28 settembre 2011
Un metodo affidabile per l'isolamento di RNA Pseudomonas aeruginosa Recuperato da cecums murino è descritto. L'RNA recuperato è di quantità e qualità sufficienti per qPCR successivi, profili di trascrizione, e l'RNA esperimenti Seq. Questa tecnica può essere adattata per l'isolamento di RNA di altri microbi intestinali.
L'obiettivo generale di questa procedura è isolare l'RNA totale di Pseudomonas aerogen recuperato da ECM murini. Questo viene ottenuto innanzitutto raccogliendo il contenuto luminale del sequel. Successivamente, l'RNA batterico viene isolato.
Quindi vengono effettuati il trattamento con D'S e la purificazione dell'RNA. Infine, l'RNA viene quantificato e la purezza dell'isolato viene verificata mediante analisi con bioanalizzatore e analisi spettrofotometrica. In definitiva, è possibile ottenere RNA batterico di qualità e quantità sufficienti per successive valutazioni sperimentali, come ad esempio tramite QPCR, analisi del profilo di trascrizione o esperimenti di sequenziamento dell'RNA.
Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come l'estrazione con triolo, è che questo metodo prevede diversi passaggi di lisi in condizioni di estrazione estremamente rigorose con acido e cloroformio femminile, al fine di garantire un'RNA di alta qualità. Una dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale, poiché i passaggi di lisi ed estrazione sono difficili da apprendere, in quanto i protocolli scritti omettono dettagli minimi ma essenziali per il successo. La procedura sarà dimostrata da Eduardo Lopez Medina, ricercatore postdottorato, e da Megan Neubauer, responsabile del laboratorio, entrambi del mio laboratorio. Prima di iniziare il prelievo, IMSA pulisce il mortaio in acciaio inox in un bagno di azoto liquido.
Quindi, dopo l'eutanasia di un topo C3 HHEN colonizzato da pseudomonas aerogen, di età compresa tra sei e otto settimane, posizionare l'animale in posizione supina su una tavola di polistirolo ed esporre l'addome all'etanolo al 95%. Successivamente, praticare un'incisione longitudinale mediana attraverso la cute, dallo sterno fino al perineo. Poi allontanare la cute e il peritoneo ed esporre la cavità addominale.
Ora resecare l'intero cieco utilizzando pinze. Tenere il cieco sopra il mortaio in acciaio inossidabile e tagliare entrambe le estremità del cieco con forbici da dissezione. Riempire una punta di pipetta P 1000 con un millilitro di buffer di lavaggio finale otto, quindi inserire la punta nell'estremità prossimale del cieco.
Svuotare il tampone di lavaggio sequel e il contenuto luminale di sequel nel mortaio di acciaio inossidabile. A questo punto, macinare il sequel. Lavare il contenuto di eight con un pestello sterile.
Quindi versare etanolo in un contenitore di ghiaccio secco e inserire un tubo conico in polipropilene da 50 millilitri nel bagno di etanolo e ghiaccio secco. Trasferire il contenuto del lume congelato e macinato nel tubo conico e conservare il tubo a meno 80 gradi Celsius. Questa serie di passaggi rappresenta la parte più delicata della procedura.
Data la natura complessa dei materiali prelevati dal cieco MI, sono assolutamente necessarie ripetute estrazioni a freddo con filoforme; potrebbero essere richieste da tre a cinque estrazioni prima che scompaia l'ampia interfaccia tra le fasi acquose e organiche. Trasferire un volume di fenolo acido cloroformio in un tubo da centrifuga Oak Ridge da 50 millilitri. Chiudere saldamente il tappo con del parafilm e quindi riscaldare il tubo in un bagno d'acqua a 65 gradi Celsius.
Aggiungere metà volume di buffer di lisi in un tubo conico in polipropilene da 50 millilitri, quindi far bollire il buffer per cinque minuti. Dopo aver prelevato il contenuto del lume SQL dallo stoccaggio a meno 80 gradi Celsius, riscaldare brevemente il tubo con un rapido sfregamento tra le mani e quindi aggiungere il buffer di lisi bollente al tubo. Agitare la miscela per omogeneizzare la soluzione del contenuto lume SQL con il buffer di lisi.
Fare bollire il buffer di lisi e il contenuto luminali di SQL per cinque minuti. Con vorticosazione periodica, aprire il tubo da centrifuga Oak Ridge contenente la soluzione di fenolo-cloroformo e trasferire il campione di lisi del contenuto di SQL nel tubo. Quindi richiudere il tappo con perfil e rimettere il tubo nel bagnomaria a 65 gradi Celsius per 10 minuti, agitando il tubo ogni due minuti.
Centrifugare il campione a 2.500 ×g per 15 minuti a quattro gradi Celsius. Trasferire con attenzione la fase acquosa in un nuovo tubo da centrifuga Oak Ridge da 50 millilitri, evitando qualsiasi traccia dell'interfaccia bianca. Quindi aggiungere un volume uguale di fenolo acido cloroformio al nuovo tubo.
Sigillare il tappo con del perfil e mescolare accuratamente il contenuto agitando il tubo al massimo regime di vortice. Continuare a centrifugare il campione e trasferire la fase acquosa nel tubo da centrifuga. Se il volume della fase acquosa superiore diventa troppo ridotto, può essere trasferito in un tubo di diametro più piccolo.
