Name: Versando ed esecuzione di un gel proteico riutilizzando Cassettes commerciali (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-02-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 3 s
Description: Impara a preparare gel di poliacrilammide economici riutilizzando le cassette Invitrogen Nupage Novex. Questo metodo riduce i costi e l'impatto ambientale, consentendo la conservazione a 4°C per settimane.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Gli autori ringraziano l&#39;Howard Hughes Medical Institute per una scienza UF per l&#39;aggiudicazione Vita AH

1. Preparare le cassette <ol><li> Anteriore e posteriore Clean piatti di un usato cassette Invitrogen Nupage Novex minigel, o altre cassette minigel commerciale. </li><li> Preparare circa 1-3 ml di resina epossidica di plastica e mescolare bene secondo le istruzioni del produttore. </li><li> Applicare la resina epossidica al bordo interno della piastra frontale, dove le due piastre a contatto quando la cassetta viene assemblato. </li><li> Inserire un pezzo di carta da filtro o cartone attraverso la fessura inferiore della piastra posteriore durante il montaggio della cassetta per impedire resina in eccesso di sigillare l'apertura. Rimuovere la carta da filtro non appena le due piastre sono assemblati. </li><li> Posizionare le clip leganti lungo i bordi per una tenuta perfetta, e lasciare che le cassette sedersi durante la notte per la resina epossidica per curare completamente. </li><li> Sigillare la fessura sul fondo della piastra posteriore con nastro isolante. </li></ol> 2. Versare il gel risolvere <ol><li> Per un pallone da 125 ml braccio laterale, aggiungere il seguente:2,25 ml di Tris-4X Base Resolving gel tampone pH 8,70, 3,50 ml di 30,8% acrilammide / bisacrilammide, 3,25 ml di Tipo I acqua distillata (IRG-H 2 O) per un volume totale di 9 ml. </li><li> De-gas la soluzione per 10 minuti collegando il braccio laterale del pallone ad un apparato per il vuoto, e ponendo un tappo capovolta sulla parte superiore del pallone. </li><li> Trasferire il 9 ml di degassati soluzione ad un tubo 50 di polipropilene monouso centrifuga ml e aggiungere 30 ul di persolfato ammounium 10% (APS) e 6 pl di N, N, N ', N',-tetrametiletilendiammina (TEMED) e miscelare ben agitando la soluzione per evitare di introdurre bolle. </li><li> Immediatamente versare la soluzione nel cassetto, permettendo l'esecuzione lungo il lato della cassetta per evitare la formazione di bolle tra le lastre di gel. Riempire la cassetta di circa 2 cm dal bordo superiore della parte anteriore (più corta) piastra. </li><li> Delicatamente aggiungere 0,5 ml di 1-butanolo saturato con 1X tampone di gel risoluzione e lasciare che il gel polimerizzare per 1ore. </li></ol> 3. Versare il gel di impilamento <ol><li> Aggiungere quanto segue in un pallone da 125 ml braccio laterale: 0,75 ml di 4X Tris-Base pH gel impilabile tampone 6,80, 0,40 ml del 30,8% di acrilammide / bisacrilammide, 1,85 ml di IRG-H 2 O per un volume totale di 3 ml. </li><li> De-gas la soluzione per 10 min come descritto nel passaggio 2. </li><li> Mentre la soluzione di gel di impilamento è degassaggio, travasare l'1-butanolo saturato con 1X tampone di gel risolutivo dalla parte superiore del gel risolvere. Lavare la parte superiore del gel risolvere una volta con IRG-H 2 O. Versare l'acqua e usare un filtro di carta assorbente o Whatman per assorbire eventuali residui di liquido. </li><li> Rimuovere le 3 ml di soluzione degasata e aggiungere 9 microlitri di 10% APS e 2 pl di TEMED e mescolare bene. </li><li> Rapidamente versare la soluzione nella cassetta, consentendogli di scorrere lungo la facciata del nastro fino a che è vicino al bordo superiore della piastra anteriore più corta di gel. </li><li> Inserire un pettine pulito gel nella parte superiore della cassetta gel,posizionare una clip legante sulla cassetta sopra il pettine per mantenerlo in posizione. Lasciate che il gel di impilamento polimerizzare per 1 ora a tutta la notte. </li></ol> 