Name: Mouse enucleazione degli occhi per Remote ad alta velocità Fenotipizzazione (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 30 s
Description: Impara la tecnica di enucleazione oculare nel topo per la fissazione del tessuto in screening fenotipici ad alto rendimento. Questo metodo chirurgico aiuta i ricercatori a identificare i landmark anatomici chiave con precisione.

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La ricerca per prevenire la cecità; Bartly J. Mondino MD, direttore del Jules Stein Eye Institute, UCLA, e Ramiro Ramirez-Solis, Jacqui bianco, e Jeanne Estabel presso l&#39;Istituto Sanger, Wellcome Trust Genome Campus. Questa ricerca è conforme con la dichiarazione ARVO per l&#39;uso di animali in oftalmica e di ricerca visiva.

1. Scollamento: enucleazione dell'occhio mouse in campioni non fissati <ol><li> Separare le palpebre per migliorare l'esposizione e l'accesso al mondo posteriore (bulbo oculare) di superficie. </li><li> Posizionare una pinza curva medicazione dietro (sotto) il globo in orbita (cavità oculare). Il Mahajan Sharptip medicazione pinza è uno strumento personalizzato con punte appuntite per rendere questo passaggio più facile (vedi materiali e reagenti tabella). </li><li> Chiudere la pinza e afferrare il tessuto connettivo orbitale e del nervo ottico dietro il globo facendo attenzione a evitare di comprimere il mondo. </li><li> Estrarre delicatamente la pinza verso l'alto e cogliere il bulbo oculare dall'orbita. Il bianco filiforme tessuto è il nervo ottico. </li><li> Posizionare l'occhio in PBS. Utilizzando un ago da 30 gauge, effettuare una singola puntura ferita immediatamente posteriormente al limbus, inserendo l'ago di 1-2 mm nel bulbo oculare. Questo permette fissativi, come glutaraldeide, che sono comunque in grado di penetrare il tessuto oculare, direttamente a enter l'occhio. Creazione di questo puntura può non essere necessario se un fissativo, come paraformaldeide o alcool, è in grado di diffondere nei tessuti oculari di interesse. </li><li> Posizionare l'intero occhio immediatamente in fissativo per la fissazione immersione. </li></ol> 2. Sharp Dissection: enucleazione della fissazione del mouse perfusione degli occhi seguenti <ol><li> Utilizzare una curva colibri pinza per tenere la palpebra lontano dal mondo. </li><li> Orient curve Westcott forbici dissezione parallele al mondo, mentre volti verso la parte posteriore dell'orbita. </li><li> Tagliare il tessuto fissato connettivo che circonda il globo dagli inferiori, mediale, i lati superiore e laterale. </li><li> Posizionare la pinza curva dietro il globo, afferrare il tessuto connettivo senza premere sul globo, e tirare avanti per enucleare l'occhio. Poiché il tessuto connettivo orbitale è rigida da fissazione perfusione, taglio aggiuntivo di tessuti orbitali può essere necessario rilasciare completamente la globe. </li></ol> 3. Fissazione e imballaggio Spedizione dei tessuti fissi deve seguire le vostre esigenze di servizio istituzionali e postali, tra cui etichette e imballaggi appropriati. Il protocollo seguito è un esempio di spedizione di un non infettiva campione biologico a temperatura ambiente. Ciò richiede 3 strati di imballaggi, ma non di classe Una sostanza / B biologica o etichette di azoto liquido. <ol><li> Posizionare l'occhio in un 5 ml flaconcino di vetro scintillazione con almeno 3 ml di fissativo, o post-fissativo buffer se la fissazione è breve. Scrivere il numero di inseguimento sul coperchio del flaconcino e sigillarla con Parafilm. </li><li> Inserire fiale di scintillazione in un campione biologico approvato container. Nel nostro istituto, per esempio, contenitori approvati richiedono tre strati: un contenitore chiuso in cui è posto il campione, uno strato intermedio assorbente e uno strato protettivo esterno. </li><li> Mettere il recipiente in una bolla-wrap pacchetto e poi in un appvagava container laboratorio con documentazione appropriata. </li></ol> 4. Risultati rappresentativi Esame istologico degli occhi può essere eseguita da una varietà di metodi compresi ematossilina ed eosina colorazione, rilevamento espressione enzimatica, microscopia elettronica a trasmissione, e immunoistochimica. Seguendo fissazione immersione in paraformaldeide al 4%, il tessuto è stato incorporato in paraffina e sezionati con un microtomo. In high-throughput fenotipizzazione, analizziamo pupilla ottica sezioni nervose che tutti i tipi di campioni dei tessuti oculari (Figura 1). Sezioni di tessuto sono stati esaminati per l'espressione lacZ (Figura 2), microscopia elettronica a trasmissione di organelli cellulari (Figura 3), e l'espressione