Name: Misura della γHV68 infezione nei topi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-22T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 22 s
Description: Scopri come misurare l'infezione da γHV68 nei topi con saggi di placche e centri infettivi. Questo metodo permette di valutare le fasi acuta e latente della replicazione virale in vivo.

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Gli autori desiderano ringraziare per la consulenza tecnica e supporto da Ren Sole (University of California, Los Angeles) e Seungmin Hwang (Washington University). Questo lavoro è stato finanziato dalla Fondazione Baxter, National Institutes di borse di Salute (R01 e R21 CA140964 AI083841 a C. Liang).

Il protocollo seguito descriverà i titoli di studio dei virus e dei carichi genoma virale nel ciclo di infezione litica e latente di γHV68 nei topi, che può teoricamente essere utilizzato per valutare l'infezione da virus che condividono lo stile di vita simile a quella di γHV68. 1. Amplificazione di γHV68 <ol><li> Scongelare una fiala congelata di γHV68 a bagnomaria a 37 ° C. </li><li> Aggiungi inoculums virale per NIH3T12 o colture di cellule 3T3 (~ 50% di confluenza) in 10 piatti cm e cultura le cellule infette a 37 ° C in 5% di CO 2. </li><li> Esaminare la cultura al microscopio l'effetto citopatico (CPE) e raccogliere i mezzi di comunicazione in un momento superiore al 80% delle cellule mostrano CPE 4 ~ 5 giorni dopo l'infezione. Per massimizzare il rendimento di virus, la coltura di cellule infettate possono essere congelati e scongelati-due volte di liberare tutti i cellulari associati γHV68. </li><li> Centrifugare i media raccolti a 1000 rpm per 5 minuti a temperatura ambiente (RT) per rimuovere i detriti cellulari. </li><li> Trasferire accuratamente l'surnatanti di nuovi tubi ad alta velocità (provetta da centrifuga) senza toccare i detriti cellulari in basso. </li><li> Centrifuga ad alta velocità a 12.000 giri (per Sorvall SA-600) a 4 ° C per almeno 1,5 ore a concentrarsi particelle virali. </li><li> Eliminare il surnatante in una soluzione di candeggina 10γ e con attenzione risospendere il pellet (virus e detriti cellulari residua) con 1 ml di DMEM senza siero. Trasferire la ri-precipitato sospeso in un ml 1,5 micro-centrifuga tubo e mescolare bene nel vortex. </li><li> Centrifugare per 2 minuti alla massima velocità per rimuovere i detriti residui cellulari e trasferire il surnatante (stock virus) in una nuova provetta. Questo è lo stock finale per l'infezione virale. Il titolo dello stock del virus è determinato mediante test placca (vedi sotto). </li></ol> 2. L'infezione intranasale di topi con γHV68 <ol><li> Infettare topi a ~ 6 settimane di età con 1.000 ~ 5.000 unità formanti placca (PFU) di topi per γHV68. </li><li> Anestetizzaretopi mediante iniezione di ketamina / xylazina (60 microlitri / mouse da una miscela di 80 mg / ml di ketamina e 12 mg / ml xilazina) nella cavità peritoneale. Monitor anestesia da pizzicare la punta topi. Di solito ci vogliono 5-10 min ~. Se i topi non sono completamente anestetizzati, saranno starnuto il virus. </li><li> Quando il mouse è completamente anestetizzato, utilizzare una pipetta per inoculare ~ 30 ml di PBS contenente γHV68 (15 microlitri per ogni narice) a topi goccia a goccia lentamente ma costantemente. Assicurarsi che il mouse è davvero inalare le gocce senza cercare di formare bolle. </li><li> Lasciare il mouse per recuperare per 10-15 minuti e monitorare il benessere dei topi (es. coscienza, respirazione, ecc) prima di restituirli alla gabbia. Gli animali vengono controllati ogni giorno di malattia e l'adeguatezza di cibo, acqua, biancheria da letto e le condizioni. Se i segni clinici di malattia, dolore o angoscia sviluppare, diagnostica