Name: Epidurale Misurazione della pressione intracranica in ratto utilizzando una fibra ottica trasduttore di pressione (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-25T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 4 s
Description: Impara a misurare la pressione intracranica nel ratto con un sensore a fibra ottica epidurale minimamente invasivo. Questa tecnica preserva le meningi e consente tracciati fisiologici accurati per studi neurologici.

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Questo progetto è stato finanziato dalla National Stroke Foundation, Hunter Medical Research Institute (HMRI) e National Health and Medical Research Council (NH &amp; MRC), Australia. Un ringraziamento speciale alla Facoltà della Salute Workshop presso l&#39;Università di Newcastle per la loro competenza tecnica.

1. Skull Penetrazione <ol><li> Anestetizzare ratto con isofluorano (induzione 5%, 1,5-2% di manutenzione) in 70% N 2 e 30% O 2. Dopo l&#39;induzione dell&#39;anestesia, posizionare il topo prona su una piastra riscaldante, posizionando il naso del topo in un cono di naso anestetico. </li><li> Pur mantenendo l&#39;anestesia, fissare la testa in un frame stereotassico, inserendo le orecchie-bar fino a quando la testa si è stabilizzata. Assicurarsi che la respirazione non è compromessa. (Figura 2-A). </li><li> Iniettare cuoio capelluto per via sottocutanea con anestetico locale a lunga durata, bupivacaina 0,3 ml 0,5% (Pfizer, Australia) prima di prendere una skin 1,5 centimetri un&#39;incisione mediana testa. (Strumenti sterili e guanti devono essere utilizzati.) </li><li> Smussare sezionare i tessuti molli e dei muscoli circostanti per individuare in modo chiaro e Lambda Bregma. Ritrarre la pelle e del tessuto connettivo. </li><li> Stelo qualsiasi sanguinamento applicando pressione al cranio esposto. Cranio sanguinamento eccessivo può essere cauterizzato. </li><li> Utilizzo di un dentale drill con una punta di 1 mm radica, radica di 2 mm ampio foro nell&#39;osso parietale destro. Burr da 2 mm foro laterale e 2 mm posteriormente da Bregma per evitare il seno longitudinale superiore e assicurare il posizionamento del sensore ICP è sul territorio ischemico, ictus per studi. Ubicazioni alternative sia ugualmente adatta per altre applicazioni. Burr il foro ad una profondità dove il cranio sopra la dura diventa traslucida. (Figura 2-B). </li><li> Sostituire la bava con una punta da 0,5 mm bave per rimuovere il cranio alla base del foro. </li><li> Quando il cranio comincia a incrinarsi, usare pinze a 45 ° per rimuovere tutti i rimanenti cranio, assicurando la base del foro è liberata dai detriti. (Figura 3). </li></ol> 2. Vite Modifica e inserimento <ol><li> Praticare un foro di 0,7 millimetri attraverso una vite con testa esagonale usando un tornio e lo 0,7 punta mm. </li><li> Inserire la vite di monitoraggio nel foro ruotandolo in circa 1,5 giri (usare la quantità minima didiventa necessario a garantire la vite nel cranio in modo da non danneggiare il tessuto sottostante). (Figura 2-C e Figura 4). </li><li> Burr un secondo foro per una vite di ancoraggio nell&#39;osso parietale sinistro, 2 mm e 2 mm laterale posteriore da Bregma. Questo foro non richiede la penetrazione completa del cranio, in modo che il mm 1 punta bava viene usato per fluidificare il cranio per l&#39;inserimento della vite. </li><li> Inserire un x 2 4 a testa esagonale da mm vite nel secondo foro. Questa vite aiuta ad ancorare il cemento dentale e quindi la vite di monitoraggio al cranio. </li><li> Utilizzare una pipetta di trasferimento per mescolare e applicare monomero e polimero cemento dentale alla base della testa delle viti. </li><li> Lasciare cemento dentale ad asciugare per almeno 10 minuti. </li></ol> 3. Inserimento del trasduttore di pressione intracranica <ol><li> Utilizzo di liquido