di molecole con anticorpi specifici (Figura 4). Nel nostro metodo di screening fenotipo, non era importante mantenere l'orientamento dell'occhio rispetto al nasale (canto mediale) e temporale (Lateral canto) lati. Ci sono almeno due opzioni se orientamento occhio è necessaria. Dopo enucleazione, abbiamo applicato cauterizzazione luce alla cornea temporale nella posizione 03:00 con un dispositivo portatile cauterio. La lesione è evidente all'esame istologico e non perdersi durante la lavorazione come gli inchiostri istologici. Il rovescio della medaglia è che i danni cauterio la cornea, che può essere un tessuto fondamentale per l'esame. L'altra opzione richiede un anatomista esperto in grado di identificare le inserzioni muscolari extraoculari. Allo stereomicroscopio, identificazione di inserimento inferiore e superiore muscolo obliquo segna l'aspetto inferiore e superiore e del globo. 3 Con entrambi i metodi di orientamento, è importante monitorare il campione come un occhio destro o sinistro. Insieme, questo permetterà l'orientamento esatto mondo prima del sezionamento. <img src="/files/ftp_upload/3184/3184fig1.jpg" alt="Micrografia di anatomia dell'occhio; sezioni di istologia; lente, retina, cornea; dettagli del livello cellulare." data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Immagini dell'occhio mouse istologici afte r acquisizione remota. occhi del mouse sono stati enucleati dalla dissezione netta seguendo fissazione perfusione con paraformaldeide al 4%. A. alunni-sezione del nervo ottico colorato con ematossilina e eosina mostra la conservazione di tutte le sottostrutture dei tessuti. ON, nervo ottico. (Barra della scala verde = 500 micron) B. Un punto di vista più alto ingrandimento della retina normale mostra la sua struttura laminare: RGC, cellule gangliari della retina, IPL, strato interno plessiforme, INL, strato nucleare interno, OPL, strato esterno plessiforme; ONL, esterno strato nucleare (cellule fotorecettrici) (freccia), IS, segmenti interni dei fotorecettori (punta di freccia), sistema operativo, segmenti esterni dei fotorecettori, RPE, epitelio pigmentato retinico, C, coroide. (Barra della scala verde = 50 micron) C. Rispetto alla retina normale, questo modello è più sottile a causa della degenerazione dei fotorecettori. Il ONL, IS e OS sono completamente assenti (freccia). (Scala bar verde = 50 micron) "Alt =" Figura 2 "/&gt; Figura 2. Espressione lacZ in topi transgenici. Occhi sono stati enucleati per via smussa e immerso in 1 mg / ml di X-gal soluzione (5 mM K3Fe (CN) 6, 5 mM K4Fe (CN) 6, 2 mM MgCl2, 0,02% NP40 , e sodio desossicolato 0,1%) per una notte a 37 ° C. Occhi sono stati fissati in glutaraldeide al 2% formaldehyde/0.2% per 30 minuti e sezionato con un microtomo. X-gal prodotto (blu) etichette: A. epitelio ciliare, epitelio corneale B., C. e la cellule gangliari della retina (RGC) strato nella retina. INL, strato nucleare interno; ONL, strato nucleare esterno. <img src="/files/ftp_upload/3184/3184fig3.jpg" alt="Struttura retinica; micrografia elettronica che mostra i segmenti esterni dei bastoncelli, le cellule RPE, la membrana di Bruch." data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Microscopia elettronica a trasmissione di epitelio pigmentato retinico (RPE). Dopo scollamento e la creazione di una puntura, gli occhi fissi ad immersione nel 2,5% paraformaldeide / 2,5% glutaraldeide in tampone fosfato di sodio 0.1M. Gli occhi erano di secondadarily fissato textroxide osmio 1%, a poco a poco disidratati, ed inclusi in resina di Spurr. Tessuto era sezionati a 90 nm e posto su griglie di rame rivestite in scanalatura formvar e ripreso con un microscopio elettronico a trasmissione. La micrografia mostra, segmenti esterni dei fotorecettori della retina neurosensoriale, melanosomi (M) all'interno dell'epitelio pigmentato retinico e della membrana di Bruch. <img src="/files/ftp_upload/3184/3184fig4.jpg" alt="Immagine al microscopio fluorescente della struttura del biofilm batterico; ingrandimento su scala di 20 micron." data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Etichettatura immunoistochimica di superossido dismutasi-3 (verde) nel vitreo mouse. Gli occhi sono stati enucleati per via smussa ed ha subito la fissazione immersione in paraformaldeide al 4%. Sono stati inclusi in paraffina e sezionati con un microtomo. Le sezioni di tessuto sono state incubate con un anticorpo policlonale di coniglio SOD3 antisiero diluito 1:50. SOD3 espressione è stata rilevata usando un anti-rabbit IgG di capra (H + L)-Alexa Fluor 488 anticorpo secondario coniugato. Etichettatura di SOD3 è mostrato in green.