di routine per determinare l'eziologia sarà condotta. Gli animali che perdono più del 20% del loro peso corporeo verrà registrato per la perdita di peso massimoe eutanasia. La decisione finale di eseguire l'eutanasia è a discrezione del veterinario clinico ed è presa previa consultazione con il ricercatore principale. </li></ol> 3. La placca di analisi per determinare il titolo del virus nei polmoni con infezione acuta <ol><li> I titoli di infettività del virus sono determinate dalla formazione di placca su monostrati di cellule Vero. </li><li> Cellule Vero sono seminate a 2.5x10 4 cellule / pozzetto in 12 piastre a pozzetti del giorno prima analisi della placca. Le cellule devono essere distribuite uniformemente e la densità cellulare dovrebbe raggiungere il 30 - 40% nel giorno del test placca. </li><li> Preparare 0,5% (w / v) metilcellulosa (MC) mezzo di copertura (Tabella 1). </li><li> Sacrificio γHV68 topi infettati 5-7 giorni dopo l'infezione intranasale per determinare fase acuta titoli del virus nei polmoni. Per euthanization ketamina HCl (80-100 mg / kg SC, IM, IP) verranno amministrati IM seguita da sovradosaggio per via endovenosa di sodio pentobarbital (30-50 mg / kg IP). Questo metodo è approvato da t'American Veterinary Medical Association. </li><li> Raccogliere i polmoni e risciacquare due volte con 1 x PBS per rimuovere le cellule del sangue. Raccogliere un lato dei polmoni in 1 ml ghiacciata terreno completo DMEM e tenere sul ghiaccio. Rapidamente congelare l'altro lato dei polmoni e conservare a -80 ° C per l'esame dei carichi DNA virale nei polmoni da qPCR (vedi sotto). </li><li> Utilizzare un omogeneizzatore ad omogeneizzare il tessuto tessuti polmonari alla massima velocità per 1 secondo, gelo-disgelo e-tre volte. Lavare l'omogeneizzatore con etanolo al 70% ad ogni passo quando si cambia il campione. </li><li> Centrifugare il tessuto omogeneizzato a 3.000 giri per 10 minuti a 4 ° C. Raccogliere il surnatante e trasferimento in nuovi tubi per il dosaggio della placca. </li><li> Preparare diluizioni seriali (di solito da 10 ° a 10 -8) dei campioni di polmone omogenato in 1,5 ml di micro-tubi con centrifuga pianura DMEM da vortice. Prefill il numero adeguato di appositi tubi con 540 microlitri DMEM e diluire 60 omogenato microlitri nel primo tubo. Trasferire 60 microlitri dal primo tubo inon il prossimo, e così via. </li><li> Aspirare multimediali dal monostrati preparato Vero nel 12-pozzetti e carico 200 l / omogenato e serialmente diluiti contenenti virus infettivi in un ordine inverso (da 10 -8 a 10 °). Utilizzare due pozzi per ogni titolazione (in duplice copia). </li><li> Incubare cellule Vero con il virus inoculums 1 ora a 37 ° C. Mescolare delicatamente i piatti ogni 15 minuti per distribuire uniformemente il virus per il monostrato. </li><li> Rimuovere il inoculums e sostituirlo con 2 ml / pozzetto di mezzo di copertura (Tabella 1). Incubare le piastre per una settimana a 37 ° C. </li><li> Rimuovere il mezzo di copertura (non ha bisogno di essere completa) e sostituirlo con la correzione / media macchia di dosaggio placca (Tabella 1) e incubare per almeno 1 ora a temperatura ambiente. </li><li> Quando le piastre sono asciugati, contare il numero di ben isolate placche ad ogni diluizione. Per ridurre al minimo errore, solo i pozzetti contenenti tra placche 10 e 100 sono contati. </li><li> Calcolare il titolo del virus usando il Folloala formula: titolo (pfu / ml) = [(numero di placche / pozzetto) / (volume di inoculums / pozzetto)] x fattore di diluizione. </li></ol> 4. Centro di saggio infettive per determinare la carica virale in splenociti latentemente infette <ol><li> Carico latente virale è determinata dalla infettive centro (IC), saggio sul monostrato di cellule Vero. Il giorno prima del test IC, le cellule Vero seme in 6 pozzetti (1 -. 