Name: Valutare mutazione somatica nel Ramos cellule B dopo iperespressione o Knockdown di specifici geni (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 12 s
Description: Impara a valutare l'ipermutazione somatica nelle cellule B Ramos dopo iperespressione o knockdown genico mediante infezioni virali. Questo metodo identifica fattori coinvolti nella diversificazione anticorpale.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Il pMSCV-AID-I-Thy1.1 e pKat2 vettori erano un gentile dono della DG Schatz e pVSV-G, pRSV-Rev, e pMDLg / pRRE vettori erano un gentile dono da BR Cullen.

1. Preparazione dei campioni e le cellule <ol><li> Eseguire una preparazione media scala del DNA (midiprep) della sovraespressione o shRNA contenenti costrutti e il vettore retrovirale imballaggio pKat2 o vettori lentivirali imballaggio pVSV-G, pMDLg / pRRE e pRSV-Rev 25. Usare 6 mg per ogni DNA costruire e uno di 4 microgrammi pKat2 (per infezioni retrovirali) o 1,5 mg di DNA per ciascuna delle pVSV-g, pMDLg / pRRE e pRSV-Ap vettori di imballaggio (per le infezioni lentivirali). </li><li> Preparare 23 BOSC media. Per la trasfezione, utilizzare sia emendata Dulbecco modificato Eagle medium (DMEM), così come DMEM completo. Per rendere completo DMEM, aggiungere 1 tampone HEPES%, 1% penicillina-streptomicina-glutamina (PGS), e il 10% di siero di vitello neonato (NCS) per una bottiglia di DMEM. </li><li> Preparare Ramos media. Per la fase di infezione, di dare integrale RPMI-1640 medium (RPMI) con l'aggiunta di 1% HEPES, 1% PGS, e il 10% di siero fetale bovino (FBS) per una bottiglia di RPMI. Per passo la semina delle cellule, mAke "condizionato" dei media da una crescente cellule Ramos in RPMI completo per 2 giorni, riducendo la velocità delle celle verso il basso a 400 X g per 4 minuti e filtrare il surnatante con un filtro 0,2 micron in una bottiglia sterile. Come altri mezzi di comunicazione completo, media condizionata è conservato a 4 ° C fino al momento dell'uso. </li><li> Split 3 x 10 6 23 BOSC cellule in un piatto da 100 mm in 10 ml completo DMEM il giorno prima della trasfezione in modo che le cellule sarà al 50-60% confluenza del giorno di trasfezione. Fai una piastra di cellule per ogni vettore si pensa di trasfezione. E 'importante che le cellule non sono state mantenute in coltura per troppo tempo, l'uso delle cellule a basso numero di passaggio o di cellule recentemente scongelato sia per la trasfezione e passi l'infezione per assicurare una buona infezione. </li><li> Includono i controlli per i vostri esperimenti. Per trasfezioni e infezioni, creare un controllo negativo (cellule non infette o untransfected) e un controllo positivo (virus che esprime la GFP e puromicina gene per la resistenza). Per shRNA knock-down compeiments, infettare un bene con un strapazzate o controllo shRNA irrilevante. </li></ol> 2. 23 BOSC trasfezione delle cellule <ol><li> Riscaldare le bottiglie di emendata DMEM e DMEM completo a 37 ° C. </li><li> Rimuovere i supporti dal 23 BOSC cellule e sostituire con 5 ml di DMEM completo. Ritorna le cellule a 37 ° C in incubatore fino al momento dell'uso in fase 2.6. </li><li> Scaldare la bottiglia di FuGENE 6 a temperatura ambiente per 5 minuti poi mescolare brevemente nel vortex (&lt;1 secondo). </li><li> Aliquota 600 microlitri DMEM emendata in una provetta 1,5 ml microcentrifuga. </li><li> Diluire 30 microlitri FuGENE 6 nel 600 microlitri DMEM non emendato, mescolare brevemente nel vortex (&lt;1 secondo), e poi incubare a temperatura ambiente per cinque minuti. Fare attenzione a pipetta direttamente nella media. Non lasciare che la FuGENE 6 toccare i lati del tubo. </li><li> Aggiungere 6 costruire mg o 4 mg e pKat2 (infezioni retrovirali) o 1,5 mg ogni pVSV-G, pMDLg / pRRE e pRSV-Rev (infezioni lentivirale) al DMEM / FuGENE 6 mix, vortice bri Efly (&lt;1 secondo), e poi incubare a temperatura ambiente per 25 minuti. </li><li> Aggiungere il DNA / DMEM / FuGENE 6 mix al 23 BOSC cellule e ritorno a 37 ° C in incubatore per 24 ore. </li><li> Dopo 24 ore, aggiungere 5 ml completo DMEM alle cellule trasfettate e tornare a 37 ° C in incubatore per altre 24 ore. </li></ol> 3. La raccolta particelle virali <ol><li> Raccolto il 10 mL di supporto dal transfettate BOSC 23 celle con una siringa da 10 ml. </li><li> Collegare un filtro di 0,45 micron fino alla fine della siringa e il filtro dei media in un tubo di polipropilene pulita da 15 ml. </li><li> Utilizzare i mezzi di comunicazione virale subito o congelare aliquote come 1 ml in 2 fiale ml criogenico a -80 ° C. </li><li> Dopo la raccolta i mezzi di comunicazione virale, confermano che la trasfezione efficiente si è verificato nelle cellule controllo positivo da FACS. Questo può essere fatto anche per tutti i campioni, se il costrutto contiene un fluorescente (GFP per esempio) o di una superficie cellulare marcatore (ad esempio Thy1). </li></ol>DENOMINAZIONE "&gt; 4. Infezione delle cellule B <ol><li> Semi di 2 ml di 2 x 10 5 cellule / ml cellule Ramos in RPMI completo in un 6-pozzetti 24 ore prima dell'infezione. Anche in questo caso, assicurarsi di utilizzare le celle a basso numero di passaggio o di cellule recentemente scongelati per assicurare una buona infezione. </li><li> Se si utilizza aliquote congelate di virus, il disgelo media virali rapidamente a 37 ° C. </li><li> Mescolare 1 ml mezzi virale con 3 ml di 10 mg / ml polibrene. La concentrazione finale di polibrene dovrebbe essere di 10 mg / ml in un volume totale di 3 ml. </li><li> Aggiungere il virus / polibrene mix per le cellule e mescolare bene pipettando. Come accennato in precedenza, un bene dovrebbe essere utilizzato come controllo non infetto; aggiungere 1 ml di RPMI completo e 3 polibrene microlitri di questo bene, invece di virus 1 ml. Assicurati di infettare un pozzetto con un controllo abbinati negativo. Abbiamo anche infettare un pozzetto con una GFP-vettore contenente, per determinare l'efficienza infezione da FACS. </li><li> Centrifugare il 6-pozzetti a 3000 X g per 90 minuti a temperatura ambiente. </li><li> Riportare la piastra per37 ° C in incubatore per 48 ore. </li><li> Dopo 48 ore, centrifugare le cellule infette in un tubo da 15 ml in polipropilene a 400 X g per 4 minuti a temperatura ambiente. Rimuovere il supporto per aspirazione, facendo attenzione a non disturbare il pellet. Risospendere le cellule in fresco RPMI. </li><li> Confermare l'efficienza di