<ol><li>Song, B. J., Tsang, S. H., Lin, C. -S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+models+of+retinal+degeneration+and+targets+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Genetic models of retinal degeneration and targets for gene therapy.</a> Gene Ther. Mol. Biol. 11, 229-262 (2007).</li>
<li>Mahajan, V. B., Mondino, B. J., Tsang, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-throughput+Mouse+Eye+Phenomics+System%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Laboratories%2C+Mouse+Genetics+Meeting%22%5BJournal%5D)">A high-throughput Mouse Eye Phenomics System.</a> Cold Spring Harbor Laboratories, Mouse Genetics Meeting. , (2010).</li>
<li>Smith, R. S., John, S. W. M., Nishina, P. M., Sundberg, J. P. In Research Methods For Mutant Mice. , CRC Press. Boca Raton, FL. (2002).</li>
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<li>Anderson, M. G., Smith, R. S., Hawes, N. L., Zabaleta, A., Chang, B., Wiggs, J. L., John, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+genes+encoding+melanosomal+proteins+cause+pigmentary+glaucoma+in+DBA%2F2J+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">Mutations in genes encoding melanosomal proteins cause pigmentary glaucoma in DBA/2J mice.</a> Nat. Genet. 30, 81-85 (2002).</li>
<li>Hawes, N. L., Smith, R. S., Chang, B., Davisson, M., Heckenlively, J. R., John, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+fundus+photography+and+angiography%3A+a+catalogue+of+normal+and+mutant+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Vis%22%5BJournal%5D)">Mouse fundus photography and angiography: a catalogue of normal and mutant phenotypes.</a> Mol. Vis. 5, 22-22 (1999).</li>
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<li>Pinto, L. H., Vitaterna, M. H., Siepka, S. M., Shimomura, K., Lumayag, S., Baker, M., Fenner, D., Mullins, R. F., Sheffield, V. C., Stone, E. M., Heffron, E., Takahashi, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Results+from+screening+over+9000+mutation-bearing+mice+for+defects+in+the+electroretinogram+and+appearance+of+the+fundus%5BTitle%5D)+AND+%22Vision.+Res%22%5BJournal%5D)">Results from screening over 9000 mutation-bearing mice for defects in the electroretinogram and appearance of the fundus.</a> Vision. Res. 44, 3335-3345 (2004).</li>
<li>Heckenlively, J. R., Winston, J. V., Roderick, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Screening+for+mouse+retinal+degenerations.+I.+Correlation+of+indirect+ophthalmoscopy%2C+electroretinograms%2C+and+histology%5BTitle%5D)+AND+%22Doc.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Screening for mouse retinal degenerations. I. Correlation of indirect ophthalmoscopy, electroretinograms, and histology.</a> Doc. Ophthalmol. 71, 229-239 (1989).</li>
<li>Tsang, S. H., Gouras, P., Yamashita, C. K., Kjeldbye, H., Fisher, J., Farber, D. B., Goff, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+degeneration+in+mice+lacking+the+gamma+subunit+of+the+rod+cGMP+phosphodiesterase%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Retinal degeneration in mice lacking the gamma subunit of the rod cGMP phosphodiesterase.</a> Science. 272, 1026-1029 (1996).</li>
<li>Tsang, S. H., Woodruff, M. L., Jun, L., Mahajan, V., Yamashita, C. K., Pedersen, R., Lin, C. S., Goff, S. P., Rosenberg, T., Larsen, M., Farber, D. B., Nusinowitz, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+mice+carrying+the+H258N+mutation+in+the+gene+encoding+the+beta-subunit+of+phosphodiesterase-6+%28PDE6B%29+provide+a+model+for+human+congenital+stationary+night+blindness%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mutat%22%5BJournal%5D)">Transgenic mice carrying the H258N mutation in the gene encoding the beta-subunit of phosphodiesterase-6 (PDE6B) provide a model for human congenital stationary night blindness.</a> Hum. Mutat. 28, 243-254 (2007).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