2,5 x 10 5 cellule / pozzetto Usiamo solitamente 11 pozzi per campione milza, 10 pozzi saranno utilizzati per la sospensione diluita serialmente splenociti e un bene per i test riattivazione spontanea del virus dopo cicli gelo-disgelo. </li><li> Sacrificare i topi infettati dopo la latenza è stabilito (12 - 14 giorni dopo l'infezione). Raccolto la milza del mouse e la piscina li in 1 ml di DMEM freddo. </li><li> Dissociazione meccanica della milza del mouse. Trasferire la milza del mouse appena isolato in una tavola 10 cm e aggiungere 10 ml di supporto desiderato, come DMEM con 2% FBS. Wet due-end di vetro smerigliato microscdiapositive con ope ghiacciata media. Posizionare la milza sul lato smerigliato di una diapositiva e nick la capsula con il bordo della fine smerigliata del vetrino altri. Meccanicamente dissociare la milza tra due vetrini fino a quando tutti i grumi rossi sono schiacciati (anche rimuovere le particelle di grasso, se presente). </li><li> Sciacquare i vetrini con DMEM per recuperare cellule rimanenti su entrambe le diapositive. </li><li> Trasferire la sospensione intero tessuto delicatamente attraverso un colino cellula (40 mesh di nylon micron) in una conica da 50 ml con tappo a vite del tubo. Lavare i 10 cm contenente il piatto omogenati di milza con 10 ml di PBS e il trasferimento, mentre il filtraggio. </li><li> Centrifugare la singola cellula sospensioni 10 min a 375 xg ed eliminare il surnatante. Flick il pellet cellulare per rompere grumi di cellule già esistenti. Aggiungere 5 ml di tampone ACK (Tabella 1) per lisare i globuli rossi. Incubare 5 min e centrifugare di nuovo a 375 x g. </li><li> Eliminare il supernatante e risospendere il pellet, a fondo, ma delicatamente, in PBS con il 2% FBS. Mantenere le cellule a 4 ° C. Utilizzare una pipetta perrimuovere i detriti, se presente. Conte cellule vitali mediante un contatore automatico di cellule (Bio-Rad). </li><li> Rallenta il PBS-risospeso splenociti a 375 xg per 4 minuti. Gettare il surnatante e risospendere le cellule in 4 ml di DMEM completo (2 x 1 ml verranno utilizzati per l'analisi IC della sospensione originale; 0,6 ml usato per serie di cinque volte nel test di diluizione IC, 0,4 ml per la preparazione del DNA virale e qPCR, e 1 ml di sospensione saranno utilizzati per valutare la riattivazione spontanea del virus latente dopo tre cicli gelo-disgelo) </li><li> Preparare serie di cinque diluizioni (cioè 1 / 5, 1 / 25, 1 / 125, 1 / 250) di sospensione splenociti di duplicati. Prefill le provette da 15 ml con DMEM 2,4 ml e diluire 600 microlitri sospensione splenociti sul primo tubo e mescolare bene. Trasferire 600 microlitri dal tubo precedente nel tubo successivo, ecc Non vortice! </li><li> Aspirare il terreno dalla preparato 6-ben monostrato di cellule Vero. Semi di 1 ml di splenociti in serie diluito su cellule Vero con ogni DUPL diluizionedicato (10 pozzi saranno utilizzati per 0, 1 / 5, 1 / 25, 1 / 125, 1 / 250 diluizioni). </li><li> Incubare le piastre 8-12 ore a 37 ° C e 5% di CO 2. Non superare 24 ore. Aspirare la sospensione seminato splenociti e carico di 4 ml di sovrapposizione dei media (Tabella 1) in ogni pozzetto. Incubare per altri 6 giorni. </li><li> Determinare i livelli di centri milza infettive dalla colorazione i piatti con lo 0,2% (w / v) cristalvioletto come mostrato nel saggio placca. </li></ol> 5. Quantificazione del genoma virale <ol><li> Estrarre il DNA genomico totale dal γHV68 tessuti infetti, come polmone e milza campioni in questo esperimento. Utilizzare il sangue DNeasy e kit di Tissue (Qiagen), seguendo il protocollo del produttore. </li><li> Determinare la concentrazione di DNA di ogni campione per garantire la stessa