Name: Nanotopology delladesione cellulare su angolo di inclinazione variabile Microscopia Total Internal Reflection Fluorescence (VA-TIRFM) (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-02T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 14 s
Description: Impara a misurare la nanotopologia dell'adesione cellulare con microscopia a fluorescenza TIRFM ad angolo variabile. Questo metodo consente di analizzare le differenze di adesione tra linee cellulari con precisione nanometrica.

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Gli autori ringraziano il Land Baden-Württemberg e l&#39;Unione-Europäischer Europäische Fonds für die Entwicklung regionale - per il finanziamento ZAFH PHOTON-n, il Bundesministerium für Bildung und Forschung (BMBF) per assegno di ricerca finanziamento n. 1792C08 così come il Baden-Württemberg-Stiftung GmbH per il finanziamento del progetto &quot;Aurami&quot;.

1. Semina ed incubazione di cellule <ol><li> Seme singole cellule, per es U373-MG o U-251-MG cellule di glioblastoma ad una densità tipica di 100 cellule / mm 2 su un vetrino e farle crescere per 4872 ore in terreno di coltura (per es RPMI 1640 integrato con 10% siero di vitello fetale e antibiotici) utilizzando un incubatore a 37 ° C e 5% di CO 2. </li><li> Incubare le cellule con un marcatore di membrana, per esempio 6-dodecanoile dimetilammino-2-naftalene (laurdan) applicata per 60 minuti ad una concentrazione di 8 mM (in mezzo di coltura) 4, o un marcatore citoplasma, ad esempio calceina acetomethlyester applicato per 40 min a concentrazione di 5 pM 3, o una membrana associata fotosensibilizzatore, ad esempio protoporfirina IX indotta upon 4 ore di incubazione con il suo precursore acido 5-aminolevulinico (5-ALA; 1 mM) 4,5. </li><li> Lavare le cellule con mezzo di coltura o tampone fosfato salino (PBS) prima di microscopia a fluorescenza. &lt;/ Li&gt; </ol> 2. VA-TIRFM <ol><li> Utilizzare un microscopio verticale, ad esempio Zeiss Axioplan, e sostituire il suo condensatore da un dispositivo di illuminazione, come descritto in rif. 3 con una emisferica o semicilindrica prisma di vetro accoppiato otticamente alla slitta oggetto (vedi Figura 1). </li><li> Utilizzano un fascio laser collimato parallelo che dopo l&#39;imaging dal prisma di vetro e altri componenti ottici (ad es specchio concavo) risultati anche in un fascio parallelo sulla superficie del campione (raggio pupilla telecentrico). Fare attenzione che il vettore campo elettrico è perpendicolare alla polarizzata piano di incidenza. </li><li> Utilizzare uno specchio orientabile situato all&#39;interno del condensatore che è ripreso nel piano campione e illumina il campione con un angolo di incidenza variabile (raggio oggetto). Lo specchio regolabile può essere azionato da un motore passo passo, dove ogni posizione corrisponde un angolo ben definito di incidenza, come determinato dalle misurazioni goniometriche 3 </sup&gt;. </li><li> Calibrare la posizione angolare dello specchio regolabile utilizzando l&#39;angolo critico Θ = 61,3 ° C per un bicchiere di acqua transizione come valore fisso. Θ c possono essere visualizzati al variare della Θ quando un colorante fluorescente (ad esempio, 1 mM flavina mononucleotide, FMN) è disciolto in acqua. La posizione dello specchio con Θ = Θ c è memorizzato nel programma di posizionamento specchio. </li><li> Impostare i parametri della telecamera (retro illuminato Andor Ixon EMCCD, DV887DC, ANDOR Tecnologia, Belfast, Regno Unito 6), tra cui la temperatura, il guadagno, il tempo di registrazione e la velocità di spostamento. </li><li> Utilizzare una lente obiettivo di ingrandimento adeguato e preferenzialmente moderata apertura numerica (per esempio 40 × / 0,75 o 63 × / 0,90 immersione in acqua) e localizzare la slitta oggetto nel microscopio. Usare olio di immersione per assicurarne il contatto con ottica del campione con il prisma di vetro. Registrare immagini di fluorescenza di campioni identici al variare dellaangolo di illuminazione (Θ ≥ Θ Θ c con c corrispondente a 64,5 ° per una cella di vetro interfaccia). Una gamma angolare di 66 ° -74 ° con passi di 0,5 ° o 1 ° è raccomandato. Utilizzare un adeguato passaggio lungo o filtro passa banda per il rilevamento di fluorescenza. </li></ol> 3. Analisi dei dati <ol><li> Leggere le immagini (ad esempio in formato ASCII) registrate a vari angoli Θ, nonché le impostazioni della fotocamera per discriminazione (sfondo), la lunghezza d&#39;onda di eccitazione e gli indici di rifrazione del vetro (n 1 = 1,52) e cellule (n 2 = 1,37) nel programma di valutazione (LabView, nanocellula). Per ogni set di parametri della profondità di penetrazione d (Θ) e la trasmissione fattore T (Θ) sono calcolati automaticamente. </li><li> Selezionare le immagini utilizzate per la valutazione della cellula-substrato distanze Δ secondo l&#39;equazione 5 (marker di membrana) o equazione 4 (marcatore citoplasma), le immagini individuali con disomogeneailluminazione (e rivelatrice, g. strisce) possono essere esclusi. </li><li> Calcola le immagini di cellule-substrato topologia e selezionare un codice di colore appropriato per la visualizzazione. Durante profili di valutazione dei singoli pixel possono essere visualizzati, come illustrato nella Figura 2. Questi profili possono essere utilizzati come indicatore per la qualità della calzata. </li><li> Memorizzare il protocollo di valutazione. </li></ol> 4. Risultati rappresentativi Esperimenti rappresentativi sono eseguite con tecniche di ingegneria genetica cellule di glioblastoma U251-MG gentilmente fornite dal Prof. Jan Mollenhauer, Dipartimento di Oncologia Molecolare, University of South Denmark, Odense. In due subcloni di tali cellule U251 geni oncosoppressori TP53 o PTEN sono sovra-espressi utilizzando un Tet-On sistema inducibile di espressione, in modo tale che queste cellule presentano un potenziale oncogeno ridotta e può essere considerato meno maligna. Altamente maligni U251-MG cellule senza gene soppressore vengono utilizzati come controlli, e U251-Cellule di tipo MG selvatici in carica per un ulteriore confronto. Un diodo laser che emette una serie quasi continua di impulsi picosecondi (LDH400 con conducente PDL 800-B, Picoquant, Berlin, Germany, lunghezza d&#39;onda: 391 nm; impulso di energia: 12 pJ; tasso di ripetizione: 40 MHz) è utilizzato come una sorgente di eccitazione. Nella Figura 3 immagini TIRFM di U251-MG cellule di glioblastoma con un attivato TP53 gene soppressore del tumore e incubate con laurdan (8 uM, 60 min), sono raffigurati per gli angoli di incidenza di 66,0 °, 69,0 ° e 73,0 ° corrispondenti a profondità di penetrazione del campo elettromagnetico evanescente di circa 140 nm, 75 nm e 60 nm, rispettivamente. Con profondità decrescente fluorescenza penetrazione diminuisce di intensità (vedi tabelle) e proviene da altri siti superficiali delle cellule (ad esempio contatti focali sui bordi). Cell-substrato distanze (visualizzato in 3d figura da un codice colore che va 0-600 nm) fortemente variare nel corso del le celle comprese tra illy pochi nanometri (bianco-giallo) e 250-300 nm (rosso scuro), vale a dire i contatti focali e grandi cellule substrato distanze sono nelle immediate vicinanze. Lo stesso vale per U251-MG cellule di glioblastoma con un gene PTEN attivato soppressore (Figura 4d), ​​mentre la cellula-substrato distanze sono piuttosto costanti per U251-MG di controllo e cellule wild type con i valori tipici di 80-100 nm (giallo; Figura 4b ) e 150-200 nm (rosso-arancio; la figura 4a). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/4133/4133fig1.jpg" /> Figura 1. Dispositivo di illuminazione per VA-TIRFM in un microscopio verticale. Uno specchio orientabile comandata da un motore passo permette una risoluzione angolare di ± 0,25 °. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/4133/4133fig2.jpg" /> Figura 2. Profilo di valutazione per un pixel (schematica). Quando ln [I F / T (Θ)] viene tracciata in funzione di 1 / d (Θ), rappresenta la pendenza della cellula-substrato distanza Δ. Tale pendenza è comunemente determinata con una precisione di circa ± 10%. Un valore - derivante dalla illuminazione disomogenea - è stata segnata ed esclusi dalla valutazione. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/4133/4133fig3.jpg" /> Figura 3 immagini TIRFM di U251-MG cellule di glioblastoma con attivata TP53 gene soppressore su incubazione con laurdan (8 uM, 60 min). Registrato a vari angoli di illuminazione (ac); cellula-substrato distanze nell&#39;intervallo 0-600 nm mostrato da un codice colore (d); lunghezza d&#39;onda di eccitazione: 391 nm, la rilevazione: ≥ 420 nm, dimensioni immagine: 210 micron. × 210 micron <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4133/4133fig3large.jpg" target="_blank">Clicca qui per ingrandire la figura</a> . Figura 4 Cell-substrato distanze U251-MG cellule glioblatoma nell&#39;intervallo 0-600 nm indicati da un codice colore,. (A) di tipo selvatico (b) i controlli, (c) cellule con attivata gene soppressore TP53, (d) cellule con attivato PTEN gene soppressore; lunghezza d&#39;onda di eccitazione: 391 nm, la rilevazione: ≥ 420 nm, dimensioni immagine: 210 micron. × 210 micron <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4133/4133fig4large.jpg" target="_blank">Clicca qui per ingrandire la figura</a> .