infezione nel campione di controllo positivo da FACS. Come prima, è possibile farlo per tutti i vostri campioni se il costrutto contiene un fluorescente (GFP per esempio) o una superficie cellulare marcatore (ad esempio Thy1). </li><li> Inizio selezione di celle (se del caso). Il nostro shRNA contenenti costruisce contengono tutti una cassetta resistenza puromicina. Selezioniamo shRNA cellule infettate Ramos con 0,25 mg / mL puromicina. Troviamo che i derivati ​​delle cellule Ramos a volte mostrano alterata suscettibilità alle puromicina e, quindi, eseguire uccidere le curve per ottimizzare la concentrazione di puromicina per ogni derivato. Anche il trattamento di cellule di controllo non infettate con puromicina per confermare che la selezione è efficace. </li></ol> &lt;p class = "jove_title"&gt; 5. Semina singola cellula Semina singolo può essere eseguita in due modi: da FACS ordinamento o manualmente. <ol><li> FACS: Utilizzare un FACS sorter con un adattatore piastra alle sementi 1 cella / e in una piastra a 96 pozzetti pre-riempita con 100 ml di 40% RPMI/40% condizionata media/20% FBS. Questo metodo dà un sacco cloni cellulari più solo per piastra. </li><li> Manualmente: Contare le cellule. Diluire una parte di cellule a 10 cellule / ml nel 40% RPMI/40% condizionata media/20% FBS. Usare 10 ml di cellule diluito per ogni piatto seminato. Diversi cloni mostrerà di recupero variabili in questa fase quindi è utile per creare piatti diversi a diverse concentrazioni (da 3 a 20 cellule / ml). Utilizzare quello che produce meno escrescenze per evitare cloni derivanti da più celle). Utilizzare una pipetta multicanale per seminare piastre a 96 pozzetti con 100 ml di cellule diluita. </li><li> Posizionare la piastra in un incubatore a 37 ° C per 2 settimane. </li><li> Controllare i singoli pozzi under il microscopio per confermare la presenza di cellule un giorno dopo la semina. Singole cellule può essere difficile da trovare a causa della necessità di messa a fuoco la corretta profondità. Concentrandosi sui numeri ben impresso sul fondo della piastra a 96 pozzetti dovrebbe aiutare. Le cellule sono più facili da trovare quando seminato dal selezionatore FACS poiché la maggior parte i pozzi hanno una cella. </li><li> Dopo 2 settimane, colonie di crescita può essere a mala pena visti ad occhio nudo, cercando in piatti dal basso. Essi sono molto più facili da vedere al microscopio. Le colonie tendono a crescere lungo i bordi del pozzo e di solito più colonie in un piatto crescono lungo il bordo stesso in pozzi diversi. Segna i pozzi con la crescita cellulare robusto e trasferire le cellule a 24-pozzetti in 1 ml di RPMI e tornare a 37 ° C incubatore. </li><li> Mantenere le cellule a 1 x 10 5 a 1 x 10 6 cellule / ml. Modificare i media facendo girare le cellule a 400 X g per 4 minuti a temperatura ambiente e di estrarre il supporto, se necessario. Sostituire con 1 ml di RPMI fresca. </li><li> Dopo diversi days di crescita, il trasferimento alle cellule di un 6-pozzetti e continuare a crescere in un incubatore a 37 ° C. </li><li> Dopo 3 settimane, analizzare i cloni per la perdita di IgM (come descritto di seguito). </li><li> Continuano a crescere le cellule per altre 2 settimane e poi analizzare i cloni di nuovo al punto 5 settimane di tempo. </li></ol> 6. Analisi: la perdita di IgM (3 settimane e 5 settimane) <ol><li> Aliquota 5 x 10 5 cellule di ogni pozzetto in una provetta da microcentrifuga 1,5 ml e girare le celle in basso a 400 X g per 4 minuti a temperatura ambiente. Utilizzare le cellule da ogni controllo e shRNA-knock-down pozzi, così come un campione per un controllo senza macchia. </li><li> Lavare le cellule in 1 ml di PBS e poi girare di nuovo a 400 X g per 4 minuti a temperatura ambiente. </li><li> Risospendere in 50 ml di PBS (controllo non colorate) o PBS + 1:20 diluizione del PE-marcato α-umano degli anticorpi IgM. Incubare in ghiaccio per 1 ora. </li><li> Spin le cellule giù a 400 X g per 4 minuti a temperatura ambiente. </li><li> Lavare il cells due volte con 1 ml di PBS e spin per 400 X g per 4 minuti ogni volta a temperatura ambiente. </li><li> Rimuovere il surnatante e risospendere in 100 ml di PBS. Trasferire le cellule risospese macchiato di un tubo di FACS. </li><li> Analizzare le cellule utilizzando una macchina FACS. </li><li> Confrontare la percentuale di IgM - le cellule dai controlli contro il shRNA smontati cellule. Come notato prima, la perdita IgM come misurato da FACS è un affidabile semi-quantitativa misura di SHM nelle cellule Ramos. </li></ol> 7. Analisi: Conferma knock-down da RT-PCR quantitativa (5 settimane) <ol><li> Aliquota 3 x 10 6 cellule di ogni pozzetto e spin down a 400 X g per 4 minuti a temperatura ambiente. </li><li> Preparare l'RNA dalla aliquota di cellule. Noi usiamo TRIzol secondo le raccomandazioni del fabbricante. </li><li> Preparare cDNA dalla preparazione RNA. Usiamo 2 mg di RNA e Superscript II secondo le raccomandazioni del fabbricante. </li><li> Eseguire una PCR quantitativa utilizzando il cDNA di confermam knock-down. Utilizziamo GAPDH come controllo normalizzazione, e FAST kit qPCR SYBR in un volume di 10 L di reazione totale. </li></ol> 8. Analisi: il sequenziamento genomico (5 settimane) <ol><li> Aliquota 5 x 10 6 cellule di ogni pozzetto e spin down a 400 X g per 4 minuti a temperatura ambiente. </li><li> Isolare il DNA genomico da queste cellule. Usiamo il genoma guidata SV kit di purificazione del DNA secondo le raccomandazioni del fabbricante. </li><li> PCR amplifica il DNA genomico per i geni Ig V 19 (Tabella 1) e qualsiasi altri geni di interesse utilizzando la DNA polimerasi KAPA HiFi. Usiamo questa polimerasi a causa del suo basso tasso di errori, ma ogni alta fedeltà polimerasi PCR dovrebbe essere accettabile. </li><li> Gel purificare i prodotti di PCR su un 1% gel di agarosio utilizzando il kit di gel QIAquick estrazione. </li><li> Alcuni polimerasi aggiunge un singolo deossiadenosina (A) residui a fini 3 'dei prodotti di PCR, mentre altri no. Questi 3 'A code sono necessari per il TA TOPOpasso clonazione. La polimerasi KAPA HiFi non lascia 3 'A code. A-coda i prodotti PCR incubando 25 microlitri di gel-purificati prodotto PCR con 3 ml tampone di reazione 10x Taq, 1 ml 10 mM dNTPs, e 1 unità di Taq polimerasi a 72 ° C per 30 minuti. </li><li> Clonare il gel-purificati prodotti PCR utilizzando il TOPO TA Cloning kit. Trasformare i prodotti