bianco correzione, segnare la fibra ottica sensore 4 mm dalla punta. </li><li> Riempire il foro della vite di monitoraggio con soluzione salina sterile (0,9%) e non garantisconobolle d&#39;aria sono presenti all&#39;interno della vite. </li><li> Inserire la ICP sonda 4 mm nella vite in modo che la punta della sonda è a livello con l&#39;estremità della vite. Assicurarsi che la punta non perforare la dura. </li><li> Regolare la punta della sonda all&#39;interno della vite fino a una traccia ICP riflettente ventilazione e sangue onde a impulsi di pressione può essere osservato. (Figura 5). </li></ol> 4. Formare una chiusura ermetica <ol><li> Una chiusura ermetica è indispensabile per una lettura accurata ICP. Mescolare un viscoso monomero biocompatibile materiale di sigillatura e polimero nel rapporto di 1:1. Poiché il sensore di pressione è sulla punta della sonda, e questo è all&#39;interno della vite coppellate, l&#39;applicazione di materiale di sigillatura all&#39;albero della fibra ottica sonda ha alcun effetto sulla sensibilità del sensore di pressione. </li><li> Applicare uno strato sottile della sonda e la testa della vite di monitoraggio. Evitare di spostare la sonda ICP. </li><li> Lasciare riposare per 5 minuti. </li><li> Applicare un laico secondoer del materiale di sigillatura attorno alla vite di monitoraggio intera e sonda. Assicurarsi che non vi siano perdite di liquido da eventuali crepacci nel materiale di coibentazione. (Figura 2-D). </li><li> Rimuovere le orecchie-bar. </li><li> Il ratto può rimanere in posizione prona, o essere attentamente ruotato nella posizione supina durante il monitoraggio ICP. </li><li> Uno schema della procedura completata è rappresentato in (Figura 6). </li></ol> 5. Trasduttore di pressione intracranica rimozione e il reinserimento <ol><li> Al completamento monitoraggio ICP, il sensore ICP può essere rimosso tirando delicatamente il catetere dal materiale vite e sigillatura. </li><li> Il sensore di SAMBA deve essere immediatamente posto in 1% TERG-A-Zyme soluzione per prevenire la corrosione della punta. </li><li> Il foro rimanente nel materiale di sigillatura deve essere coperto con uno strato aggiuntivo di materiale di sigillatura. (Rat può essere svegliato in questa fase). </li><li> Per reinserire il catetere SAMBA per il monitoraggio aggiuntivo, affettareil materiale di sigillatura a livello della testa della vite. </li><li> Ripetere i passaggi 3.2 - 5.3. </li></ol> 6. Risultati rappresentativi Figura 5 è una rappresentazione di letture ICP oltre dieci secondi. Al basale, l&#39;ICP medio in un ratto Wistar è di 6 mmHg. Gli eventi di più breve periodicità illustrato nella figura 5 riflettere onde a impulso di pressione del sangue. Gli eventi di più lunga periodicità visualizzare gli eventi di ventilazione. Si noti che il sensore SAMBA riflette una ampiezza di ventilazione mmHg 3-4 e ampiezza dell&#39;impulso di 1-2 mmHg. Per convalidare la posizione del sensore SAMBA in ciascun esperimento, le tracce ICP devono essere testati per la reattività di compressioni addominali ed eventi respiratorie, come i periodi di apnea. Una compressione addominale è illustrato in Figura 7. Periodi di apnea (illustrata nella figura 8) si osservano in più esperimenti Invo<html> lving respiro spontaneo animali. Questi eventi sono identificati sulle registrazioni fisiologiche, l&#39;assenza di deviazioni su respiratorie delle vie respiratorie (trasduttore diaframma) e tracce di pressione arteriosa. Un&#39;alterazione equivalente nella traccia ICP convalida il posizionamento della sonda ICP. Figura 9 illustra una tipica traccia ICP dopo la rimozione delle barre auricolari (passo 4.6). L&#39;inserimento delle barre di auricolari in fase 1.2 risultati in una leggera compressione del cranio e la conseguente interruzione del volume intracranico e quindi un aumento