quantità di DNA utilizzate per il dosaggio qPCR. Progettare il virus-specifici primer (~ 200 bp amplificato è preferibile per un saggio qPCR). Abbiamo usato il γHV68 ORF56 specifici primer (forward primer: 5 &amp; prime; - GTAACTCGAGACTGAAACCTCGCAGAGGTCC - 3 '; primer reverse: 5'-CCGAAGCTTGCACGGTGCAATGTGTCACAG-3') per il dosaggio e β-actina primer (forward primer: 5'-cacccacactgtggcccatcat-3 'Primer inverso: 5'-gtgaggatcttcatgaggtagtc-3') come un controllo per la reazione qPCR. </li><li> Miscelare il campione di DNA (100 - 500 ng è buona) e primers appropriati con 2 x SYBR Master Mix (Bio-Rad iQ SYBR Green Supermix). Utilizzare il Bio-Rad Real-Time PCR System per quantificare la carica virale nei tessuti infetti. Eseguire PCR al seguente condizione: 95 ° C per 15 min e 45 cicli di 95 ° C per 30 min, 60 ° C per 30 min e 72 ° C per 30 minuti, seguita da analisi della curva di fusione, sia per il virale e actina ampliconi. </li><li> Per effettuare una curva standard per la quantificazione di genomi virali, diluire serialmente quantità note di un DNA γHV68 bacmid con il DNA genomico isolato da cellule non infettate. Esegui qPCR in parallelo con il DNA recuperato dal infezioniTed tessuti utilizzando gli stessi set di virus-specifici primer. </li><li> Presente la carica virale nel genoma dei tessuti come numero di copie di DNA virale per unità (ad esempio 100 o 500 ng ng) di DNA genomico dopo la normalizzazione di actina. </li></ol> 6. Rappresentante dei risultati: La figura 1 mostra lo schema generale degli esperimenti per la misura di γHV68 infezione nei topi in vivo. Risultati rappresentativi di titoli di virus nei polmoni durante l'infezione acuta di γHV68, come determinato dal saggio di placca, sono stati mostrati in figura 2A. Un ceppo mutante di γHV68 contenente non funzionali virale Bcl-2 (vBcl-2) replicato a livelli paragonabili a wild-type γHV68 nei polmoni dopo 7 giorni l'infezione intranasale di topi BALB / c (6 - 7 topi per gruppo). Nessuna differenza statisticamente significativa nei titoli polmone del virus sono stati individuati tra i due gruppi. Questi dati indicano che vBcl-2 non è un fattore cruciale per l'infezione acuta del γHV68 intopi. Tuttavia, entro il 28 postinfection giorni, il titolo di vBcl-2 virus mutante della milza caduto 6 - a 10 - volte rispetto al WT, misurata con test centro infettive (Figura 2B), suggerendo che la vBcl-2 virus mutante γHV68 è difettoso per il mantenimento della latenza della milza dopo l'infezione. In accordo con il centro infettive titoli ridotta, il carico genoma virale del vBcl-2 virus mutante è stata fortemente ridotta rispetto a quella del virus WT al 28 ° giorno di esperimenti ripetuti, come mostrato nella Figura 2C. La stretta correlazione tra i carichi genoma virale e la frequenza di latente-HV68vBcl-2 mutante ex vivo in fase di riattivazione del virus latente dell'infezione evidenzia un difetto di latenza di questo virus mutante. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3472/3472fig1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Schema per la misura della γHV68 infezione nei topi mediante la formazione di placca, centro infettive e saggio qPCRs. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3472/3472fig2.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Infezione latente e litico del WT e mutanti γHV68 virus in vivo. Replica acuta (A) del WT e mutanti vBcl-2 γHV68 virus nei polmoni dei topi BALB / c a 7 dpi (infezione giorno dopo) è stata determinata mediante saggio placca. (B e C) splenico centri infettive (B) e del carico del genoma virale (C) nella milza di topi infetti sono stati misurati a 28 dpi con il saggio centro infettive e qPCR, rispettivamente. Linee rosse, le medie dei valori indicati. ns, non significativo.