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</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Un metodo è descritto per cella di misura-substrato distanze con precisione nanometrica. Attualmente, i metodi di super-risoluzione microscopia, ad esempio sulla base di illuminazione strutturata 7 o 8-10 singoli rilevazione molecola nonché deplezione emissione stimolata (STED) microscopia 11 sono di notevole interesse. Nessuna di queste tecniche, tuttavia, consente una risoluzione assiale inferiore a 50 nm. Inoltre, irradianza piuttosto elevato di 50.100 W / cm 2 è n...

Quando un fascio di luce che si propaga attraverso un mezzo di indice di rifrazione n 1 incontra un&#39;interfaccia ad un secondo mezzo di rifrazione n 2 &lt;n 1, riflessione interna totale avviene a tutti gli angoli di incidenza Θ, che sono maggiore dell&#39;angolo critico Θ = c arcsin (n 2 / n 1). Nonostante sia totalmente riflesso del fascio di luce incidente evoca un campo evanescente elettromagnetico che penetra nel secondo mezzo e decade esponenzialmente con la distanza z perpendicolare dall&#39;interfaccia secondo I (z) = I 0 ez / d (Θ). I (z) corrisponde all&#39;intensità del campo elettromagnetico e d (Θ) alla profondità di penetrazione alla lunghezza d&#39;onda λ, come indicato da d (Θ) = (λ/4π) (n 1 2 sin 2 Θ - n 2 2) -1 / 2 Come riportato in letteratura 1,2, I 0 </sub&gt; corrisponde all&#39;intensità della luce incidente I e moltiplicato per il coefficiente di trasmissione T (Θ) e il rapporto n 2 / n 1. Se il vettore di campo elettrico di questo fascio di luce polarizzata è perpendicolare al piano di incidenza (cioè il piano attraversato dal incidente e il raggio riflesso), questo fattore di trasmissione è data dalla T (Θ) = 4 cos 2 Θ / [1 - (2 n / NL 1) 2] Per l&#39;intensità di fluorescenza rilevata in misurazioni TIRFM, assorbimento di luce deve essere integrati su tutti gli strati del campione e moltiplicato per il rendimento η quantica di fluorescenza del colorante rilevante e con l&#39;angolo solido di rilevamento Ω. Come riportato in precedenza 3, questa intensità può essere descritto da I F (Θ) = AT (Θ) OC (z) e-z / d (Θ) dz se tutti i fattori che sono indipendenti f<html> rom l&#39;angolo di incidenza e Θ coordinata z sono inclusi nella equazione sperimentale A. costante 3 può essere risolto analiticamente, se la concentrazione c (z) di fluorofori è considerato essere quasi costante - O affatto coordinate z ≥ Δ, ad esempio all&#39;interno del citoplasma delle cellule aventi una distanza Δ dall&#39;interfaccia. In questo caso, l&#39;integrale deve essere calcolata da z = Δ per z = ∞ conseguente I F = A c T (Θ) d (Θ) e-Δ / d (Θ) - O tra z = Δ - t / 2 e z = + Δ t / 2, ossia in un sottile strato