di coltura T25 a una densità di 10 cellule per microlitro in EFH. Incubare i palloni a 37 gradi Celsius in anidride carbonica al 5% e lasciare che le colture crescano indisturbate per una settimana per evitare l'aggregazione di sfere.