Somministrazione elettroforetica di GABA nel focolaio epilettico di un topo anestetizzato

0 visualizzazioni4:17 min • June 17th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Prendi un topo anestetizzato preparato per il posizionamento dell'impianto cerebrale.

Il topo ha una vite di messa a terra fissata al cranio a contatto con il cervelletto per la registrazione del segnale di riferimento.

Inserire la sonda collegata all'headstage e la vite di messa a terra nell'ippocampo per registrare l'attività neuronale.

Identificare le esplosioni sincronizzate di attività neuronale, confermando il posizionamento della sonda nello strato piramidale dell'ippocampo.

Quindi, inserire una pompa ionica microfluidica riempita di GABA nell'ippocampo, con un elettrodo sorgente nel suo canale. La vite di messa a terra fissata al cranio funge da elettrodo bersaglio.

Infine, inserire una micropipetta nell'ippocampo e iniettare un bloccante dei canali del potassio per indurre l'ipereccitabilità neuronale, innescando le convulsioni.

Applicare immediatamente la tensione alla pompa per generare un campo elettrico, guidando gli ioni GABA attraverso la membrana a scambio ionico fino al fuoco epilettico.

Il GABA induce l'afflusso di cloruri, riducendo l'eccitabilità neuronale e prevenendo le convulsioni, confermando l'efficacia della somministrazione elettroforetica.

Per l'inserimento di una sonda in silicone multicanale, posizionare la sonda sul braccio stereotassico collegato a un supporto magnetico. E posiziona il braccio accanto al telaio stereotassico. Impostare i bracci stereotassici con un leggero angolo anteriore posteriore di 20 gradi per lasciare ampio spazio per il posizionamento degli altri due impianti. E collegare la sonda allo stadio della testa e alla vite di messa a terra.

Utilizzare il braccio stereotassico preciso al micron per abbassare lentamente la sonda in silicone nell'ippocampo. E avviare il software di registrazione per registrare i segnali elettrici neuronali, spostando la sonda di silicio multicanale dalla parte superiore della corteccia fino a raggiungere la posizione dorso ventrale mirata.

Quindi registrare contemporaneamente il segnale del potenziale di campo locale dagli strati della corteccia e dell'ippocampo durante la penetrazione sullo schermo del computer e utilizzare l'attività di increspatura nello strato piramidale della formazione ippocampale nel potenziale di campo locale registrato come marcatore della zona target.

Per il riempimento della pompa ionica microfluidica, collegare i tubi all'ingresso della pompa e riempire la sonda con una soluzione GABA molare 0,05. Rimuovere i tubi e chiudere l'ingresso con un film di paraffina e assicurarsi che la pompa ionica microfluidica sia fissata saldamente al supporto. Prestare attenzione quando si monta il supporto sul braccio del micromanipolatore prima di collegare i cavi elettrici all'unità di misura della sorgente.

Con il braccio stereotassico ad un angolo mediolaterale di 20 gradi, abbassare lentamente la pompa con movimenti assiali il più vicino possibile alla sonda, senza lasciare che la pompa si pieghi fino a quando la pompa non raggiunge la coordinata ventrale dorsale, negativa a 1.200 micrometri dalla superficie corticale. In preparazione all'induzione della crisi, rimuovere il mozzo metallico dell'ago di una siringa da 10 microlitri e fissare una micropipetta in borosilicato sulla punta della siringa. Posizionare il mozzo sulla punta della micropipetta e posizionare la siringa con un angolo lateromediale di 20 gradi.

Utilizzare una micropompa di iniezione automatizzata per caricare da 500 a 1.000 nanolitri di aminopiridina completa da 50 millimolari nel liquido cerebrospinale artificiale nella siringa e abbassare la micropipetta di vetro nella posizione delle coordinate dorso-ventrali. Iniettare 250 nanolitri di soluzione nel cervello e avviare la registrazione nel software. Quindi guarda lo schermo e attendi che appaia il primo picco interictale, prima di applicare 1 volt tra la sorgente e il bersaglio per 100 secondi di accensione e 1 secondo di spegnimento per 30 cicli per erogare la soluzione GABA.

09:39

Stimolazione diretta correnti e multi-elettrodo Array registrazione di sequestro simile attività nei topi cervello fetta di preparazione

Video correlati

0 Visualizzazioni

07:32

Cellule intere correnti indotte dall'applicazione di Puff di GABA nelle fette del cervello

Video correlati

0 Visualizzazioni

06:45

Iniziazione di generazione e On-Demand di attività Ictal acuta nel tessuto umano e del roditore

Video correlati

0 Visualizzazioni

06:59

Le registrazioni EEG ad alta densità dei Topi muoversi liberamente utilizzando Polyimide a base di microelettrodi

Video correlati

0 Visualizzazioni

03:09

Impatto della stimolazione a corrente continua sulle crisi epilettiche evocate nelle fette di cervello di topo

Video correlati

0 Visualizzazioni

02:15

Stabilire un modello di crisi epilettica indotta da pentilenetetrazolo nei topi

Video correlati

0 Visualizzazioni

07:52

Registrazione simultanea elettrofisiologici e micro-iniezioni di agenti inibitori nel cervello del roditore

Video correlati

0 Visualizzazioni

06:58

Non restrittivo EEG Radiotelemetry: epidurale e Deep intracerebrale Stereotassica EEG Posizionamento degli elettrodi

Video correlati

0 Visualizzazioni

09:06

Manipolazione di epilettiforme Electrocorticograms (ECoGs) e sonno in ratti e topi con l'agopuntura

Video correlati

0 Visualizzazioni

10:08

Il modello di pilocarpina di epilessia del lobo temporale e monitoraggio EEG utilizzando il sistema di radiotelemetria in topi

Video correlati

0 Visualizzazioni

Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026