La maggior parte dei topi transgenici esistono in laboratori che non esaminano gli occhi. La nostra tecnica video illustra un metodo semplice e standardizzato per il trasferimento remoto abilità chirurgica per ottimizzare l&#39;acquisizione tessuti da laboratori con poca esperienza con gli occhi. Questa tecnica video aiuta superare un trabocchetto importante in high throughput fenotipizzazione, che è l&#39;uso di un numero limitato di siti esperti dovuti a non standardizzato di raccolta dei tessuti e fissazione metodi c...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nome </th><th> Azienda </th><th> Numero di catalogo </th><th> Commenti </th></tr><tr><td> Curvo Pinza Dressing </td><td> Storz Ophthalmics </td><td> E1408 </td><td></td></tr><tr><td> Mahajan Sharptip medicazione pinza </td><td> Storz Ophthalmics </td><td> E1406 (REF SP7-64520) </td><td></td></tr><tr><td> Curve Forbici Westcott </td><td> Storz Ophthalmics </td><td> E3321 WH </td><td></td></tr><tr><td> 15 ° BD Beaver microchirurgica Lama </td><td> Becton-Dickinson </td><td> 374881 </td><td></td></tr><tr><td> 0,22 Fine-Castroviejo sutura Pinze </td><td> Storz Ophthalmics </td><td> E1805 </td><td></td></tr><tr><td> 0,12 Colibri pinza </td><td> Storz Ophthalmics </td><td> 2/132 </td><td></td></tr><tr><td> Ago da 30 gauge </td><td> Becton-Dickinson </td><td> 305128 </td><td></td></tr><tr><td> Biohazard Mailer </td><td> Pescatore </td><td> 03-523-4 </td><td></td></tr><tr><td> Parafilm </td><td> Pescatore </td><td> 13-374-10 </td><td></td></tr><tr><td> Vetro fiale di scintillazione </td><td> Wheaton </td><td> 4500413033 </td><td></td></tr><tr><td> PBS, pH 7,4 </td><td> Invitrogen </td><td> 70011-044 </td><td></td></tr><tr><td> 16% paraformaldeide </td><td> Scienze della microscopia elettronica </td><td> 15700 </td><td></td></tr><tr><td> 2,5% paraformaldeide / glutaraldeide 2,5% in tampone fosfato di sodio 0,1 M </td><td> Scienze della microscopia elettronica </td><td> 15700 &amp; 16300 </td><td> Misto in laboratorio </td></tr><tr><td> 50% glutaraldeide </td><td> Scienze della microscopia elettronica </td><td> 16300 </td><td></td></tr><tr><td> 0,25% formvar </td><td> Scienze della microscopia elettronica </td><td> 15810 </td><td></td></tr><tr><td> PoliziottoSlot per Griglia </td><td> Scienze della microscopia elettronica </td><td> M2010-CR </td><td></td></tr><tr><td> Osmio diazoto 4% </td><td> Scienze della microscopia elettronica </td><td> 19140 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-SOD3 anticorpo </td><td> Abcam </td><td> Ab21974 </td><td></td></tr><tr><td> Di capra anti-coniglio Alexa Fluor 488 </td><td> Invitrogen </td><td> A11070 </td><td></td></tr><tr><td> Resina incorporamento Spurr </td><td> Scienze della microscopia elettronica </td><td> 14300 </td><td></td></tr></tbody></table>

