12 dicembre 2011
Qui mostriamo il nuovo • I kit per la crioconservazione degli spermatozoi Cryo mouse. Stadio di due cellule sviluppo dell'embrione con decongelati sperma era migliorato costantemente in 5 ceppi di topi con l'utilizzo di questo kit. Nel corso di un periodo di 1,5 anni, 49 linee di topi geneticamente modificati sono stati archiviati dalla crioconservazione degli spermatozoi con la Cryo • I kit e poi recuperato con successo da fecondazione in vitro.
L'obiettivo generale di questa procedura è la criopreservazione dello sperma di topo. Questo viene ottenuto raccogliendo innanzitutto lo sperma dagli EPI di topo utilizzando cannule per criopreservazione. Le cannule vengono quindi congelate in azoto liquido, dove vengono conservate fino al loro recupero mediante scongelamento in acqua calda.
Gli spermatozoi di topo recuperati vengono infine utilizzati per la fecondazione in vitro. Il principale vantaggio di questo kit rispetto ai metodi esistenti è che contiene tutti i materiali necessari per la criopreservazione e il recupero degli spermatozoi di topo. In generale, le persone nuove a questo metodo potrebbero avere difficoltà nel manipolare e caricare le cannule. Iniziare assemblando 15 cannule per la criopreservazione dello sperma per ogni linea di topi da sottoporre a criopreservazione.
Per prima cosa, collegare ciascuna cannuccia da 0,25 millilitri a una siringa da un millilitro, con il tappo di cotone posizionato più vicino alla siringa. In secondo luogo, aspirare otto centimetri di mezzo di FIV in ciascuna cannuccia, seguiti da un centimetro di aria. In terzo luogo, etichettare ciascuna delle 15 cannucce con il nome della linea da preservare per ogni linea da criopreservare.
Riempire una pozzetta di una piastra a quattro pozzette con 240 microlitri di agente crioprotettivo. Applicare una pipetta da un millilitro all'impugnatura del contenitore per il congelamento per allungarla. Infine, riempire la scatola isolante in schiuma fornita nel kit con 15 centimetri di azoto liquido e chiudere il coperchio.
Due topi maschi adulti fertili. Per ogni linea da criopreservare, rimuovere chirurgicamente gli EPIDIDIMI codali. Posizionare il topo in posizione dorsale e aprire la parete ventrale del corpo.
Tirare delicatamente sul deferente e rimuovere ogni eccesso di grasso. Successivamente, individuare l'epididimo e rimuoverlo intero insieme a un piccolo pezzo di deferente. Posizionare gli EPI in una pozzetta della piastra da quattro pozzette preparata, contenente CPA, sotto un microscopio stereoscopico.
Eseguire da cinque a sette incisioni longitudinali in ciascun epididimo. Quindi, utilizzando una pinzetta, comprimere delicatamente ciascuna differenza rapida. Per espellere gli spermatozoi, incubare la miscela di CPA ed epididimo a temperatura ambiente per tre-cinque minuti.
Agitare delicatamente la piastra a mano due o tre volte durante l'incubazione. Questo permetterà agli spermatozoi di uscire per aspirazione. Caricare ogni cannuccia preparata con cinque millimetri di sospensione spermatica, seguiti da un centimetro di aria.
È importante che tutti i capillari vengano caricati in modo uniforme durante il processo di congelamento. Dopo aver caricato tutti e 15 i capillari, sigillare attentamente entrambe le estremità di ciascun capillare a caldo. Per garantire la sopravvivenza degli spermatozoi, completare l'intero procedimento per tutti e 15 i capillari entro 10 minuti.
Dopo aver preparato tutte le cannuccia, inserirle nella colonna del contenitore per il congelamento dello sperma. Inserire prima il contenitore nella scatola di polistirolo e lasciarlo galleggiare verticalmente nell'azoto liquido. Il contenitore deve galleggiare verticalmente per 10 minuti, altrimenti la velocità di congelamento dello sperma verrà compromessa.
Quindi immergere il contenitore nell'azoto liquido. Gli spermatozoi vengono così criopreservati e sono pronti per essere conservati a lungo termine in azoto liquido. Circa 60 ore prima di un recupero programmato degli spermatozoi.
Seguire il protocollo scritto per superovulare le femmine prima della FIV. Per ogni cannuccia da scongelare, preparare e pre-equilibrare tutti i mezzi per almeno un'ora a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica. Questi materiali includono una piastra di Petri da 35 millimetri con una goccia da 90 microlitri di mezzo per il trattamento degli spermatozoi ricoperta di olio.