Continuare questo processo fino a quando non sarà più visibile un'interfaccia bianca tra la fase acquosa e quella organica. Quando l'interfaccia bianca è scomparsa, trasferire con attenzione la fase acquosa in una nuova provetta da centrifuga. Quindi aggiungere un volume uguale di cloroformio e alcol isoamilico nella provetta, sigillare il coperchio e mescolare accuratamente il contenuto mediante vortex.
Successivamente, dopo aver centrifugato nuovamente il campione, trasferire la fase acquosa in un tubo conico in polipropilene da 15 millilitri e aggiungere un volume uguale di isopropanolo. Quindi, incubare la soluzione a meno 20 gradi Celsius per almeno due ore o tutta la notte. Dopo l'incubazione del campione, centrifugare il tubo per 45 minuti.
Dopo aver identificato il pellet di consistenza gelatinosa sul fondo del tubo, rimuovere il soprannatante. Lavare ora il pellet con un millilitro di etanolo al 70% freddo di ghiaccio, agitando il tubo al vortex, quindi centrifugare il campione a 10.000 ×g per cinque minuti a quattro gradi Celsius. Infine, rimuovere il soprannatante e capovolgere il tubo per far asciugare il pellet all'aria a temperatura ambiente per 10 minuti.
Quindi risospendere il pellet di RNA in 200 microlitri di acqua priva di RNAasi. Aggiungere prima 20 microlitri di tampone DNA 10x turbo e 2 microlitri di turbo DNAasi nel tubo microcentrifuga e mescolare delicatamente la soluzione. Incubare quindi il tubo a 37 gradi Celsius per 20 minuti, quindi aggiungere 20 microlitri di reagente di inattivazione del DNA risospeso nel tubo e mescolare accuratamente.
Incubare ora il tubo per altri cinque minuti a temperatura ambiente, mescolando occasionalmente. Successivamente, centrifugare il pellet in una microcentrifuga a 10.000 ×g per 1,5 minuti, quindi trasferire il soprannatante in un nuovo tubo microcentrifuga. Aggiungere un volume di fenolo acido cloroformio freddo al pellet, quindi mescolare accuratamente la soluzione mediante vortex per un minuto.
Dopo aver centrifugato la soluzione per due minuti a 12.500 ×g, trasferire la fase acquosa in un nuovo tubo e aggiungere un volume di cloroformo alcol isoamilo. Quindi mescolare la soluzione mediante vortex, quindi centrifugare nuovamente la soluzione nelle stesse condizioni. Trasferire la fase acquosa in un nuovo microtubo.
Quindi aggiungere 0,1 volumi di acetato di sodio tre molare ed 2,5 volumi di etanolo al 100% freddo di ghiaccio. Vortexare il tubo per mescolare. Incubare il campione a meno 80 gradi Celsius per 30 minuti.
Quindi, dopo aver centrifugato a 12.000 ×g per 30 minuti a quattro gradi Celsius, rimuovere il soprannatante. Infine, lavare il pellet con un millilitro di etanolo al 70% freddo di ghiaccio. Rimuovere il soprannatante e lasciare asciugare il pellet all'aria per 10 minuti.
Sospendere quindi il pellet in 100 microlitri di acqua priva di RNA. L'Agilent Bioanalyzer è una piattaforma basata sulla microfluidica per la determinazione della dimensione, della quantificazione e del controllo di qualità di DNA, RNA, proteine e cellule, e utilizza un parametro di integrità dell'RNA noto come numero di integrità dell'RNA o RIN. L'RNA estratto con questo protocollo presenta rapporti 260/280 compresi tra 1,7 e 2,0 e valori di RIN maggiori o uguali a 7,0.
Un esempio di elettroferogramma dell'RNA batterico ottenuto con un bioanalizzatore Agilent è mostrato qui a sinistra, mentre un'immagine simile a quella di un gel di *Pseudomonas arosa* recuperata dal contenuto intestinale di topi è mostrata qui a destra. A seguito di questa procedura, altri metodi come la PCR quantitativa o il sequenziamento dell'RNA possono essere eseguiti per rispondere ad ulteriori domande, come un profilo più dettagliato dell'espressione genica.
Questo articolo descrive un metodo affidabile per isolare l'RNA da Pseudomonas aeruginosa recuperato dai ciechi murini. La tecnica produce RNA di qualità sufficiente per qPCR, profilazione della trascrizione e sequenziamento dell'RNA.
L'isolamento di RNA di alta qualità da patogeni che colonizzano il tratto gastrointestinale consente la riduzione meccanicistica dei rischi associati a bersagli di virulenza in modelli preclinici. Questo metodo supporta la validazione dei bersagli collegando l'espressione genica batterica a modifiche dello stato immunitario dell'ospite. Fornisce una previsione affidabile per la priorizzazione di candidati anti-infettivi prima dell'identificazione del capostazione.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla verifica delle ipotesi nella fase iniziale della scoperta alla validazione meccanicistica nel lavoro preclinico, consentendo letture basate sull'RNA per la conferma dell'obiettivo.