di spessore t, ad esempio una membrana cellulare a una distanza Δ dall&#39;interfaccia. In questo caso, l&#39;intensità di fluorescenza può essere calcolato come I F = A c T (Θ) te-Δ / d (Θ), se t è piccolo in confronto con Δ. ent &quot;&gt; dalle equazioni (4) e (5) cellula-substrato distanze Δ può essere calcolato, se le immagini di fluorescenza I F sono registrati per angoli variabili Θ, e se ln (I F / T d) (Eq. 4) o ln (I F / T) (Eq. 5) viene valutato come una funzione di 1 / d per questi angoli. Per la membrana marcatore laurdan impiegate in questo documento (vedi sotto), la valutazione è stata eseguita secondo l&#39;Eq. 5. Come riportato in precedenza 3, l&#39;acquisizione delle immagini e la valutazione richiede - Distribuzione omogenea della luce di eccitazione sul campione, - Validità di un 2-strato del modello (con gli indici di rifrazione n 1 e n 2 per il substrato e il citoplasma, rispettivamente). Ciò vale, se la membrana plasmatica è molto sottile, e se il livello del mezzo extracellulare (tra la cella e il substrato) è piccolo rispetto alla lunghezza d&#39;onda della luce incidente. Inoltre, un&#39;apertura numerica moderata(Tipicamente A ≤ 0,90) della lente di obiettivo microscopio è vantaggioso per evitare deviazioni di luminosità dovuta alla anisotropia della radiazione nel campo vicino dell&#39;interfaccia dielettrico.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome </td><td> Azienda </td><td> Tipo </td><td> Commenti </td></tr><tr><td> Incubatrice </td><td> Nunc </td><td> Nunc Cellstar QM1300SVBA </td><td></td></tr><tr><td> A flusso laminare </td><td> Holten sicuro </td><td> S2010 1.2 IT GG 1LN </td><td></td></tr><tr><td> DMEM + 10% FCS + 1% di penicillina / streptomicina </td><td> Biochrom </td><td></td><td> Coltivazione media </td></tr><tr><td> Vetro oggetto diapositive </td><td> Marienfeld </td><td> Pure vetro bianco </td><td> Pulizia Procedura speciale utilizzato </td></tr><tr><td> 6-dodecanoile dimetilammino-2-naftalene (laurdan) </td><td> Molecular Probes </td><td></td><td> Marcatore fluorescente (soluzione stock: 2 mM in etanolo) </td></tr><tr><td> Microscopio </td><td> Carl Zeiss </td><td> Axioplan 1 </td&gt; <td></td></tr><tr><td> Diodo laser </td><td> PicoQuant </td><td> LDH 400 con autista PDL 800-B </td><td> Lunghezza d&#39;onda: 391 nm </td></tr><tr><td> Singola modalità del sistema di fibra </td><td> Punto di Origine </td><td> kineFlex </td><td> Usato con ottiche collimanti </td></tr><tr><td> EMCCD fotocamera </td><td> Andor </td><td> DV887DC </td><td> Fotocamera posteriore illuminato </td></tr></tbody></table>

nanotopology dell&#39;adesione cellulare su angolo di inclinazione variabile microscopia total internal reflection fluorescence (va-tirfm)