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<li>McCausland, M. M., Crotty, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+PCR+technique+for+detecting+lymphocytic+choriomeningitis+virus+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitative PCR technique for detecting lymphocytic choriomeningitis virus in vivo.</a> J. Virol. Methods. 147, 167-176 (2008).</li>
<li>Weck, K. E., Kim, S. S., Virgin, H. I., Speck, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B+cells+regulate+murine+gammaherpesvirus+68+latency%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">B cells regulate murine gammaherpesvirus 68 latency.</a> J. Virol. 73, 4651-4661 (1999).</li>
<li>Weck, K. E., Kim, S. S., Virgin, H. I., Speck, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophages+are+the+major+reservoir+of+latent+murine+gammaherpesvirus+68+in+peritoneal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Macrophages are the major reservoir of latent murine gammaherpesvirus 68 in peritoneal cells.</a> J. Virol. 73, 3273-3283 (1999).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

γHV68 è stato ampiamente utilizzato come modello per comprendere la patogenesi delle risorse umane γ-HVS 2,4,5. In questo protocollo, abbiamo descritto tre metodi utilizzati di routine, compreso saggio di placca per titolo virali infettive, test IC per il carico virale latente, e qPCR per il carico del genoma virale, per valutare l&#39;infezione acuta e latente di γHV68 dopo l&#39;inoculazione intranasale nei topi. Il dosaggio della placca è stato ampiamente utilizzato per determi...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del materiale </td><td> Procedura di preparazione </td></tr><tr><td> Metilcellulosa (MC) mezzo di copertura per il dosaggio della placca virale </td><td><ol><li> Calore ~ ​​250 ml di acqua distillata in bottiglia TC&gt; 80 ° C (bollente per 3 minuti nel forno a microonde) </li><li> Aggiungere a poco a poco 2,5 g polvere MC in acqua riscaldata, mescolando a fuoco basso fino alla dissoluzione. </li><li> Autoclave subito per 15 minuti a ciclo liquido. </li><li> Mescolando i media MC sterilizzati in autoclave a 4 ° C per una notte. </li><li> Unire 250 ml MC media con 2 x 200ml MEM (Gibco-BRL) + 50 ml di FBS per dare 500 ml di sovrapposizione dei media. </li></ol></td></tr><tr><td> Fix / macchia medi per il dosaggio della placca </td><td> 0,2% (w / v) di cristallo viola in etanolo al 20%. </td></tr><tr><td> Lysis Buffer ACK </td><td> NH 4 Cl 0,15 m, KHCO 3 10mM, EDTA 0,1 mm </td></tr><tr><td> Completo DMEM </td><td> Medio Dulbecco modificato Eagle(DMEM) supplementato con 10% siero fetale bovino (FBS, Invitrogen), 2 mM di L-glutamina e 1% penicillina-streptomicina (Gibco-BRL). </td></tr></tbody></table> Mezzi di tabella 1. Specifiche utilizzate in questo protocollo <table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td></tr><tr><td> Ketamina </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> K2753 </td></tr><tr><td> Xylazina </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> X1251 </td></tr><tr><td> Metilcellulosa </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> M0512-250g </td></tr><tr><td> 2 x MEM </td><td> Life Technologies </td><td> 11935 </td></tr><tr><td> Cellulare filtro </td><td> BD Faclon </td><td> 352340 </td></tr><tr><td> Omni tessuto omogeneizzatore </td><td> OMNI internazionale </td><td> TH115 </td></tr><tr><td> Sangue DNeasy e kit di tessuto </td><td> QIAgenerazione </td><td> 69504 </td></tr><tr><td> iQTM SYBRH Verde Supermix </td><td> BioRad </td><td> 170-8882 </td></tr><tr><td> CFX96 PCR in tempo reale del sistema </td><td> Bio-Rad </td><td> 184-5072 </td></tr><tr><td> Contatore di cellule </td><td> Bio-Rad </td><td> 145-0001 </td></tr><tr><td> Sorvall SA-600 </td><td> Thermo Scientific </td><td> 096-124022 </td></tr></tbody></table> Tabella 2. Reagenti e attrezzature specifiche