della ICP. Se il sensore è posizionato correttamente, ICP scenderà almeno 4-5 mmHg con la rimozione delle barre dell&#39;orecchio. L&#39;analisi istologica può essere utilizzato per verificare eventuali danni alla zona corticale immediatamente sotto il sensore di pressione e la vite. Un esempio di inserimento della vite traumatico e non-traumatica è illustrato in Figura 4. _upload/3689/3689fig1.jpg &quot;/&gt; Figura 1. Fluid Filled Vs SAMBA Tracce ICP. ICP è stato registrato contemporaneamente tramite la fibra ottica catetere SAMBA (in alto) e un catetere pieno di liquido (in basso). I valori medi PIC erano simili in entrambe le tracce, ma il segnale catetere riempito di fluido è stato notevolmente smorzato rispetto al respiratorie chiaro e pressione arteriosa forme d&#39;onda visto con la fibra ottica catetere. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig2.jpg" /> Figura 2. Intracranica catetere Procedure pressione di inserimento. La testa del topo è stato fissato ad un telaio stereotassico con orecchio-bar e un cono il naso anestetico [A]. Un foro, di circa 2 mm di diametro, è stato perforato nella parietale destro [B]. A x 2 4 vite mm con un foro di 0,7 mm è stato inserito l&#39;albero [C]. Una vite di fissaggio è stato inserito nell&#39;osso parietale sinistro e il cranio e sito chirurgico rivestito in cemento dentale. La ICP catheter (freccia nera) è stato quindi inserito nel foro a vite e una chiusura ermetica realizzato con il materiale di sigillatura (freccia bianca) [D]. Staple (per scala) = 12 mm x 5 mm. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig3.jpg" /> Figura 3. Monitoraggio vite Burr Hole Orientamento. Il cranio è stato scagionato da tessuto connettivo per individuare Lambda (asterisco nero) e Bregma (asterisco bianco) e il foro 2 millimetri laterali e 2 mm posteriormente dal bregma. Il foro è stata liberata dai detriti lasciando la durata e le navi piale (freccia nera) intatti. Staple (per scala) = 12 mm x 5 mm. <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig4.jpg" /> Figura 4. Istologia di cervello di ratto 24 ore dopo Strumentazione di vite monitoraggio della pressione intracranica. Haemotoxylin e colorazione eosina, 6 micron sezioni coronali. A sinistra: non traumatico inserimento della vite. A destra: inserimento della vite traumatica,area di pallore raffigura tessuto danneggiato con simile morfologia cellulare per ictus zona danneggiata (freccia). Inserti a obiettivo 4x. <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig5.jpg" /> Figura 5. Tipici ICP traccia. Onde di pressione di impulsi sono rappresentati da eventi di minore ampiezza (*). La ventilazione è riflessa da eventi di più periodicità (#). <img alt="Figura 6" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig6.jpg" /> Figura 6. ICP di inserimento della sonda schematica. Diagramma illustra il posizionamento della vite di supporto (a destra) e coibentazione materiale rivestito ICP sonda nella vite (a sinistra). <img alt="Figura 7" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig7.jpg" /> Figura 7. Compressione addominale. L&#39;addome è stato temporaneamente compresso (~ 1 sec) per convalidare la fattibilità del segnale ICP. La compressione risulta in riduzione ritorno venoso cerebrale,l&#39;aumento del volume cerebrale e aumentando così la ICP. La pressione arteriosa (Pa) è sceso solo dopo l&#39;ascesa iniziale ICP. <img alt="Figura 8" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig8.jpg" /> Figura 8. Periodo di Apnea. La temporanea cessazione della respirazione si riflette nella traccia trasduttore a membrana, la pressione arteriosa (Pa) traccia e la traccia ICP. <img alt="Figura 9" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig9.jpg" /> Figura 9. Ear-Bar rimozione. ICP dovrebbe cadere con la rimozione dei stereotassiche telaio ear-bar.