4. Conservazione del gel <ol><li> Quando il gel è completamente polimerizzato, rimuovere le clip legante e collocare la cassetta in un termosaldabile sacchetto di plastica, o un richiudibile sacchetto di plastica. </li><li> Versare 20 ml di tampone 1X stacking gel che contiene sodio azide allo 0,1% nel sacchetto. </li><li> Si chiude la sacca per 5 secondi e assicurarsi che non vi siano perdite in borsa. </li><li> Conservare il gel a 4 ° C. </li></ol> 5. Preparazione dei Campioni <ol><li> In un sottile tubo da microcentrifuga, aggiungere fino a 6,5 pl di campione proteico, 7,5 pl di 2x Novex Tris-glicina tampone campione SDS, 1 pl di mM ditiotreitolo 100 (DTT) e IRG-H 2 O (se necessario) per volume totale di 15 pl. </li><li> Mescolare il campione vortex, e brevemente centrifugare il campione per consentire al contenuto di fondo della provetta. </li> &lt;li&gt; denaturare il campione a 70 ° C per 10 min. </ol> 6. Esecuzione del gel <ol><li> Sistemare il dispositivo di Novex gel. </li><li> Aggiungere 200 ml di Tris-glicina tampone di corsa che contiene 500 pl di antiossidante Nupage alla camera interna, e 300 ml di Tris-glicina Il tampone di corsa alla camera esterna. </li><li> Caricare i campioni di proteine ​​denaturate (15 pl) nei pozzetti di carico utilizzando un gel punta della pipetta. </li><li> Eseguire il gel a 200 V per 60-70 min. </li></ol> 7. Colorazione del gel <ol><li> Rimuovere la cassetta dall'apparecchio gel e rompere il sigillo epossidica facendo leva le due lastre di gel di plastica distanza utilizzando un coltello gel o una spatola rigida. Separare con attenzione il gel dalle piastre, avendo cura di non strappare il gel. </li><li> Sciacquare il gel con IRG-H 2 O tre volte con leggera agitazione. </li><li> Colorare il gel con Invitrogen SimplyBlue SafeStain per 1 ora con leggera agitazione. </li><li> Versare la soluzione colorante eDecolorare il gel con IRG-H 2 O. </li></ol> 8. Pulizia delle cassette <ol><li> Utilizzare una spatola metallica per raschiare o staccare tutta la resina epossidica sulle cassette in modo che possano essere riutilizzati nuovamente. </li><li> Lavare ciascuna delle lastre di gel di plastica con una soluzione detergente delicato, e sciacquare bene con acqua corrente e poi con acqua distillata. </li></ol> 9. Risultati rappresentativi Poiché epossidica formare una tenuta stagna, (figura 1), le cassette non fuoriuscirà quando la soluzione viene versata in acrilammide loro. Inoltre, le cassette gel possono essere facilmente aperta per recuperare il gel per la colorazione, e la resina epossidica può venire distaccato delle cassette per consentire loro continuo riutilizzo. Come mostrato in figura 2, il gel mostra netta separazione dei marcatori proteici e nastri di esempio adatti per elettroforesi proteine ​​routine. <img src="/files/ftp_upload/3465/3465fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Applizione di resina epossidica per sigillare cassette minigel. Un sottile strato di resina epossidica viene applicato sul bordo di una delle cassette prima dell'assemblaggio. Per evidenziare la resina epossidica, che era falso-colore rosso in questa immagine. <img src="/files/ftp_upload/3465/3465fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Separazione delle proteine ​​su una SDS-Tris-glicina gel versato utilizzando riutilizzati cassette minigel. SDS-PAGE è stata eseguita come descritto sopra. In seguito il gel elettroforesi è stato rimosso dalla cassetta minigel, macchiato in SimplyBlue SafeStain secondo le istruzioni del produttore, e fotografato trasmesse mediante sistemi di luce bianca. Corsia M contiene SeeBlue Plus2 pre-colorati standard di proteine. I pesi molecolari delle proteine ​​in corsia M sono indicate sul lato destro del gel in chilodalton (kDa). Le altre corsie mostrano proteine ​​da un lisato eliminato da batteri esprimenti un glutatione-S-transferasi (GST)-tag proteina. Le proteine ​​indicati sono quelli lavati dal gperline lutathione prima dell'eluizione della proteina GST-tag.