misura della γhv68 infezione nei topi

Measurement of &#947;HV68 Infection in Mice

Herpesvirus-γ (γ-HVS) si distinguono per la loro capacità di stabilire infezioni latenti di cellule linfoidi 1. La gamma ristretta di ospitare umano γ-HVS, come EBV e KSHV, ha gravemente ostacolato studi dettagliati patogeni. Murino γ-herpesvirus 68 (γHV68) azioni estese somiglianze genetiche e biologiche umane con γ-HVS ed è un patogeno naturale di roditori murid 2. Come tale, la valutazione di γHV68 infezione ceppi di topi inbred a diversi stadi di infezione virale fornisce un modello importante per la comprensione del ciclo di vita virale e la patogenesi durante γ-HVS infezione. Su inoculazione intranasale, γHV68 risultati infezione in viremia acuta nel polmone, che è poi risolto in una infezione latente di splenociti e di altre cellule, che può essere riattivato per tutta la vita dell&#39;ospite 3,4. In questo protocollo, descriveremo come utilizzare il test per valutare la placcatitolo s virus infettivo nel polmone omogenati su monostrati di cellule Vero in fase precoce (5 - 7 giorni) di post-infezione intranasale (dpi). Mentre l&#39;infezione acuta è in gran parte cancellato 2-3 postinfection settimane, una infezione latente di γHV68 è stabilito circa 14 dpi e mantenuto in seguito nella milza dei topi. Infezione latente di solito colpisce una popolazione molto piccola di cellule nei tessuti infetti, per cui il virus rimane inattivo e si spegne la maggior parte della sua espressione genica. Splenociti latentemente infette spontaneamente riattivare virus su espianto in colture di tessuti, che può essere riassunta da un centro infettivi (IC) test per determinare la carica virale latente. Per ulteriori stimare la quantità di copie del genoma virale nel acuta e / o tessuti latentemente infette, quantitativa real-time PCR (qPCR) è usato per la sua massima sensibilità e precisione. L&#39;analisi combinata dei risultati dei test qPCR e placca, e / o dosaggio IC rivelerà il profilo spazio-temporale del viralereplicazione e l&#39;infettività in vivo.

Herpesvirus-γ (γ-HVS) stabilisce per tutta la vita persistenza nel loro ospite. L&#39;infezione di topi con γ-HV68 offre una geneticamente trattabili<em&gt; In vivo</emModello&gt; per la caratterizzazione del ciclo di vita / patogenesi della γHVs. Questo protocollo descrive l&#39;individuazione e quantificazione dei γHV68 infezione in fase acuta e latente dopo l&#39;infezione con formazione di placca, centro infettive, e saggi qPCR.

Misura della γHV68 infezione nei topi

Gli $\gamma$-herpesvirus ($\gamma$-HV) sono noti per la loro capacità di stabilire infezioni latenti nelle cellule linfoidi1. L'estensione limitata dell'intervallo di ospiti dell'essere umano...

In questo video, le infezioni da virus dell'herpes acuta e latente vengono valutate dopo infezione intranasale nei topi mediante saggi di placca e di centro infettivo. Per prima cosa, per simulare l'esposizione fisiologica, i topi vengono infettati mediante somministrazione intranasale del virus gamma herpes neuronale. 68, da 5 a sette giorni dopo, il tessuto polmonare viene prelevato e omogeneizzato.Successivamente viene eseguito un saggio di placca per determinare il carico virale acuto. Per determinare il carico virale latente, viene prelevato il milza dal topo. Da 12 a 14 giorni dopo l'infezione, viene ottenuta una sospensione monocellulare dei siti SPOC infetti e viene effettuato un saggio dell'unità formante placche. I risultati di questi saggi rivelano i profili spaziotemporali della replicazione virale e dell'infecciosità in vivo.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come l'uso del sistema di coltura tissutale per lo studio dell'infezione virale, consiste nel sfruttare l'infezione da gammaherpesvirus marino nei topi per la caratterizzazione in vivo del ciclo vitale e/o della patogenesi dei gammaherpesvirus. Iniziare questo protocollo infett

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Immunology and Infection

Immunologia e Infezioni

Descriviamo un protocollo per identificare i ruoli chiave di molecole di segnalazione di accoglienza nella replicazione litica di un herpesvirus modello, gamma herpesvirus 68 (γHV68). Utilizzando ceppi di topi geneticamente modificati e fibroblasti embrionali per γHV68 replica litico, il protocollo consente sia la caratterizzazione fenotipica e molecolare del virus interrogatorio interazioni ospite-in replicazione virale litico.

Dissezione Host-virus Interazione in replica litico di un Herpesvirus modello

Fonte: Seman, B. G., et al. Un modello di imaging neonatale della sepsi batterica Gram-negativa. J. Vis. Esp. (2020)Il video mostra un modello neonatale di topo per studiare l'infezione sistemica utilizzando batteri bioluminescenti incapsulati. I cuccioli neonatali vengono iniettati con sospensioni batteriche ad alto o basso dosaggio e restituiti alla madre per le cure postnatali. I batteri incapsulati sfuggono alla rilevazione immunitaria precoce, si diffondono sistemicamente e vengono...