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<li>Leonardi, A. D., Bir, C. A., Ritzel, D. V., VandeVord, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracranial+pressure+increases+during+exposure+to+a+shock+wave%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Intracranial pressure increases during exposure to a shock wave.</a> J. Neurotrauma. 28, 85-94 (2011).</li>
</ol>

Non abbiamo nulla da rivelare.

La procedura qui presentata consente una registrazione molto sensibile e preciso della pressione intracranica. Questa tecnica minimamente invasiva evita traumi significativi cervello posizionando il sensore di pressione nello spazio epidurale e non il tessuto cerebrale o ventricoli. I passaggi critici sono: 1) di perforazione attraverso il cranio - bisogna fare attenzione a non forare la durata o danno sotteso tessuto cerebrale, 2) garantire una tenuta perfetta con il materiale di sigillatur...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reattivo </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Comments </td></tr><tr><td> Cemento Monomer Dental </td><td> Henry Schein </td><td> VX-SC500MLL </td><td></td></tr><tr><td> Dental cemento polimerico </td><td> Henry Schein </td><td> VX-SC1000GCL4 </td><td></td></tr><tr><td> Drill Dental Burr-taglia 12 </td><td> Gunz Dental </td><td> EL104S001012/10 </td><td></td></tr><tr><td> Drill Dental Burr-size 6 </td><td> Gunz Dental </td><td> EL104S001006/10 </td><td></td></tr><tr><td> In metallo a vite </td><td> Ferramenta </td><td></td><td> 2 x 4 mm, testa esagonale. (Laboratorio modificato da 0,7 mm forata foro passante) </td></tr><tr><td> SAMBA Control Unit </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 50433102 </td><td></td></tr><tr><td> SAMBA Sensor </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 50461122 </td><td> 420 LP, 15cm in fibra nuda, radio-opaco rivestimento </td></tr><tr><td> Silagum AV Mono materiale di sigillatura </td><td> Gunz Dental </td><td> RG 9152 </td><td> Vinylpolysiloxanes, polisilossani idrogeno, filler, pigmenti, additivi, catalizzatori plantinum </td></tr><tr><td> TERG-A-Zyme </td><td> Alconox, Inc. </td><td> 1304 </td><td> Enzyme-active detersivo in polvere </td></tr></tbody></table>

epidurale misurazione della pressione intracranica in ratto utilizzando una fibra ottica trasduttore di pressione

Epidural Intracranial Pressure Measurement in Rats Using a Fiber-optic Pressure Transducer

L&#39;elevata pressione intracranica (ICP) è un problema significativo in diverse forme di danno cerebrale ischemico tra cui ictus, trauma cranico e arresto cardiaco. Questo aumento può causare un ulteriore danno neurologico, in forma di ernia transtentoriale 1,2,3,4, compressione mesencefalo, deficit neurologici o infarto cerebrale è aumentato 2,4. Le attuali terapie sono spesso inadeguati per controllare elevata ICP in ambito clinico 5,6,7. Quindi vi è la necessità di metodi accurati di misura ICP in modelli animali per migliorare la nostra comprensione dei meccanismi di base e di sviluppare nuovi trattamenti per elevata ICP. In entrambi i casi l&#39;impostazione clinica e sperimentale ICP non può essere definita senza misurazione diretta. Diversi metodi di inserimento del catetere ICP esistono attualmente. Di questi il catetere intraventricolare è diventata la clinica &#39;gold standard&#39; di misura ICP negli esseri umani 8. Questo metodo involves l&#39;asportazione parziale del cranio e la strumentazione del catetere attraverso il tessuto cerebrale. Di conseguenza, cateteri intraventricolari hanno un tasso di infezione del 6-11% 9. Per questo motivo, cannulazioni subdurali ed epidurale sono diventati i metodi preferiti in modelli animali di danno ischemico. Diverse tecniche di misurazione ICP sono stati adattati per i modelli animali, e di questi, piene di liquido cateteri di telemetria 10 e cateteri a stato solido sono le più frequentemente utilizzate 11,12,13,14,15. Le piene di liquido sistemi sono inclini a sviluppare bolle d&#39;aria nella linea, con conseguente falsi letture ICP. Sonde a stato solido evitare questo problema (Figura 1). Un ulteriore problema è cateteri di montaggio sotto il cranio o nei ventricoli senza causare alcun danno cerebrale che potrebbero alterare i risultati sperimentali. Pertanto, abbiamo sviluppato un metodo che inserisce un catetere ICP contiguo con lo spazio epidurale, ma evita il NEed inserirlo tra cranio e cervello. Una fibra ottica catetere di pressione (420LP, sensori SAMBA, Svezia) è stato usato per misurare ICP nella posizione epidurale perché la posizione del sensore di pressione (sulla punta del catetere) è stato trovato per produrre un segnale ad alta fedeltà ICP in questo modello . Ci sono altri produttori di simili tecnologie a fibre ottiche 13 che possono essere utilizzati con la metodologia. Alternative cateteri stato solido, che hanno il sensore di pressione collocato sul lato della punta del catetere, non sarebbe appropriato per questo modello come il segnale sarebbe smorzata dalla presenza della vite di monitoraggio. Qui vi presentiamo un metodo relativamente semplice ed accurato per misurare la ICP. Questo metodo può essere utilizzato in una vasta gamma di modelli animali ICP correlati.