della reazione TOPO nel fornita E. coli DH5α T1-R cellule competenti e piastra su LB / piastre di agar contenente 100 mg / ml ampicillina ed integrata con 1,6 mg di X-gal in base alle raccomandazioni del fabbricante. </li><li> Invia singole colonie per il sequenziamento. </li><li> Effettuare analisi di sequenza per determinare i tipi e le posizioni di mutazioni. </li></ol> 9. Rappresentante dei risultati: Come notato in precedenza, usiamo un vettore positivo di controllo virale che esprime sia la GFP e un puromicina gene per la resistenza. Noi di solito vede il 50-75% delle cellule GFP + due giornidopo la trasfezione. Nel nostro infezioni, di solito vede il 50-70% delle cellule sono GFP + due giorni dopo l'infezione, ma prima selezione. Dopo la selezione è terminata,&gt; 95% delle cellule sono + GFP. Come esperimenti di rappresentanza, mostriamo gli effetti degli aiuti iperespressione o abbattere un fattore di riparazione nelle cellule Ramos. In particolare, abbiamo transfettate un vettore retrovirale sovraespressione per gli aiuti connessi attraverso un sito IRES per Thy1.1 insieme con il vettore retrovirale pKat2 imballaggio in 23 BOSC cellule. Virus contenenti media è stata filtrata e poi utilizzato per infettare le cellule Ramos. Entrambe le wild-type (WT) e AID sovraesprimono (AID hi) le cellule sono state singola cella seminati e coltivati ​​per 3 settimane, ea quel punto sono stati analizzati per l'espressione genica attraverso qRT-PCR (Figura 2) e per la perdita di IgM da FACS (Figura 3 ). Per la colorazione FACS, le cellule sono state incubate con entrambe le 1:20 diluita PE marcate α-umano di anticorpi IgM e diluito 1:400 FITC-marcato α-ratto CD90/mouseCD90.1 (Thy1.1) anticorpi. In un esperimento separato, che contiene sia un lentivirus irrilevante shRNA (controllo) o un shRNA contro un fattore ad alta fedeltà di riparazione del DNA dovrebbe proteggere contro SHM sono state effettuate in 23 BOSC celle e quindi infettati in un clone di cellule SOCCORSO hi Ramos. Anche in questo caso, l'espressione genica (Figura 4) e la perdita di IgM (Figura 5) sono stati analizzati nei cloni singola cella dopo 3 settimane. Dal momento che il fattore di riparazione è pensato per fornire una protezione contro le mutazioni durante SHM, vediamo un aumento della perdita di IgM e SHM, in assenza del fattore. Se avessimo abbattuto un fattore coinvolto nella generazione SHM mutazioni associate, avremmo visto una diminuzione della perdita di IgM, invece. Come previsto, il nostro qRT-PCR risultati mostrano un marcato aumento dell'espressione SOCCORSO dopo l'infezione di cellule con un vettore iperespressione AIUTO (Figura 2), mentre i livelli del fattore di caduta di riparazione del DNA in presenza di un shRNA mirato contro tale fattore (figura 4 ). Perché clon individualees possono variare, si potrebbe vedere qualche variazione nei livelli di espressione genica. Poiché l'espressione genica può variare, è necessario confermare l'espressione in ogni clone si prevede di analizzare ulteriormente. ShRNAs diverse contro lo stesso gene potrebbe avere effetti diversi sulla espressione genica e, così si dovrebbe schermo shRNAs diversi per determinare quale ha il maggiore impatto. Knockdown può anche essere confermata a livello proteico mediante immunoblotting. Allo stesso modo, cloni individuo può variare notevolmente a livello di perdita di IgM. Alcuni cloni potrebbero dimostrare un effetto "jackpot", dove una mutazione IgM è verificato in una delle prime divisioni cellulari - per esempio, si vedrà la perdita di IgM&gt; 50% semplicemente perché una delle celle divenne IgM - alla stadio di due cellule. L'influenza di questi cloni è ridotto al minimo calcolando la media per diversi cloni singola cella. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3573/3573fig1.jpg"> Figura 1. Schematica per la trasmissioneperfezione, l'infezione e l'analisi di perdita di IgM. Si veda il testo per i dettagli. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3573/3573fig2.jpg"> Figura 2. SOCCORSO sovraespressione in cellule Ramos. WT e AID hi cellule Ramos singola cella sono stati clonati e cresciuti per 3 settimane, in cui è stata misurata l'espressione SOCCORSO punto cloni singoli qRT-PCR. Espressione di GAPDH è stato utilizzato per la normalizzazione. WT è stato impostato a 1. Il valore mediano è indicato. * Indica un valore di p &lt;0,01, calcolato come una coda di Student t-test. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3573/3573fig3.jpg"> Figura 3. Aumentata perdita di IgM in celle hi AID rispetto alle cellule WT. IgM superficie è stata misurata mediante FACS al punto 3 settimane di tempo, e la percentuale di perdita di IgM è stato calcolato per WT e celle hi AIUTO. (A) Rappresentante trama FACS di un clone WT e un clone AID hi. L'AID sovraespressione vettore ha AID collegato a Thy1.1 tramite un sito IRES, in modo Thy1.1 espressione è utilizzata come un surrogato per l'espressione AIUTO. (B) La quantificazione della perdita di IgM nel WT diversi cloni hi AID. Il valore mediano è indicato. * Indica un valore di p &lt;0,01, calcolato come una coda di Student t-test. <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/3573/3573fig4.jpg"> Figura 4. Knockdown di un fattore di riparazione nelle cellule hi AIUTO. Le cellule sono state infettate con un controllo sia irrilevante shRNA (controllo) o il nostro shRNA di interesse (shRNA), e singole cellule seminato. Dopo 3 settimane, l'espressione genica nei cloni individuali è stata misurata mediante qRT-PCR. Espressione di GAPDH è stato utilizzato per la normalizzazione. WT è stato impostato a 1. Il valore mediano è indicato. * Indica un valore di p &lt;0,01, calcolato come una coda di Student t-test. <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/3573/3573fig5.jpg"> Figura 5. Perdita IgM Maggiorenelle cellule SOCCORSO hi con livelli abbattuto di un fattore di riparazione. IgM di superficie in diversi cloni è stata misurata mediante FACS al punto 3 settimane di tempo, e la percentuale di perdita di IgM è stata calcolata in cellule ancora AID sovraesprimono. Il valore mediano è indicato. * Indica un valore di p &lt;0,01, calcolato come una coda di Student t-test. <img src="/files/ftp_upload/3573/3573table1.jpg" alt="Tabella 1"> . Tabella 1 sequenze primer per i geni Ig 19: il Cμ regione costante, la pesante catena regione V (V H), e la luce regione catena V (V L).