<ol><li>Laemmli, U. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cleavage+of+structural+proteins+during+the+assembly+of+the+head+of+bacteriophage+T4%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4.</a> Nature. 227, 680-685 (1970).</li>
<li>Raymond, S., Weintraub, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acrylamide+gel+as+a+supporting+medium+for+zone+electrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Acrylamide gel as a supporting medium for zone electrophoresis.</a> Science. 130, 711-711 (1959).</li>
<li>Schägger, H., von Jagow, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tricine-sodium+dodecyl+sulfate-polyacrylamide+gel+electrophoresis+for+the+separation+of+proteins+in+the+range+from+1+to+100+kDa%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Tricine-sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis for the separation of proteins in the range from 1 to 100 kDa.</a> Anal. Biochem. 166, 368-379 (1987).</li>
<li>Shapiro, A. L., Viñuela, E., Maizel, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+weight+estimation+of+polypeptide+chains+by+electrophoresis+in+SDS-polyacrylamide+gels%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">Molecular weight estimation of polypeptide chains by electrophoresis in SDS-polyacrylamide gels.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 28, 815-820 (1967).</li>
</ol>

Non ci sono conflitti di interesse dichiarati.

Gel elettroforesi delle proteine ​​è un metodo indispensabile per la maggior parte laboratori di biologia molecolare. Minigels commercialmente disponibili forniscono un elevato livello di comfort, ma può essere costoso. Qui vi mostriamo come riutilizzare le cassette minigel da una popolare marca di minigels disponibili in commercio. Questo metodo mantiene la comodità di avere una pronta fonte di gel, ma ad una frazione del costo di minigels disponibili in commercio. Un passaggio chiave in questo procedimento sta applica...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome di reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Comments </td></tr><tr><td> Invitrogen Nupage Novex minigel Cassette (1,0 mm) </td><td> Invitrogen </td><td> NC2010 </td><td> Disponibile in 2, 5, 10, 12, 15 e 2D pozzetti </td></tr><tr><td> Epoxy plastica </td><td> Loctite </td><td> 108771 </td><td></td></tr><tr><td> Nastro isolante </td><td> Scotch </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Pallone da 125 mL lato del braccio </td><td> Pyrex </td><td> 5360 </td><td></td></tr><tr><td> 4X Tris-Base resolving gel tampone </td><td></td><td></td><td> 1,5 M Tris-base pH 8,7 </td></tr><tr><td> acrilammide </td><td> Fisher Scientific </td><td> 01065-500 </td><td></td></tr><tr><td> Bis-acrilamide </td><td> Biomedicals MP, Inc. </td><td> 800173 </td><td></td></tr><tr><td> Acrilammide soluzione 30,8% </td><td></td><td></td><td> 30:0.8 acrilammide: bis-acrilammide in IRG-H 2 O </td></tr><tr><td> 10% APS </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP179-25 </td><td> 0,1 g di persolfato di ammonio in 1 ml IRG-H 2 O, preparata immediatamente prima dell&#39;uso </td></tr><tr><td> TEMED </td><td> Arcos Organics </td><td> 138450500 </td><td></td></tr><tr><td> 1-butanolo saturato con tampone 1X gel resolving </td><td></td><td></td><td> 05:02 1-butanolo 1X tampone resolving gel </td></tr><tr><td> 4X Tris-Base tampone stacking gel </td><td></td><td></td><td> 1,5 M Tris-base pH 6,8 </td></tr><tr><td> Gel pettine </td><td> Invitrogen </td><td> NC3015 </td><td> Ben 15, 1,0 mm di spessore </td></tr><tr><td> Impulse Sealer </td><td> TEW Elettrico Impianti di riscaldamento </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Calore Pouch sigillabile </td><td> Kapak / Scotchpak </td><td></td><td> 1 pinta dimensioni (6,5 &quot;x 8&quot;) </td></tr><tr><td> Gel di accumulo </td><td></td><td></td><td> 1X buffer di impilamento gel con sodio azide 0,1% </td></tr><tr><td> Novex SDS Tris-Glicina tampone campione (2X) </td><td> Invitrogen </td><td> LC2676 </td><td></td></tr><tr><td> DTT </td><td> FisherBiotech </td><td> BP172-5 </td><td></td></tr><tr><td> 10X Tris-Gylcine tampone di corsa </td><td> Invitrogen </td><td> LC2675 </td><td> 1 litro di brodo 10 volte: 29,0 g di Tris-Base, 144,0 g Glycine, 10,0 g SDS </td></tr><tr><td> XCell SureLock Mini-Cell </td><td> Invitrogen </td><td> EI0001 </td><td></td></tr><tr><td> Gel Knife </td><td> Invitrogen </td><td> EI9010 </td><td></td></tr><tr><td> SimplyBlue sicuro Stain </td><td> Invitrogen </td><td> LC6065 </td&gt; <td></td></tr></tbody></table>