Una nuova tecnica per registrare le pressioni all&#39;interno del cranio è descritto. Il metodo minimamente invasivo utilizza una fibra ottica sistema di rilevamento della pressione per misurare accuratamente la pressione endocranica (ICP) in ratti anestetizzati senza causare traumi significativi cervello. La tecnica può essere utilizzata in un&#39;ampia gamma di modelli sperimentali.

Epidurale Misurazione della pressione intracranica in ratto utilizzando una fibra ottica trasduttore di pressione

L'elevata pressione intracranica (ICP) rappresenta un problema significativo in diverse forme di lesione cerebrale ischemica, tra cui l'ictus, il trauma cranico e...

L'obiettivo generale di questa procedura è misurare in modo semplice e accurato la pressione intracranica in un modello animale, in questo caso il ratto. Ciò viene ottenuto praticando innanzitutto due piccoli fori nel cranio.Successivamente, una vite di monitoraggio della PIC e una vite di ancoraggio vengono inserite nel cranio e fissate con cemento. Dopo l'inserimento delle viti, un trasduttore di pressione a fibra ottica viene inserito nella vite di monitoraggio per la misurazione della PIC nello spazio epidurale. Nell'ultima fase, viene creato un sigillo ermetico intorno al trasduttore di pressione nella vite di monitoraggio, al fine di sigillare la volta cranica. Alla fine, si possono ottenere risultati che mostrano un tracciato fisiologico della pressione intracranica mediante l'uso di un trasduttore di pressione a fibra ottica epidurale.La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale poiché le fasi chiave sono difficili da apprendere, dato che il cervello potrebbe essere facilmente danneggiato durante la procedura, alterando i risultati sperimentali. Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come le misurazioni invasive della pressione intracranica (ICP) intraventricolari o intraparenchimali, è che la nostra tecnica di misurazione epidurale della ICP previene il danno cerebrale mantenendo integre le meningi. Dopo aver confermato l’anestesia totale mediante una pinzatura plantare, posizionare il ratto in posizione prona su una piastra riscaldante e inserire il muso del ratto in un cono anestetico nasale, rasare il cuoio capelluto, quindi lavare e disinfettare con clorhexidina, infiltrare la cute nel sito dell’incisione con un anestetico locale a lunga durata, mantenendo l’anestesia. Fissare la testa in un telaio stereotassico e inserire le barre auricolari fino a quando la testa non è stabilizzata. Assicurarsi che la respirazione non sia compromessa. Una volta posizionato l'animale, praticare un'incisione cutanea mediana sulla testa lunga 1,5 centimetri.Successivamente, dissezionare in modo tronco il tessuto molle e i muscoli circostanti per localizzare chiaramente lambda e bgma. Ritrarre la pelle e il tessuto connettivo e arrestare eventuali sanguinamenti applicando pressione al cranio esposto mediante garze sterili. Utilizzando un trapano dentale con una fresa da un millimetro, praticare un foro largo due millimetri nell’osso parietale destro per studi sull’ictus.Praticare un foro, due millimetri in senso laterale e due millimetri in senso posteriore rispetto al bregma, per evitare il seno sagittale superiore e garantire che il sensore della pressione intracranica (ICP) venga posizionato sulla regione ischemica; allargare il foro fino a una profondità tale per cui il cranio al di sopra della dura diventi traslucido. Successivamente, utilizzare una fresa con punta da 0,5 millimetri per rimuovere il cranio alla base del foro quando il cranio inizia a incrinarsi. Utilizzare pinze a 45 gradi per rimuovere completamente i frammenti ossei residui, assicurandosi che la base del foro sia libera da detriti.Per realizzare la vite di monitoraggio, praticare un foro di 0,7 millimetri attraverso una vite con testa esagonale utilizzando un tornio e una punta da 0,7 millimetri; inserire quindi la vite di monitoraggio nel foro ruotandola di circa 1,5 giri, avendo cura di non danneggiare i tessuti sottostanti. Utilizzare una punta da 1 millimetro per eseguire un secondo foro destinato a una vite di ancoraggio nell'osso parietale sinistro, posizionato a 2 millimetri in senso laterale e 2 millimetri in senso posteriore rispetto al bregma, senza perforare