Una piastra di Petri da 35 millimetri con tre millilitri di mezzo IVF da utilizzare come piastra di taglio e, per ogni cinque femmine superovulate, preparare una piastra IVF, costituita da un pozzetto di una piastra a quattro pozzetti riempito con 500 microlitri di mezzo IVF. Per ogni piastra IVF, preparare una piastra di lavaggio, ovvero una piastra di Petri da 35 millimetri contenente tre millilitri di KSOM, e una piastra per la coltura degli embrioni, ovvero una piastra di Petri da 35 millimetri con gocce da 50 microlitri di mezzo KSOM ricoperte di olio. Dopo aver preparato rapidamente tutti i materiali necessari, rimuovere una cannuccia dallo stoccaggio e immergerla in un bagno d'acqua a 37 gradi Celsius per due o tre minuti.
Asciugare la cannuccia. Quindi effettuare un taglio obliquo nella colonna d'aria al di sotto del tappo di cotone. All'altra estremità della cannuccia, eseguire un altro taglio obliquo sopra un'altra colonna d'aria.
Evitare di tagliare la colonna di spermatozoi. Aspirare ora la sospensione di spermatozoi dall'estremità della cannuccia, utilizzando una pipetta da 200 microlitri, e depositarla al centro del mezzo di trattamento per spermatozoi. Quindi incubare la piastra per 45-60 minuti.
Durante l'incubazione degli spermatozoi, isolare le ucs delle femmine superovulate e trasferirle nella piastra per dissezione. Utilizzare un ago da 30 gauge o pinzette per lacerare ciascuna ovidotto e rilasciare i complessi cumulus-cita. Trasferire i CC da cinque femmine in ciascuna fecondazione in vitro.
Beh, con una quantità minima di mezzo. Evitare il trasferimento di grasso e sangue, poiché un mezzo sporco inibisce l'efficienza della fecondazione. Dopo l'incubazione, raccogliere da 10 a 15 microlitri della sospensione spermatica dalla periferia della goccia STM e depositare la sospensione in un'unità IVF.
Ora coltivare le cellule in co-coltura per quattro-sei ore per consentire la fecondazione. Dopo la fecondazione, trasferire gli embrioni attraverso almeno due lavaggi con SOM 2K nella capsula di lavaggio. Successivamente, procedere con la coltura.
Gli embrioni in KSOM fino a quando non viene raggiunto lo stadio di sviluppo desiderato. Gli spermatozoi di cinque ceppi murini consanguinei Charles River sono stati congelati. I rapporti di protezione della motilità spermatica e della motilità progressiva rapida sono variati dall'81% al 47% tra i cinque ceppi provenienti da quegli spermatozoi.
I tassi di FIV con spermatozoi scongelati congelati variavano in diverse linee da 26 a 88% nel corso di un anno e mezzo. Un totale di 49 linee di topi OGM sono state archiviate mediante criopreservazione dello sperma e successivamente recuperate mediante FIV in quattro diverse linee di femmine. C 57 black six BC DBA uno e 1 29 SV Una volta acquisita la tecnica di criopreservazione dello sperma, può essere eseguita in 30 minuti se effettuata correttamente.
Per questa procedura, è importante far fluire il campione nel contenitore in modo verticale e in azoto liquido.
Questo studio presenta il kit I•Cryo per la criopreservazione efficace dello sperma di topo, dimostrando un miglioramento dello sviluppo embrionale in diverse linee di topi. Il kit facilita l'archiviazione di linee di topi geneticamente modificate mediante criopreservazione dello sperma e successivo recupero tramite fecondazione in vitro (IVF).
La criopreservazione dello sperma di topo rappresenta una soluzione economica e scalabile per l'archiviazione di ceppi geneticamente modificati, riducendo la dipendenza da colonie di animali vivi e attenuando il rischio di perdita di linee. Il kit I•Cryo migliora la previsione del successo nella conservazione delle linee grazie a un aumento della mobilità spermatica post-scongelamento e allo sviluppo embrionale derivato da FIV in diversi ceppi inbred. Ciò consente una gestione strategica del portafoglio nella ricerca preclinica, permettendo lo stoccaggio a lungo termine e il recupero su richiesta di modelli di malattia di valore.
Il metodo si integra nel flusso di lavoro di scoperta, dalla generazione iniziale del modello fino alla validazione preclinica, fungendo da ponte tra ingegneria genetica e fenotipizzazione funzionale mediante fecondazione in vitro.