versando ed esecuzione di un gel proteico riutilizzando cassettes commerciali

Pouring and Running a Protein Gel by reusing Commercial Cassettes

La valutazione delle proteine ​​che utilizzano sodio dodecil solfato di elettroforesi su gel di poliacrilammide (SDS-PAGE) L&#39;analisi è una tecnica comunemente usata dai ricercatori Biochimica e Biologia Molecolare 1-4. Per i laboratori che eseguono analisi giornaliere di proteine, il costo di gel di poliacrilammide disponibili in commercio (~ $ 10/gel) può essere considerevole nel tempo. Per ridurre questo costo, alcuni ricercatori preparano i loro gel di poliacrilammide propri. I metodi tradizionali di riversare questi gel tipicamente utilizzano attrezzature specializzate e delle lastre di gel di vetro che possono essere costosi e preclude colata gel molti e la loro memorizzazione per un uso futuro. Inoltre, la movimentazione delle lastre di vetro durante la pulizia o gel versando può portare a rotture accidentali creando un pericolo per la sicurezza, che potrebbe precludere il loro uso in laboratorio le classi di laurea. Il nostro protocollo dimostra come versare gel proteici contemporaneamente dal riciclaggio Invitrogen Nupage Novex cassette minigel, e poco costoso materiali acquistato in un negozio di miglioramento domestico. Questo metodo economico e razionale include un modo per memorizzare i gel a 4 ° C per alcune settimane. Per riutilizzare le cassette di plastica da gel gel disponibili in commercio, laboratori che eseguono gel proteici frequenti possono notevoli risparmi sui costi e aiutare l&#39;ambiente. Inoltre, le cassette di plastica gel sono estremamente resistenti alla rottura, che li rende ideali per le aule di laboratorio di laurea.

Il nostro protocollo dimostra come versare gel proteici più in un momento di riciclaggio Invitrogen Nupage Novex minigel cassette e materiali a basso costo acquistati in un negozio di miglioramento domestico. Questo metodo economico e razionale include un modo per memorizzare i gel a 4 ° C per alcune settimane. Per riutilizzare le cassette di plastica da gel gel disponibili in commercio, laboratori che eseguono gel proteici frequenti possono notevoli risparmi sui costi e aiutare l&#39;ambiente.

Versando ed esecuzione di un gel proteico riutilizzando Cassettes commerciali

La valutazione delle proteine mediante l'analisi tramite elettroforesi su gel di poliacrilammide con sodio dodecil solfato (SDS-PAGE) è una tecnica comune utilizzata in biochimica...