mouse enucleazione degli occhi per remote ad alta velocità fenotipizzazione

Mouse Eye Enucleation for Remote High-throughput Phenotyping

L&#39;occhio del mouse è un importante modello genetico per lo studio traslazionale di malattia oftalmica umana. Blinding malattie negli esseri umani, come la degenerazione maculare, degenerazione dei fotorecettori, cataratta, glaucoma, retinoblastoma, e la retinopatia diabetica sono stati ricapitolati in topi transgenici. 1-5 topi transgenici e knockout La maggior parte sono stati generati da laboratori per studiare non oftalmiche malattie, ma conservazione genetica tra sistemi di organi suggerisce che molti degli stessi geni possono giocare un ruolo nello sviluppo oculare e malattia. Quindi, questi topi rappresentano una risorsa importante per la scoperta di nuove correlazioni genotipo-fenotipo negli occhi. Poiché questi topi sono sparsi in tutto il mondo, è difficile da acquisire, mantenere e fenotipo in un efficiente e conveniente modo. Così, la maggior parte delle high-throughput schermi fenotipizzazione oftalmiche sono limitate a poche sedi che richiedono in loco, esperienza oftalmico per esaminare gli occhi in topi vivi. 6-9 Un approccio alternativo sviluppato dal nostro laboratorio è un metodo per l&#39;acquisizione remota tessuto che può essere utilizzato nelle indagini grandi o piccole dimensioni di occhi di topi transgenici. Procedure standardizzate per il video a base di trasferimento di competenze chirurgiche, fissaggio del tessuto, e la spedizione di consentire il laboratorio di raccogliere gli occhi interi di animali mutanti e li inviano per fenotipizzazione molecolare e morfologico. In questo articolo video, vi presentiamo le tecniche per enucleare e trasferire sia non fissata e la perfusione del mouse occhi fissi per le analisi fenotipizzazione remoti.

La tecnica di dissezione illustra enucleazione dell&#39;occhio mouse per il fissaggio del tessuto per eseguire fenotipizzazione in alto throughput schermi.

Mouse enucleazione degli occhi per Remote ad alta velocità Fenotipizzazione

L'occhio di topo rappresenta un importante modello genetico per lo studio traslazionale delle patologie oftalmiche umane. Le malattie che portano alla cecità nell'uomo, come la degenerazione maculare...