<ol><li>Di Noia, J. M., Neuberger, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+of+antibody+somatic+hypermutation%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms of antibody somatic hypermutation.</a> Annu. Rev. Biochem. 76, 1-22 (2007).</li>
<li>Peled, J. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biochemistry+of+somatic+hypermutation%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The biochemistry of somatic hypermutation.</a> Annu. Rev. Immunol. 26, 481-511 (2008).</li>
<li>Longerich, S., Basu, U., Alt, F., Storb, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AID+in+somatic+hypermutation+and+class+switch+recombination%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Immunol%22%5BJournal%5D)">AID in somatic hypermutation and class switch recombination.</a> Curr. Opin. Immunol. 18, 164-174 (2006).</li>
<li>Bardwell, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+somatic+hypermutation+and+reduced+class-switch+recombination+in+exonuclease+1-mutant+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Altered somatic hypermutation and reduced class-switch recombination in exonuclease 1-mutant mice.</a> Nat. Immunol. 5, 224-229 (2004).</li>
<li>Martomo, S. A., Yang, W. W., Gearhart, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+role+for+Msh6+but+not+Msh3+in+somatic+hypermutation+and+class+switch+recombination%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">A role for Msh6 but not Msh3 in somatic hypermutation and class switch recombination.</a> J. Exp. Med. 200, 61-68 (2004).</li>
<li>Phung, Q. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+hypermutation+at+G+and+C+nucleotides+in+immunoglobulin+variable+genes+from+mice+deficient+in+the+MSH2+mismatch+repair+protein%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Increased hypermutation at G and C nucleotides in immunoglobulin variable genes from mice deficient in the MSH2 mismatch repair protein.</a> J. Exp. Med. 187, 1745-1751 (1998).</li>
<li>Rada, C., Ehrenstein, M. R., Neuberger, M. S., Milstein, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hot+spot+focusing+of+somatic+hypermutation+in+MSH2-deficient+mice+suggests+two+stages+of+mutational+targeting%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Hot spot focusing of somatic hypermutation in MSH2-deficient mice suggests two stages of mutational targeting.</a> Immunity. 9, 135-141 (1998).</li>
<li>Rada, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunoglobulin+isotype+switching+is+inhibited+and+somatic+hypermutation+perturbed+in+UNG-deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Immunoglobulin isotype switching is inhibited and somatic hypermutation perturbed in UNG-deficient mice.</a> Curr. Biol. 12, 1748-1755 (2002).</li>
<li>Delbos, F., Aoufouchi, S., Faili, A., Weill, J. C., Reynaud, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+polymerase+eta+is+the+sole+contributor+of+A%2FT+modifications+during+immunoglobulin+gene+hypermutation+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">DNA polymerase eta is the sole contributor of A/T modifications during immunoglobulin gene hypermutation in the mouse.</a> J. Exp. Med. 204, 17-23 (2007).</li>
<li>Masuda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+polymerase+eta+is+a+limiting+factor+for+A%3AT+mutations+in+Ig+genes+and+contributes+to+antibody+affinity+maturation%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">DNA polymerase eta is a limiting factor for A:T mutations in Ig genes and contributes to antibody affinity maturation.</a> Eur. J. Immunol. 38, 2796-2805 (2008).</li>
<li>Lim, D. S., Hasty, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mutation+in+mouse+rad51+results+in+an+early+embryonic+lethal+that+is+suppressed+by+a+mutation+in+p53%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">A mutation in mouse rad51 results in an early embryonic lethal that is suppressed by a mutation in p53.</a> Mol. Cell. Biol. 16, 7133-7143 (1996).</li>
<li>Xiao, Y., Weaver, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conditional+gene+targeted+deletion+by+Cre+recombinase+demonstrates+the+requirement+for+the+double-strand+break+repair+Mre11+protein+in+murine+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic.+Acids.+Res%22%5BJournal%5D)">Conditional gene targeted deletion by Cre recombinase demonstrates the requirement for the double-strand break repair Mre11 protein in murine embryonic stem cells.</a> Nucleic. Acids. Res. 25, 2985-2991 (1997).</li>
<li>Zhu, J., Petersen, S., Tessarollo, L., Nussenzweig, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+disruption+of+the+Nijmegen+breakage+syndrome+gene+NBS1+leads+to+early+embryonic+lethality+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Targeted disruption of the Nijmegen breakage syndrome gene NBS1 leads to early embryonic lethality in mice.</a> Curr. Biol. 11, 105-109 (2001).</li>
<li>Luo, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+mRad50+causes+embryonic+stem+cell+lethality%2C+abnormal+embryonic+development%2C+and+sensitivity+to+ionizing+radiation%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Disruption of mRad50 causes embryonic stem cell lethality, abnormal embryonic development, and sensitivity to ionizing radiation.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 96, 7376-7381 (1999).</li>
<li>Pavri, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation-induced+cytidine+deaminase+targets+DNA+at+sites+of+RNA+polymerase+II+stalling+by+interaction+with+Spt5%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Activation-induced cytidine deaminase targets DNA at sites of RNA polymerase II stalling by interaction with Spt5.</a> Cell. 143, 122-133 (2010).</li>
<li>Lee-Theilen, M., Matthews, A. J., Kelly, D., Zheng, S., Chaudhuri, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CtIP+promotes+microhomology-mediated+alternative+end+joining+during+class-switch+recombination%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Struct.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">CtIP promotes microhomology-mediated alternative end joining during class-switch recombination.</a> Nat. Struct. Mol. Biol. 18, 75-79 (2011).</li>
<li>Basu, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+RNA+exosome+targets+the+AID+cytidine+deaminase+to+both+strands+of+transcribed+duplex+DNA+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The RNA exosome targets the AID cytidine deaminase to both strands of transcribed duplex DNA substrates.</a> Cell. 144, 353-363 (2011).</li>
<li>Yabuki, M., Fujii, M. M., Maizels, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+MRE11-RAD50-NBS1+complex+accelerates+somatic+hypermutation+and+gene+conversion+of+immunoglobulin+variable+regions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The MRE11-RAD50-NBS1 complex accelerates somatic hypermutation and gene conversion of immunoglobulin variable regions.</a> Nat. Immunol. 6, 730-736 (2005).</li>
<li>Sale, J. E., Neuberger, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TdT-accessible+breaks+are+scattered+over+the+immunoglobulin+V+domain+in+a+constitutively+hypermutating+B+cell+line%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">TdT-accessible breaks are scattered over the immunoglobulin V domain in a constitutively hypermutating B cell line.</a> Immunity. 9, 859-869 (1998).</li>
<li>Cumbers, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+and+iterative+affinity+maturation+of+antibodies+in+vitro+using+hypermutating+B-cell+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Generation and iterative affinity maturation of antibodies in vitro using hypermutating B-cell lines.</a> Nat. Biotechnol. 20, 1129-1134 (2002).</li>
<li>Papavasiliou, F. N., Schatz, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-cycle-regulated+DNA+double-stranded+breaks+in+somatic+hypermutation+of+immunoglobulin+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cell-cycle-regulated DNA double-stranded breaks in somatic hypermutation of immunoglobulin genes.</a> Nature. 408, 216-221 (2000).</li>
<li>Parsa, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AID+mutates+a+non-immunoglobulin+transgene+independent+of+chromosomal+position%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Immunol%22%5BJournal%5D)">AID mutates a non-immunoglobulin transgene independent of chromosomal position.</a> Mol. Immunol. 44, 567-575 (2007).</li>
<li>Zhang, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clonal+instability+of+V+region+hypermutation+in+the+Ramos+Burkitt%27s+lymphoma+cell+line%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Clonal instability of V region hypermutation in the Ramos Burkitt's lymphoma cell line.</a> Int. Immunol. 13, 1175-1184 (2001).</li>
<li>Ukai, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+a%3AT+mutations+is+dependent+on+cellular+environment+but+independent+of+mutation+frequency+and+target+gene+location%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Induction of a:T mutations is dependent on cellular environment but independent of mutation frequency and target gene location.</a> J. Immunol. 181, 7835-7842 (2008).</li>
<li>Dull, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+third-generation+lentivirus+vector+with+a+conditional+packaging+system%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">A third-generation lentivirus vector with a conditional packaging system.</a> J. Virol. 72, 8463-8471 (1998).</li>
<li>Nakamura, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+frequency+class+switching+of+an+IgM%2B+B+lymphoma+clone+CH12F3+to+IgA%2B+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Immunol%22%5BJournal%5D)">High frequency class switching of an IgM+ B lymphoma clone CH12F3 to IgA+ cells.</a> Int. Immunol. 8, 193-201 (1996).</li>
<li>Muramatsu, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specific+expression+of+activation-induced+cytidine+deaminase+%28AID%29%2C+a+novel+member+of+the+RNA-editing+deaminase+family+in+germinal+center+B+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Specific expression of activation-induced cytidine deaminase (AID), a novel member of the RNA-editing deaminase family in germinal center B cells.</a> J. Biol. Chem. 274, 18470-18476 (1999).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Come discusso precedentemente, i modelli di linee cellulari per la diversificazione degli anticorpi sono diventati un punto di partenza per identificare nuove proteine ​​che influenzano le diverse fasi durante la diversificazione degli anticorpi. Vi presentiamo qui un metodo per l&#39;utilizzo di infezione virale alle proteine ​​o knock-down o iperespressione in cellule B Ramos linea e quindi esaminare l&#39;impatto sulla SHM. Per questi studi, ci avvaliamo sia Ramos WT e AID hi c...

