Microiniezione stereotassica di un vettore virale per la manipolazione genica in uno striato di cucciolo di topo

0 visualizzazioni4:15 min • August 7th, 2025

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Prendiamo un cucciolo di topo geneticamente modificato che porta una cassetta STOP fiancheggiata da loxP che blocca l'espressione della proteina fluorescente rossa o RFP.

Fissare il cucciolo su un telaio stereotassico su misura e coprirlo con ghiaccio per mantenere l'anestesia.

Disinfettare il cuoio capelluto e contrassegnare lambda come punto di riferimento.

Allineare l'ago per iniezione alle coordinate striatali relative alla lambda e perforare il cranio.

Ritrarre l'ago sulla superficie del cranio, quindi inserirlo nella profondità desiderata.

Iniettare il vettore virale miscelato con colorante nello striato a una velocità controllata. Il vettore codifica per le proteine fluorescenti verdi o GFP e Cre ricombinasi.

Estrarre lentamente l'ago per evitare il riflusso della soluzione.

Rimuovi il cucciolo e consenti il recupero.

Nelle cellule striatali, il virus rilascia il suo genoma, consentendo l'espressione della Cre ricombinasi e della GFP. Cre asporta la cassetta STOP fiancheggiata da loxP, attivando l'espressione di RFP.

L'espressione simultanea di GFP e RFP conferma il successo della manipolazione genica.

Posiziona il cucciolo con il guanto nel vassoio per la testa e metti del ghiaccio tritato attorno al manicotto in lattice per mantenere l'anestesia dell'ipotermia. Quindi strofina la testa del cucciolo con etanolo al 70% e individua il punto di riferimento lambda. Segnalo con un pennarello. Quindi puntare la punta dell'ago verso la lambda e impostare le coordinate laterali anteriori, posteriori e mediali su zero.

Successivamente, consultando un atlante cerebrale, spostare il braccio di iniezione nel sito bersaglio. Ad esempio, lo striato dei cuccioli di P2 è 2,4 millimetri anteriormente alla lambda, 1,0 millimetri su entrambi i lati della linea mediana e 1,7 millimetri ventrale. Quindi, segnare la posizione del colorante verde veloce sul tubo PE10 usando una penna. Quindi inizia lentamente a penetrare l'ago attraverso la pelle e il cranio fino a quando la punta dell'ago non tocca la superficie del cranio.

Impostare la coordinata ventrale dorsale su zero. Quindi abbassare lentamente l'ago fino al sito target. Una volta in posizione, attendere un minuto per consentire al parenchima di tornare alla sua forma normale. Quindi eseguire il programma di microiniezione a 100 nanolitri al minuto. Durante l'iniezione, osservare il veloce movimento del colorante verde nel tubo in PE.

È fondamentale far penetrare lentamente l'ago attraverso la pelle e il cranio fino a quando la punta dell'ago non tocca la superficie del cranio. Durante l'iniezione, è imperativo osservare il colorante Fast Green muoversi nel tubo in PE.

Al termine dell'iniezione, attendere un minuto e poi sollevare lentamente l'ago fino a metà della profondità DV penetrata. Attendi poi altri 30 secondi prima di procedere con il lento ritiro dell'ago dalla testa del cucciolo.

Dopo il completamento dell'iniezione, è importante attendere un minuto prima di portare lentamente l'ago a metà della profondità DV penetrata, quindi attendere altri 30 secondi prima di ritirare lentamente l'ago dalla testa del cucciolo.

Dopo che tutti i siti mirati sono stati iniettati, riscalda il cucciolo per 20 minuti in un'incubatrice a 33 gradi Celsius.

Controlla il cucciolo ogni cinque minuti fino a quando non ha riacquistato la decubito sternale. Quindi riporta il cucciolo alla sua diga.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026