completamente il cranio.Inserire una vite con testa esagonale di due per quattro millimetri nel secondo foro. Questa vite aiuta ad ancorare il cemento dentale e la vite di monitoraggio al cranio. Utilizzare una pipetta trasferibile per mescolare e quindi applicare il cemento dentale, monomero e polimero alla base della testa delle viti, lasciando asciugare il cemento per almeno 10 minuti. Con del correttore bianco, segnare il sensore ottico a quattro millimetri dalla punta, riempire il foro della vite di monitoraggio con soluzione salina sterile ed assicurarsi che non siano presenti bolle d'aria all'interno della vite.Inserire la sonda per la pressione intracranica o ICP di quattro millimetri nella vite in modo che la punta della sonda sia allineata con l'estremità della vite. Accertarsi che la punta non perfori la dura madre. Regolare la punta della sonda all'interno della vite finché non si osserva un tracciato della ICP che rifletta le onde di ventilazione e del polso pressorio.Una sigillatura ermetica è fondamentale per ottenere una lettura accurata della PIC: per crearla, preparare innanzitutto una miscela in rapporto uno a uno del monomero e del polimero del materiale sigillante biocompatibile e viscoso, quindi applicare uno strato sottile di sigillante attorno alla sonda e alla testa della vite di monitoraggio, avendo cura di non spostare la sonda della PIC. Dopo aver lasciato indurire il primo strato per cinque minuti, applicare un secondo strato di materiale sigillante attorno all'intera vite di monitoraggio e alla sonda.Assicurarsi che non ci sia fuoriuscita di liquido da alcuna fessura nel materiale sigillante. Rimuovere le barre auricolari e lasciare il ratto in posizione prona. Al termine del monitoraggio della PIC, il sensore della PIC può essere rimosso estraendo delicatamente il catetere dalla vite e dal materiale sigillante; inserire immediatamente il sensore a fibra ottica in una soluzione al 1% di zyme per prevenire la corrosione della punta.Il foro rimanente nel materiale sigillante deve essere ricoperto con un ulteriore strato di materiale sigillante, come mostrato. Di seguito è riportata una rappresentazione delle letture della PIC su un intervallo di 10 secondi nel valore basale. La PIC media in un ratto Wistar è di sei millimetri di mercurio.Gli eventi di minore ampiezza riflettono le onde del polso della pressione arteriosa, mentre gli eventi di maggiore periodicità mostrano gli eventi ventilatori per verificare la posizione del sensore a fibra ottica. In ogni esperimento, i tracciati della PIC devono essere testati per verificarne la risposta alle compressioni addominali. In questo caso, l'addome è stato temporaneamente compresso, determinando una riduzione del ritorno venoso cerebrale e un conseguente aumento del volume intracranico, e quindi un aumento della PIC; la pressione arteriosa è diminuita solo dopo l'aumento iniziale della PIC. Periodi di apnea sono osservati nella maggior parte degli esperimenti che coinvolgono animali che respirano spontaneamente.Questi eventi sono identificati sui tracciati fisiologici mostrati qui dall'assenza di deflessioni respiratorie sui tracciati respiratori e della pressione arteriosa. Una modifica equivalente nel tracciato della PIC conferma la corretta posizione della sonda per la PIC in questo punto. Viene mostrato un tipico tracciato della PIC dopo la rimozione dei supporti auricolari; l'inserimento iniziale dei supporti auricolari provoca una leggera compressione del cranio e conseguente alterazione del volume intracranico, con conseguente aumento della PIC.Se il sensore è posizionato correttamente, la pressione intracranica diminuirà di almeno quattro-cinque millimetri di mercurio con la rimozione delle barre auricolari, una volta padroneggiata la tecnica. Questa procedura può essere eseguita in circa 30 minuti se effettuata correttamente. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come misurare correttamente e con precisione la pressione intracranica mediante una tecnica minimamente invasiva.La parte più difficile di questa tecnica riguarda l'inserimento delle viti in questa sede. È necessario fare attenzione durante la perforazione del cranio per evitare danni alle meningi e al cervello sottostanti.

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