Reagenti suggerito - la maggior parte di questi possono essere sostituiti con prodotti simili di altri vendor. <table border="1" ><tbody><tr><th> Nome del reagente </th><th > Azienda </th><th> Numero di catalogo </th><th> Commenti </th></tr><tr><td > 6-ben chiaro TC-trattati piastre </td><td > Corning </td><td> 3516 </td><td ></td></tr><tr><td > 10 mL BD Luer-Loksyringes </td><td > BD Medical </td><td > 309604 </td><td ></td></tr><tr><td> 24-ben chiaro TC-trattati piastre </td><td > Corning </td><td > 3526 </td><td></td></tr><tr><td > 96-polistirolo ben chiaro fondo piatto TC-trattati micropiastre </td><td > Corning </td><td > 3596 </td><td ></td></tr><tr><td > TC-100 millimetri trattati cultura piatti </td><td > Corning </td><td > 430167 </td><td ></td></tr><tr><td > Filtri per siringa Acrodisc, 0,45 micron </td><td > Pall Life Sciences </td><td > 4604 </td><td ></td></tr><tr><td > Agar </td><td > Teknova </td><td > A7777 </td&gt; <td ></td></tr><tr><td > Agarosio </td><td > GeneMate </td><td> E-3120-500 </td><td ></td></tr><tr><td > Ampicillina </td><td> Sigma </td><td > A0166 </td><td> 100 mg / mL in acqua </td></tr><tr><td > BD FACSCanto II citometro a flusso </td><td> BD Biosciences </td><td ></td><td > o simili </td></tr><tr><td> BD Falcon rotondo fondo polistirolo tubi </td><td> BD Biosciences </td><td > 352054 </td><td > per FACS </td></tr><tr><td > BOSC 23 celle </td><td > ATCC </td><td > CRL-11270 </td><td ></td></tr><tr><td > CO 2 incubatore capace di 37 ° C </td><td ></td><td ></td><td ></td></tr><tr><td > DMEM (medio Dulbecco modificato Eagle) </td><td > Sigma </td><td> D6429 </td><td ></td></tr><tr><td > FBS (siero fetale bovino) </td><td > Gemini Bio-Prodotti </td><td > 100-106 </td><td ></td></tr><tr><td > FITC α-ratto CD90/mouse CD90.1 anticorpi </td><td > BioLegend </td><td > 202503 </td><td > FITCα-Thy1.1 </td></tr><tr><td > FuGENE 6 Transfection Reagent </td><td > Roche </td><td > 11814443001 </td><td></td></tr><tr><td > HEPES soluzione tampone </td><td > Invitrogen </td><td > 15630-080 </td><td ></td></tr><tr><td > KAPA HiFi DNA polimerasi </td><td > KAPA Biosystems </td><td > KK2101 </td><td ></td></tr><tr><td > LB Broth (brodo lisogenia - Luria) Polvere </td><td > Difco </td><td > 240230 </td><td ></td></tr><tr><td > MISSIONE TRC shRNA magazzino glicerolo batterico </td><td > Sigma </td><td ></td><td> shRNA vettori </td></tr><tr><td > NCS (siero di vitello neonato) </td><td > Gemini Bio-Prodotti </td><td > 100-504 </td><td ></td></tr><tr><td> PBS (soluzione tampone fosfato) </td><td > Invitrogen </td><td> 70011 </td><td > diluito a 1x in acqua </td></tr><tr><td > PE-α umano anticorpi IgM </td><td > BioLegend </td><td > 314508 </td><td ></td></tr><tr><td > PGS (penicillina-streptomicina-glutamina soluzione) </td><td > Gemini Bio-Prodotti </td><td > 400-110 </td><td ></td></tr><tr><td> Polibrene (hexadimethrine bromuro) </td><td > Sigma </td><td > 107689 </td><td > 10 mg / ml in acqua </td></tr><tr><td > PureYield sistema Midiprep plasmidi </td><td > Promega </td><td > A2495 </td><td></td></tr><tr><td> Puromicina </td><td> Sigma </td><td > P8833 </td><td > 250 mcg / ml in acqua </td></tr><tr><td > QIAquick gel kit di estrazione </td><td > QIAGEN </td><td > 28706 </td><td ></td></tr><tr><td> Ramos (RA 1) le cellule </td><td > ATCC </td><td > CRL-1596 </td><td ></td></tr><tr><td > RPMI-1640 medium </td><td > Sigma </td><td > R8758 </td><td ></td></tr><tr><td > SuperScript II </td><td > Invitrogen </td><td > 18064-022 </td><td></td></tr><tr><td > SYBR VELOCE qPCR kit </td><td > KAPA Biosystems </td><td > KK4601 </td><td ></td></tr><tr><td > Taq DNA polimerasi </td><td > Invitrogen </td><td > 18038-042 </td><td ></td></tr><tr><td > TOPO TA Cloning Kit </td><td > Vitrogenerazione </td><td > K4520-01 </td><td ></td></tr><tr><td > TRIzol </td><td > Invitrogen </td><td > 15596-026 </td><td ></td></tr><tr><td > Wizard SV sistema di purificazione del DNA genomico </td><td > Promega </td><td > A2361 </td><td ></td></tr><tr><td > X-Gal [5-bromo-4-cloro-3-indoyl-β-D-galatopyranoside] </td><td > Growcells </td><td > C-5687 </td><td > 40 mg / ml in DMSO </td></tr></tbody></table>