Mi chiamo David Oppenheimer e lavoro nel Dipartimento di Biologia dell'Università della Florida. L'acquisto di gel di poli acrilamide già pronti per l'elettroforesi proteica di routine è comodo perché si possono sempre avere gel disponibili e pronti all'uso. Tuttavia, i gel commerciali possono risultare costosi se il vostro laboratorio esegue un elevato numero di gel.Inoltre, i gel commerciali vengono generalmente colati in cassette di plastica progettate per essere gettate dopo l'uso, generando così rifiuti di plastica che finiscono solitamente in discarica. Oggi vi mostreremo come riutilizzare queste cassette di plastica per colare autonomamente i vostri gel di poliacrilamide, che possono essere conservati per settimane, fornendo così al vostro laboratorio una fonte di gel pronti economici per l'elettroforesi proteica di routine. Ok, cominciamo.Preparare una nuova pagina pulita in Vitrogen con le cassetta per gel mini di Novak. Rimuovere circa un cucchiaino di resina eparica e mescolare completamente la soluzione con la punta di una pipetta. Una volta terminato il mescolamento della resina epossidica, applicarla sul retro della cassetta frontale, nella zona in cui il lato anteriore e posteriore verranno a contatto.Una volta terminata l'applicazione dell'epossidico, assicurarsi che non ci siano interruzioni nella linea. Inserire un foglio di carta dello spessore dell'apertura inferiore e posizionare la parte posteriore della cassetta in alto. Muovere il foglio per evitare che l'epossidico penetri nell'apertura inferiore del raccoglitore.Tagliare i bordi per ottenere una sigillatura stretta e lasciare la cassetta in posa tutta la notte per una completa polimerizzazione. Per preparare il gel risolutivo, aggiungere 2,25 mL di tampone per gel risolutivo Forex triase a pH 8,7 in un matraccio con imbuto laterale. Quindi aggiungere 3,50 mL di acrilamide al 30,8%.Quindi aggiungere 3,25 mil di acqua distillata doppia per un volume totale di nove mil. Degasare la soluzione per 10 minuti. Quando la soluzione ha terminato il degasaggio, trasferire nove mil della soluzione di acrilammide in un tubo da 50 mil con tappo arancione.Quindi aggiungere 30 microlitri di PS al 10% con sei microlitri di temid. Per avviare il processo di polimerizzazione, assicurarsi di mescolare bene prima di iniziare a versare il gel risolutivo. Assicurarsi di coprire l'apertura inferiore con nastro isolante.Quindi versare la soluzione all'interno della cassetta, facendola scorrere lungo il lato per evitare la formazione di bolle d'aria. Interrompere il travaso quando si è a circa un centimetro dal bordo superiore. Successivamente, versare 0,5 mL di butanolo saturo con un x tampone del gel di risoluzione in modo da ricoprire completamente la superficie superiore.Preparare il gel di ritenzione nello stesso modo in cui si prepara il gel risolutivo. In un pallone con imbuto laterale, aggiungere il buffer per gel di ritenzione a base di Forex tris con acrilamide al 30,8% e il doppio di acqua distillata, per un volume totale di tre millilitri. Degasare per 10 minuti e aggiungere nove microlitri di APS al 10% e due microlitri di TEMED.E assicurarsi di mescolare bene dopo un'ora. Lasciare polimerizzare il gel risolutivo in una linea retta.Versare con attenzione l'al e risciacquare il gel con acqua distillata doppia. Eliminare l'acqua e utilizzare carta assorbente per rimuovere eventuali liquidi residui. Versare rapidamente la soluzione del gel di sovrapposizione nella cassetta e riempirla fino all'orlo.Quindi inserire con attenzione un pettine per gel e utilizzare una graffetta grande per mantenere il pettine in posizione. Lasciare il gel a riposo per un'ora fino a un giorno per conservarlo in una busta sigillabile a caldo. Versare 20 ml di tampone per gel di raccolta 1x contenente lo 0,1% di azide di sodio. Sigillare completamente la busta e assicurarsi che non ci siano perdite.Conservare il gel a quattro gradi Celsius. Per preparare i campioni proteici, aggiungere una quantità appropriata di proteina in un tubo microcentrifuga a pareti sottili. Qui utilizziamo 6,5 µL.Quindi aggiungere 7,5 microlitri di tampone campione no vx trix glicina SCS. Aggiungere quindi un microlitro di DTT 100 millimolare e, se necessario, raddoppiare l'acqua distillata per un volume totale di 15 microlitri per denaturare la proteina. Incubare i campioni a 70 gradi Celsius per 10 minuti.Configurare l'apparato elettroforetico e versare 200 ml di buffer di corsa al tris-glicina 1x con 500 microlitri di antioxidante NewAge nella camera interna. Versare quindi 300 ml di buffer di corsa al tris-glicine 1x nella camera esterna. Aggiungere con attenzione il campione proteico di 15 microlitri in un pozzetto utilizzando una punta per pipetta adatta al caricamento dei gel.Una volta terminato il caricamento dei campioni, eseguire l'elettroforesi a 200 volt per 60-90 minuti. Quando si avvia l'elettroforesi, le proteine inizieranno a migrare attraverso il gel di poliacrilamide in base alle dimensioni. Le proteine più piccole migreranno più velocemente rispetto a quelle più grandi.Rimuovere con attenzione il gel dalla cassetta e lavarlo tre volte con acqua bidistillata per cinque minuti con agitazione delicata. Dopo il terzo lavaggio, colorare il gel con il colorante in vitro gin, simply blue safe stain, agitando delicatamente per un'ora. Versare via il colorante in eccesso e conservare il gel in acqua bidistillata.Se si desiderano bande più corte e più scure, è necessario far correre il gel per un periodo di tempo più breve. Ma se si vuole allungare le corsie, allora farlo correre più a lungo per rimuovere l'epossidico in modo che le cassette possano essere riutilizzate. Utilizzare un coltello per gel per rimuovere l'altro epossidico.Oggi vi abbiamo mostrato come riutilizzare le cassetta di plastica fornite insieme ai gel di poliacrilamide disponibili in commercio. È importante utilizzare un epossidico specifico per plastica per sigillare le cassetta dei gel. Inoltre, utilizzare reagenti di alta qualità e indossare sempre guanti quando si manipola acrilamide non polimerizzata.Grazie e buona fortuna con i vostri esperimenti.

pouring-and-running-a-protein-gel-by-reusing-commercial-cassettes

Research

Ricerca

JoVE Journal

Biology

Biologia

In questo video, si dimostra un metodo per la separazione elettroforetica di proteine ​​mediante poli-acrylimide elettroforesi su gel (PAG).