Modellazione dell'infezione nei topi neonatali utilizzando batteri bioluminescenti incapsulati

Fonte: Zhang, J., et al. P. Analisi della segnalazione immunitaria innata nell'evasione virale della produzione di citochine. J. Vis. Exp. (2014)Questo video dimostra la somministrazione intranasale di herpesvirus murino in topi per indurre una risposta immunitaria specifica per il polmone. Il tessuto polmonare viene successivamente processato per ottenere supernatanti contenenti citochine, da utilizzare per la valutazione successiva delle risposte immunitarie dell'ospite.

Infezione intranasale da Herpesvirus murino nel topo per la valutazione delle risposte immunitarie dell'ospite

In questo video, descriviamo un protocollo per testare l'efficacia di un vaccino acellulare contro la pertosse contro l'infezione da Bordetella pertosse nei topi. Dopo la vaccinazione, i topi sono stati sottoposti a infezione e il loro omogenato tissutale è stato coltivato per analizzare le colonie batteriche come lettura dell'immunità protettiva indotta dal vaccino.

Valutazione dell'immunità indotta da vaccino contro l'infezione batterica in un modello murino

Descriviamo un protocollo per misurare la produzione di citochina antivirale in topi infettati con un modello herpesvirus, murina gamma herpesvirus 68 (γ HV68) che è strettamente correlata alla associato al sarcoma herpesvirus di Kaposi umano (KSHV) e virus di Epstein-Barr (EBV). Utilizzando ceppi di topi geneticamente modificati e fibroblasti embrionali di topo (MEF), abbiamo valutato la produzione di citochina antivirale sia in vivo e ex vivo. "Ricostituzione" l'espressione di componenti...

Dissezione Innate Immune Signaling in Evasion virale di produzione di citochine

Influenza A virus (IAVs) è importanti patogeni respiratori umani. Per capire la patogenicità di IAVs e per eseguire test preclinici di approcci vaccinali romanzo, modelli animali che imita la fisiologia umana sono necessari. Qui, descriviamo le tecniche per valutare IAV patogenesi, le risposte umorali e l'efficacia del vaccino utilizzando un modello murino di infezione.

Studi del Virus di riossidazione A in un modello murino di infezione

Qui presentiamo un elegante protocollo per la valutazione in vivo di vaccino efficacia e host le risposte immunitarie. Questo protocollo può essere adattato per i modelli di vaccino che studiano virale, batterica o parassitari patogeni.

Valutazione delle risposte ospite-patogeno e l'efficacia del vaccino nei topi

Qui, descriviamo un metodo per indurre la meningite meningococcica attraverso una via intracisternale di infezione nei topi adulti. Vi presentiamo un protocollo passo dopo passo dell'infezione da meningococco dalla preparazione dell'inoculum all'infezione intracisternale; quindi registrare la sopravvivenza animale e valutare i carichi batterici nei tessuti murini.

Indurre Meningococcal Meningitis Serogroup C in Topi tramite consegna intracisternale

Qui sono descritti tre approcci sperimentali per studiare la dinamica dell'infezione da HIV nei topi umanizzati. Il primo consente lo studio di eventi di infezione cronica, mentre i due ultimi consentono lo studio di eventi acuti dopo l'infezione primaria o la riattivazione virale.

Infezione da HIV cronica, acuta e riattivata in modelli di topo immunodeficienti umanizzati

Questo documento descrive i protocolli di valutazione della risposta Tfh e GC B nel modello di topo di infezione da virus influenzale.

Valutazione delle cellule di aiuto follicolare T e della risposta del centro germinale durante l'infezione da virus influenzale A nei topi

Abbiamo sviluppato un protocollo per la generazione e la valutazione di un modello murino NOG infettato da virus dell'immunodeficienza umana e umile basato sul trapianto di cellule staminali, sull'esposizione al virus dell'immunodeficienza umana intravaginale e sull'RNA PCR digitale a goccia e droplet Quantificazione.

Mitrai NOG umanizzati per l'esposizione all'HIV intravaginale e il trattamento dell'infezione da HIV

Scopri come misurare l'infezione da γHV68 nei topi con saggi di placche e centri infettivi. Questo metodo permette di valutare le fasi acuta e latente della replicazione virale in vivo.

Misura della γHV68 infezione nei topi

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