valutare mutazione somatica nel ramos cellule b dopo iperespressione o knockdown di specifici geni

Assessing Somatic Hypermutation in Ramos B Cells after Overexpression or Knockdown of Specific Genes

Le cellule B iniziano la loro vita con gli anticorpi a bassa affinità generato da V (D) J ricombinazione. Tuttavia, al rilevamento un agente patogeno, la (V) regione variabile di un gene immunoglobuline (Ig) è mutato circa 100.000 volte più del resto del genoma attraverso la mutazione somatica (SHM), con conseguente 1,2 anticorpi ad alta affinità. Inoltre, passare ricombinazione di classe (CSR) produce anticorpi con differenti funzioni effettrici a seconda del tipo di risposta immunitaria che è necessario per un particolare agente patogeno. Sia CSR e SHM vengono avviate attraverso l&#39;attivazione indotta citidina deaminasi (AID), che deamina residui di citosina nel DNA per produrre uracils. Queste uracils sono trattati con forme soggette a errori di percorsi di riparazione, alla fine portano a mutazioni e la ricombinazione 1-3. La nostra attuale comprensione dei dettagli molecolari di SHM e RSI provenire da una combinazione di studi in topi, pile, di linee cellulari e cellule-free esperimenti. Modelli murini rimangono il gold standard con fori genetica che mostrano ruoli critici per la riparazione di molti fattori (ad esempio Ung, MSH2, MSH6, Exo1 e polimerasi η) 4-10. Tuttavia, non tutti i geni sono suscettibili per gli studi di eliminazione diretta. Per esempio, KO di proteine ​​diverse rottura a doppio filamento di riparazione sono embrionalmente letali o mettere in pericolo lo sviluppo delle cellule B 11-14. Inoltre, a volte la funzione specifica di una proteina in SHM o CSR può essere mascherato da più difetti globale causato dalla eliminazione diretta. Inoltre, dal momento che gli esperimenti sui topi possono essere lunghe, alterando l&#39;espressione di singoli geni in linee cellulari è diventata una tappa sempre più popolare primi a identificare e caratterizzare geni candidati 15-18. Ramos - una linea cellulare di linfoma di Burkitt che subisce costitutivamente SHM - è stata una popolare linea cellulare modello per studiare SHM 18-24. Un vantaggio di cellule Ramos è che hanno un built-in semi conveniente-Quantitativa misura di SHM. Cellule wild-type esprimere IgM e, come raccogliere le mutazioni, alcune delle mutazioni knock out espressione IgM. Pertanto, il saggio perdita IgM di fluorescenza attivata la scansione cellulare (FACS) fornisce una rapida lettura per il livello di SHM. Una misura più quantitativa di SHM possono essere ottenute direttamente sequenziamento dei geni anticorpali. Dato che le cellule Ramos è difficile trasfezione, produciamo derivati ​​stabili che hanno aumentato o diminuito l&#39;espressione di un singolo gene da infettare le cellule con costrutti retrovirali o lentivirali che contengono una cassetta iperespressione o un breve hairpin RNA (shRNA), rispettivamente. Qui, descriviamo il modo in cui infettare le cellule Ramos e quindi utilizzare queste cellule per studiare il ruolo di specifici geni in SHM (Figura 1).

Ci descrivono come eseguire infezioni retrovirali o lentivirali di sovraespressione o shRNA contenenti costruisce nell&#39;essere umano a cellule B Ramos line e come misurare mutazione somatica in queste cellule.