Separazione elettroforetica delle proteine

In questo video, si descrive la caratterizzazione di complessi multiproteici (PPM) di blu elettroforesi su gel di poliacrilammide nativo (BN-PAGE). In una prima dimensione, dializzati lisati cellulari sono separati da BN-PAGE per identificare i singoli PPM. In una seconda dimensione SDS-PAGE, PPM di interesse sono ulteriormente suddivisi per analizzare i loro elettori mediante immunoblotting.

Blu nativi poliacrilammide gel elettroforesi (BN-PAGE) per l&#39;analisi di complessi multiproteici da lisati cellulari

I membri del genere Burkholderia sono patogeni di importanza clinica. Noi descriviamo un metodo per l'estrazione delle proteine ​​totali batterica, utilizzando distruzione meccanica, e elettroforesi su gel 2-D per la successiva analisi proteomica.

Totale Estrazione di proteine ​​e 2-D elettroforesi su gel Metodi per<em&gt; Burkholderia</em&gt; Specie

Il flusso di lavoro V3 è una procedura western blot che utilizza gel senza macchie. La tecnologia senza macchie consente ai ricercatori di visualizzare la qualità della separazione proteica, di verificare l'efficienza di trasferimento e, soprattutto, di convalidare il cambiamento nella proteina di interesse utilizzando la quantificazione totale delle proteine come controllo di carico affidabile.

Flusso di lavoro senza macchie V3 per un controllo pratico, conveniente e affidabile del carico totale delle proteine nell'blotting occidentale

Questo protocollo esplora le ultime innovazioni in esecuzione di analisi di Western Blot. Queste nuove modifiche impiegano un sistema gel Bis-Tris con elettroforesi eseguire tempo 35 min, un sistema di trasferimento blotting secco 7 min, e infrarossi rilevamento proteina fluorescente e di imaging che genera maggiore risoluzione, qualità, sensibilità e maggiore precisione dei dati occidentali.

Il più veloce occidentale in città: un tocco contemporaneo alla classica analisi Western Blot

Metodo per la stabilizzazione e la separazione complessi proteici nativi di lisato tessuto non modificato utilizzando una proteina reticolante amminico reattivo accoppiato ad un romanzo elettroforesi bidimensionale poliacrilammide sistema (PAGE) è presentato.

Multimer-PAGE: Un metodo per acquisire e risolvere i complessi proteici nei campioni biologici

Gel-seq consente ai ricercatori di preparare contemporaneamente le librerie per entrambi DNA - e RNA-seq trascurabile costo aggiunto a partire da 100-1000 cellule utilizzando un dispositivo semplice idrogel. Questa carta presenta un approccio dettagliato per la fabbricazione del dispositivo, nonché il protocollo biologico per generare librerie accoppiate.

Gel-seq: Un metodo per la preparazione di libreria simultanea di sequenziamento del DNA e RNA utilizzando matrici di idrogel

Qui descriviamo un protocollo per un metodo generale di pulse-chase che permette l'analisi cinetica di pieghevole, trasporto e degradazione delle proteine da seguire in cellule vive.

Analisi della piegatura della proteina, trasporto e degradazione in cellule viventi di radioattivo Pulse Chase

Qui presentiamo un protocollo per estrarre, risolvere e identificare i supercomplessi mitocondriali che minimizzano l'esposizione ai detergenti e a Coomassie Blue. Questo protocollo offre un equilibrio ottimale tra la risoluzione e la conservazione delle attività enzimatiche, riducendo al minimo il rischio di perdere le interazioni proteina-proteina labile.

Elettroforesi ibrida trasparente/blu nativa per la separazione e l'analisi dei supercomplessi di catene respiratorie mitocondriali

L'esperimento qui utilizzato mostra un metodo di docking molecolare combinato con il saggio di spostamento termico cellulare per prevedere e convalidare l'interazione tra piccole molecole e bersagli proteici.

Previsione e validazione del bersaglio proteico di un composto a piccola molecola

Impara a preparare gel di poliacrilammide economici riutilizzando le cassette Invitrogen Nupage Novex. Questo metodo riduce i costi e l'impatto ambientale, consentendo la conservazione a 4°C per settimane.

Versando ed esecuzione di un gel proteico riutilizzando Cassettes commerciali

Esplora altri video