In questo video verrà illustrato l'occhio del topo e la nucleazione, ovvero la rimozione del bulbo oculare dalla cavità orbitaria. Il bulbo oculare è delimitato dal margine della palpebra inferiore. Questa è la commessura mediale o nasale.Sul retro si trova il canto temporale o laterale. Sopra c'è il margine della palpebra superiore. Ecco un campione chirurgico.L'ago è puntato sulla cornea trasparente. Possiamo vedere una piccola parte del cristallino che sporge oltre l'iride. L'iride è qui in marrone, a coprire il cristallino.Il punto di riferimento chirurgico più importante è questa linea bianca, o il limbo, dove verrà effettuata una ferita da punta appena al di dietro. La metà posteriore del bulbo oculare si trova al di là del limbo e stiamo indicando un'inserzione muscolare. È possibile osservare il muscolo adagiato contro il bulbo qui, e quindi il tessuto connettivo che riempie l'orbita e comprende la ghiandola di Arian.E infine, questa è la lunga striscia bianca del nervo ottico ottenuta da una dissezione non affilata. Utilizzando una pinza curva per medicazioni, modificata con una punta affilata, iniziare separando le palpebre. Questo tende a far sporgere l'occhio in avanti e verso l'esterno.Usare con attenzione la pinzetta per accedere all'orbita e posizionarla dietro il bulbo oculare, comprimerla delicatamente nella zona retrobulbare senza schiacciare il bulbo stesso e tirare in avanti. Si dovrebbe essere in grado di afferrare il tessuto connettivo e non il bulbo oculare. Se si ruota il bulbo oculare verso il lato, è possibile osservare il tessuto orbitario insieme al nervo ottico bianco.Questa è una seconda dissezione, utile a mostrare nuovamente come si entri dal canthus, si spingano le pinzette dietro il bulbo oculare, si afferrino i tessuti connettivi e li si tiri in avanti senza esercitare pressione diretta sul bulbo oculare stesso. Ancora una volta, è possibile osservare il tessuto connettivo nella lunga striscia bianca del nervo ottico. Per creare una ferita da punta, afferrare il bulbo oculare tramite un'inserzione muscolare e inserire un ago dietro il limbus, proprio accanto al punto in cui si tiene l'occhio per stabilizzarlo.Questo permetterà al fissativo di entrare nell'occhio. Se si pratica la puntura lontano dal punto in cui si tiene l'occhio, il bulbo oculare sarà molto instabile e sarà difficile praticare la ferita, a meno che non si comprima l'occhio o si eserciti una pressione eccessiva. È inoltre possibile afferrare tutto il tessuto connettivo subito dietro il bulbo oculare.Alcuni fissativi non richiedono una ferita da punta. In generale, poniamo l'occhio in un vial di scintillazione da cinque cc con almeno tre cc di fissativo per assicurarci che l'occhio sia completamente immerso. Per animali fissati mediante perfusione, è necessaria una dissezione accurata.Utilizziamo una pinzetta curva Calibri e forbici Wescott curve. Afferrare la palpebra inferiore con la pinzetta Calibri. Inserire le forbici contro l'osso orbitale e iniziare a tagliare il tessuto connettivo.Utilizziamo la curvatura lontana dal bulbo oculare ed evitiamo il dimensionamento. Qualsiasi parte dell'occhio funzionerà lungo tutto il margine della palpebra inferiore, da un canthus all'altro. In un determinato punto, la maggior parte del tessuto connettivo verrà rimossa e sarà possibile far scivolare le forbici dietro il bulbo oculare e tirarlo via.Ecco un altro esempio, in cui le forbici vengono inserite nell'orbita, ma contro l'osso orbitario piuttosto che contro il bulbo oculare, tagliando i tessuti connettivi. Questo inizierà a liberare il bulbo oculare, simile a una palla da basket in un canestro. Utilizzare la pinzetta per retrarre le palpebre e praticare piccoli tagli delicati intorno al bulbo oculare.Qui afferramo il tessuto connettivo o un'inserzione muscolare con il Collibra e completiamo il distacco del bulbo oculare dal tessuto connettivo orbitale. Dopo che i bulbi oculari sono stati adeguatamente fissati e, se necessario trasportarli, poniamo della pellicola parafilm intorno al vial di stoccaggio.L'imballaggio deve essere conforme alle normative della vostra università e del governo. Di solito poniamo questi in un contenitore con un po' di cotone per raccogliere eventuali liquidi; questo contenitore deve essere sigillato molto bene. Questo contenitore per la spedizione viene quindi inserito in un sacchetto di plastica protettiva con bolle.Questo viene inserito in un imballaggio per spedizione di liquidi in laboratorio, insieme a qualsiasi documentazione.

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Questo protocollo descrive un modo semplice ed economico per quantificare l'attività del cis-elementi normativi (ad esempio, enhancer / promoter), nel vivere retine del mouse tramite elettroporazione espianto. Preparazione di analisi del DNA, la dissezione della retina, elettroporazione, cultura espianto della retina, e post-fissazione e la quantificazione sono descritti.

Quantificare le attività di Cis-Regolamentazione Elementi nella retina di topo Elettroporazione Espianto

Fonte: Jagodzinska, J., et. al., Tomografia a coerenza ottica: imaging delle cellule gangliari retiniche del topo In Vivo. J. Vis. Exp. (2017) &lt;br /&gt; In questo video, dimostriamo l'uso della tomografia a coerenza ottica del dominio spettrale (SD-OCT) per visualizzare gli strati retinici e valutare i cambiamenti strutturali in un modello murino geneticamente modificato con neuropatia ottica.