Valutare mutazione somatica nel Ramos cellule B dopo iperespressione o Knockdown di specifici geni

Le cellule B iniziano il loro ciclo vitale con anticorpi a bassa affinità generati dalla ricombinazione V(D)J. Tuttavia, in seguito al rilevamento di un patogeno, la regione variabile (V) di un...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è modificare l'espressione di un gene e successivamente misurare il suo impatto sulla mutazione somatica iperaccellerata. Questo viene ottenuto trasfettando le cellule Bosque 23 per produrre particelle virali contenenti un costrutto di sovraespressione o un costrutto contenente SHRA. Come secondo passaggio, le cellule ramo vengono infettate con i virus, determinando la riduzione dell'espressione (knockdown) o la sovraespressione del gene di interesse.Successivamente, singole cellule clonali vengono coltivate per diverse settimane, consentendo alle cellule di accumulare mutazioni. Infine, l'effetto della modifica dell'espressione genica può essere determinato analizzando la perdita di IgM e mediante il sequenziamento dei geni IG. Questo metodo potrebbe contribuire a identificare nuovi fattori coinvolti nella diversificazione degli anticorpi.Iniziare eluendo 600 microlitri di DMEM riscaldato in un tubo microcentrifuga da 1,5 millilitri. Quindi, avendo cura di pipettare direttamente nel mezzo, aggiungere 30 microlitri di FU gene sei nel tubo, vorticare la soluzione per meno di un secondo e poi incubare il tubo a temperatura ambiente per cinque minuti. Successivamente, per un'infezione lentivirale come questa, aggiungere sei microgrammi di costrutto S-H-R-N-A e 1,5 microgrammi ciascuno di P-V-S-V-G-P-M-D-L-G-P-R-R-E e PRSV rev alla miscela di DMEM e FU gene sei.Vortexare brevemente la soluzione, quindi incubare nuovamente i due bit a temperatura ambiente, questa volta per 25 minuti. Infine, trasfettare una coltura cellulare Bosque 23 al 50-60% di confluenza con il gene D-N-A-D-M-E-M FU sei. Mescolare e incubare le cellule a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica per 24 ore.Il giorno successivo, aggiungere cinque millilitri di DMEM alle cellule e rimetterle nell'incubatore per altre 24 ore. Il terzo giorno dopo la trasfezione, utilizzare una siringa da 10 millilitri per raccogliere 10 millilitri di mezzo dalle cellule transfettate box 23, quindi applicare un filtro da 0,45 micrometri all'estremità della siringa. Raccogliere il mezzo filtrato in un tubo pulito in polipropilene da 15 millilitri. 24 ore prima dell'infezione, seminare due millilitri di due volte 10 alla quinta cellule per millilitro di cellule ramo in RPMI completo in una piastra a sei pozzetti. Il giorno seguente, aggiungere tre microlitri di una soluzione di polibrene da 10 microgrammi per millilitro e un millilitro di virus alle cellule ramo, quindi mescolare bene la sospensione cellulare mediante pipettaggio.Per il controllo non infetto, aggiungere un millilitro di RPMI completo e tre microlitri di polibrene in una delle pozzette al posto del virus. Infettare inoltre una pozzetta con un controllo negativo abbinato e un'altra con un vettore contenente GFP per determinare l'efficienza di infezione mediante fax. Centrifugare quindi la piastra a sei pozzette a 3000 ×g per 90 minuti a temperatura ambiente, quindi rimettere la piastra nell'incubatore per 48 ore.Infine, centrifugare le cellule infette in un tubo in polipropilene da 15 millilitri a 400 G per quattro minuti. A temperatura ambiente, aspirare il mezzo assicurandosi di non disturbare il pellet cellulare e risospendere le cellule in RPMI fresco. Dopo aver contato le cellule, utilizzare un'equivalenza di cellule ramo infette pari a 10 cellule per millilitro.In una soluzione di media condizionato RPMI e FBS fino a un volume finale di 10 millilitri per ogni piastra seminata. Quindi utilizzare una pipetta multicanale per seminare le piastre a 96 pozzetti con 100 microlitri per pozzetto delle cellule diluite.Dopo aver incubato le piastre per 24 ore a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica, utilizzare un microscopio per esaminare ogni singolo pozzetto. Per confermare la presenza di cellule, poiché determinare la profondità corretta per identificare singole cellule può risultare difficile. Innanzitutto, provare a mettere a fuoco i numeri dei pozzetti stampati sul fondo della piastra a 96 pozzetti.Quindi provare a cercare una cellula dopo due settimane. Verificare la presenza di colonie cellulari lungo i bordi delle pozzette utilizzando inchiostro indelebile. Contrassegnare le pozzette con una crescita cellulare robusta, quindi trasferire le colonie in piastre a 24 pozzette con un millilitro di RPMI per un'ulteriore incubazione.Dopo alcuni giorni di crescita, trasferire le cellule in una piastra a sei pozzetti e continuare l'incubazione delle colture. Tre settimane dopo la semina delle colonie cellulari nella piastra a sei pozzetti Eloqua, raccogliere cinque volte 10 alla quinta cellule da ciascun pozzetto in un tubo microcentrifuga da 1,5 millilitro. In questo momento, raccogliere anche le cellule da ciascuno dei pozzetti di controllo e con silenziamento dell'HRNA, oltre a un campione per un controllo non colorato.Ora centrifugare tutte le cellule a 400 G per quattro minuti a temperatura ambiente, lavando due volte le cellule con un millilitro di PBS per la seconda centrifugazione. Dopo il secondo lavaggio, sospenderemo il pellet del controllo non colorato in 50 microlitri di PBS e gli altri pellet in PBS più una diluizione 1:20 di anticorpo anti-umano IgM marcato con PE. Quindi incubare tutti i campioni cellulari sul ghiaccio per un'ora dopo aver lavato le cellule altre due volte con PBS come in precedenza, scartare il soprannatante e risospendere tutti i pellet in 100 microlitri di PBS.Successivamente, trasferire le cellule sospese e colorate e le cellule di controllo non colorate in provette per citofluorimetria e analizzare quindi le cellule mediante citometria a flusso. Confrontare la percentuale di cellule negative per IgM dai controlli rispetto alle cellule con silenziamento di S-H-R-N-A. Un vettore retrovirale per sovraespressione di un ID è stato trasfettato in cellule bosque 23.I virus sono stati quindi raccolti e utilizzati per infettare cellule Ramos, sia di tipo selvatico (wt) che sovraesprimenti a ID; le cellule a ID.High sono state seminate singolarmente e coltivate per tre settimane, al termine delle quali sono state analizzate per l'espressione genica mediante RT-PCR quantitativa. Come previsto, i risultati della RT-PCR mostrano un marcato aumento dell'espressione di a ID dopo l'infezione delle cellule con un vettore di sovraespressione di a ID. La perdita di IgM sulle cellule infette è stata valutata anche mediante citometria a flusso. L'IgM di superficie è stata misurata mediante citometria a flusso, utilizzando i dati della figura precedente al tempo di tre settimane, e la percentuale di perdita di IgM è stata calcolata per le cellule di tipo selvatico e quelle ad alta espressione di a ID, rappresentandola graficamente. Come previsto, le cellule che sovraesprimono a ID hanno mostrato una maggiore perdita di IgM di superficie.In un esperimento separato, sono stati prodotti lentivirus contenenti o un S-H-R-N-A irrilevante come controllo oppure un S-H-R-N-A diretto contro un fattore di riparazione del DNA ad alta fedeltà, che si ritiene protegga contro la SHM, in cellule bosque 23. I lentivirus sono stati quindi utilizzati per infettare una clone a ID elevato di cellule Ramos. Ancora una volta, è stata analizzata l'espressione genica e, come previsto, si è osservata una riduzione dei livelli del fattore di riparazione del DNA in presenza del S-H-R-N-A specifico contro tale fattore. Inoltre, dopo tre settimane è stata analizzata la perdita di IGM nei cloni monocellulari, poiché si ritiene che il fattore fornisca protezione contro le mutazioni durante la SHM; pertanto, in assenza di tale fattore si verifica un aumento della perdita di IGM e della SHM, come si può osservare in questa figura.Dopo aver guardato questo video, dovresti avere una buona comprensione di come eseguire infezioni virali di costrutti contenenti OVEREXPRESSION o S-H-R-N-A nella linea cellulare di linfociti B raw, e successivamente di come misurare la mutazione ipersomatica in queste cellule.

assessing-somatic-hypermutation-ramos-b-cells-after-overexpression-or

Research

Ricerca

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia e Infezioni

Forniamo un metodo per testare le varianti BRCA1 in un test di coltura di tessuti a base di ricombinazione omologa la riparazione del danno al DNA mediante deplezione delle proteine ​​endogene BRCA1 da una cella con RNAi e la sua sostituzione con un mutante punto BRCA1 che contiene un cambio di codifica.

Identificare gli effetti delle mutazioni BRCA1 sulla ricombinazione omologa utilizzando cellule che esprimono endogeno wild-type BRCA1

Qui si descrive in vivo mutagenesi saggio per un piccolo numero di cellule ematopoietiche purificate utilizzando il modello di topo transgenico LacI. Il gene LacI può essere isolato per determinare la frequenza, la posizione ed il tipo di mutanti DNA sorto spontaneamente o dopo l'esposizione a genotossine.

L&#39;identificazione del DNA Mutazioni in depurata ematopoietiche cellule staminali / progenitrici

I fattori epigenetici possono interagire con programmi genetici di modulare l'espressione genica e regolare la funzione delle cellule B. Combinando la stimolazione in vitro delle cellule di B, qRT-PCR e microRNA-sequenza di alto-rendimento e sequenza di mRNA approcci, possiamo analizzare la modulazione epigenetica di miRNA e l'espressione genica in cellule di B.

Modulazione da analisi di inibitore HDAC genoma di microRNA e mRNAs in B le cellule indotte a sottoporsi switch classe DNA ricombinazione e differenziazione delle cellule di Plasma

Rilevamento di acido ribonucleico (cRNA) dal sangue di circolazione è un bisogno insoddisfatto in diagnostica clinica. Qui descriviamo i metodi che caratterizzano cRNA dai malati di cancro del polmone non a piccole cellule usando reazione a catena della polimerasi digitale sensibile e specifico. Le prove di soddisfano requisiti di progettazione per individuare varianti di fusione entro 72 ore.

Un emoderivato di Test per la rilevazione di ROS1 e RET trascrizioni di fusione da acido ribonucleico usando reazione a catena della polimerasi digitale di circolazione

Qui, descriviamo un in situ di ibridazione test che consente la rivelazione sensibile e specifica delle sequenze più breve 50 nucleotidi con risoluzione del singolo-nucleotide a livello di singola cellula. L'analisi, che possono essere eseguita manualmente o automaticamente, può abilitare la visualizzazione delle varianti di splicing, brevi sequenze e mutazioni all'interno del contesto del tessuto.

Visualizzazione di varianti genetiche, gli obiettivi di brevi e mutazioni puntiformi nel contesto morfologico del tessuto con una determinazione del RNA In Situ di ibridazione

Qui, presentiamo un protocollo dettagliato per identificare gli eventi di ricombinazione omologa che si è verificato nelle cellule staminali embrionali del mouse usando macchiare del sud e/o PCR. Questo metodo è esemplificato dalla generazione di modelli di non muscolare miosina II sostituzione genetica del mouse utilizzando tradizionale embrionale basati su cellule staminali omologa ricombinazione mediata tecnologia di targeting.

Identificazione di eventi di ricombinazione omologa in cellule staminali embrionali del Mouse mediante Southern Blotting e reazione a catena della polimerasi

Questo manoscritto descrive un cluster regolarmente intervallate breve palindromo si ripete (CRISPR) CRISPR Cas9 metodo basato per indagine semplice e rapida del ruolo di geni candidati multipli nella proliferazione delle cellule di leucemia mieloide acuta (LMA) in parallelo. Questa tecnica è scalabile e può essere applicata in altre linee cellulari di cancro pure.

Indagine delle dipendenze genetiche utilizzando dosaggi di concorrenza basati su CRISPR-Cas9

Qui viene presentato un saggio per quantificare l'ipermutazione somatica all'interno del locus genico a catena pesante dell'immunoglobulina usando cellule B centro germinali dalle macchie del peyer del topo.

Analisi dell'ipermutazione somatica nell'introne JH4 delle cellule del Centro Germinale B dalle patch di Mouse Peyer

Questo articolo introduce l'applicazione di un metodo di rilevamento a bassa frequenza basato sul sequenziamento Sanger nel linfoma angioimmunoblastico. Fornire una base per l'applicazione di questo metodo ad altre malattie.

PCR bloccante wild-type combinata con sequenziamento Sanger per il rilevamento di mutazioni somatiche a bassa frequenza

Questo protocollo descrive un approccio scalabile di screening intraductale CRISPR che consente studi paralleli in vivo di knockout e attivazione genica nella ghiandola mammaria del topo.

Screening parallelo in vivo del knockout e attivazione genica nella ghiandola mammaria del topo

Impara a valutare l'ipermutazione somatica nelle cellule B Ramos dopo iperespressione o knockdown genico mediante infezioni virali. Questo metodo identifica fattori coinvolti nella diversificazione anticorpale.

Valutare mutazione somatica nel Ramos cellule B dopo iperespressione o Knockdown di specifici geni

Esplora altri video