Imaging in vivo della retina di topo mediante tomografia a coerenza ottica

La rimozione degli occhi, chiamato anche enucleazione, fornisce una strategia utile per studiare gli aspetti di visual, cross-modale, e la plasticità dello sviluppo lungo il sistema visivo dei mammiferi poiché induce irreversibile parziale (monoculare) o completa (binoculare) perdita della vista. Qui si descrive un approccio altamente riproducibile e semplice da eseguire in vivo enucleazione.

Un metodo altamente riproducibile e semplice da eseguire In Vivo Oculare enucleazione del mouse dopo apertura degli occhi

In questo articolo descriviamo i principi per progettare ed eseguire un esperimento di tracciamento del lignaggio multicolore utilizzando i topi R26R-Confetti. Forniamo un protocollo specifico per il tracciamento delle cellule epiteliali corneali che può essere modificato per altri tessuti di interesse.

Un metodo per Lineage Tracing di cellule corneali Utilizzando multicolori topi reporter fluorescente

Qui dimostriamo un nuovo approccio all'utilizzo di tomografia a coerenza ottica spectral-domain ad alta risoluzione (HR-SD-OCT) per assistere la consegna degli agenti di terapia genica nello spazio subretinal, valutare la sua copertura area e caratterizzano la vitalità del fotoricettore.

Tomografia ottica di coerenza di risoluzione ultraelevata Mouse per aiutare l'iniezione intraoculare nella ricerca retinica terapia genica

Qui è presentata una piattaforma microscopica multifoto per l'imaging della superficie oculare del mouse vivo. Il mouse transgenico fluorescente consente la visualizzazione di nuclei cellulari, membrane cellulari, fibre nervose e capillari all'interno della superficie oculare. I segnali di seconda generazione armonica non lineari derivati da strutture collagenose forniscono immagini senza etichette per architetture tropiche.

Una piattaforma di microscopia multifoto personalizzata per l'imaging dal vivo di Mouse Cornea e Conjunctiva

L'imaging in vivo è un potente strumento per lo studio della biologia in salute e malattia. Questo protocollo descrive l'imaging transpupillare della retina del topo con un microscopio standard a due fotoni. Dimostra anche diversi metodi di imaging in vivoimaging per marcare in modo fluorescente più coorti cellulari della retina.

Transpupillare Due fotoni In vivo Imaging della retina del topo

Questo protocollo, originariamente riportato da Fernandez-Godino et al. La procedura dura circa 3 ore.

Dissezione e coltura efficienti delle cellule epiteliali del pigmento retino del topo primario

Questo articolo presenta un protocollo per la micro-dissezione oculare nei roditori. Il processo comporta l'enucleazione del bulbo oculare insieme alla membrana nittitante (cioè la terza palpebra). Questo è poi seguito dalla separazione delle conchiglie oculari posteriori e anteriori.

Microdissezione dell'occhio del roditore

La retina mostra una complessa organizzazione spaziale attraverso la sua struttura laminare. Le moderne tecniche di trascrittomica spaziale e sequenziamento richiedono sezioni di tessuto &lt; 20 μm di spessore, limitandone l'applicabilità nella ricerca retinica. Questo metodo di criosezione appena congelato produce sottili sezioni en face della retina di topo preservando le relazioni spaziali planari, consentendo una mappatura molecolare completa tra le lamine.

En face Criosezione della retina di topo per analisi molecolare spaziale ad alta dimensione

Questo articolo dimostra un metodo per visualizzare e quantificare la motilità della microglia e il contatto con i punti postsinaptici nella retina utilizzando la microscopia confocale a disco rotante.

Imaging dal vivo e caratterizzazione della dinamica della microglia e delle interazioni con le sinapsi nella retina murina malata

Impara la tecnica di enucleazione oculare nel topo per la fissazione del tessuto in screening fenotipici ad alto rendimento. Questo metodo chirurgico aiuta i ricercatori a identificare i landmark anatomici chiave con precisione.

Mouse enucleazione degli occhi per Remote ad alta velocità Fenotipizzazione

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