Nanotopology of Cell Adhesion upon Variable-Angle Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy (VA-TIRFM)

Topologia superficiale, ad esempio di cellule che crescono su un substrato, è determinata con precisione nanometrica Variable-Angle Microscopy Total Internal Reflection Fluorescence (VA-TIRFM). Cellule sono coltivate su vetrini trasparenti ed incubate con un marcatore fluorescente omogeneamente distribuiti nella loro membrana plasmatica. L&#39;illuminazione avviene mediante un raggio laser parallelo sotto angoli variabili di riflessione interna totale (TIR) ​​con differenti profondità di penetrazione del campo elettromagnetico evanescente. Registrazione di immagini di fluorescenza upon irradiazione a circa 10 diverse angolazioni permette di calcolare cellula-substrato distanze con una precisione di pochi nanometri. Differenze di adesione tra varie linee cellulari, cellule tumorali e cellule es meno maligne, sono così determinato. Inoltre, eventuali modifiche di adesione cellulare su di trattamento chimico o fotodinamica può essere esaminato. In confronto con altri metodi di super-risoluzione microscopia luce di esposizione rimanedanni molto piccola, e non di cellule viventi ci si aspetta.

Topologia di adesione cellulare su un substrato viene misurata con precisione nanometrica variabile-angolo microscopia a fluorescenza di riflessione interna totale (VA-TIRFM).

Nanotopology dell&#39;adesione cellulare su angolo di inclinazione variabile Microscopia Total Internal Reflection Fluorescence (VA-TIRFM)

La topologia superficiale, ad esempio di cellule cresciute su un substrato, viene determinata con precisione nanometrica mediante la fluorescenza a riflessione totale interna ad angolo variabile...

L'obiettivo generale di questa procedura è misurare la topologia dell'adesione cellulare su un substrato con precisione nanometrica. Ciò viene ottenuto coltivando innanzitutto le cellule su vetrini trasparenti e incubandole con un marcatore fluorescente. Successivamente, la posizione angolare dello specchio regolabile del microscopio viene calibrata e la posizione è memorizzata nel programma di posizionamento dello specchio.Il passo successivo consiste nell'acquisire le immagini di fluorescenza irradiando a circa 10 angoli diversi. L'ultima fase prevede il calcolo delle distanze tra la cellula e il substrato con una precisione di pochi nanometri. Infine, i risultati sulla topologia dell'adesione cellulare al substrato vengono utilizzati per evidenziare le differenze di adesione tra diverse linee cellulari, ad esempio cellule tumorali e cellule meno maligne.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti come la microscopia confocale è che la risoluzione effettiva è nell'ordine di pochi nanometri. Sebbene questo metodo possa fornire informazioni sulle membrane cellulari, può essere applicato anche ad altri sistemi, come vescicole piccole o nanomateriali.La dim

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Total Internal Reflection Fluorescence (TIRF) microscopia è un approccio efficace per osservare le strutture in prossimità della superficie cellulare ad elevato contrasto e risoluzione temporale. Abbiamo dimostrato come TIRF può essere utilizzato per studiare dinamica della proteina alla corteccia di cellule di cellule batteriche e fungine parete chiusi.

Visualizzazione di Cortex Organizzazione e Dynamics in microrganismi, utilizzando Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy

Questo video descrive TIRF, una tecnica basata sulla microscopia a riflessione interna totale per visualizzare le dinamiche di polimerizzazione dell'actina e dei microtubuli. Il metodo consente l'imaging ad alta risoluzione delle dinamiche di accoppiamento tra actina e microtubuli in tempo reale, che è essenziale per comprendere i crosstalk cellulari.

Microscopia TIRF per visualizzare la dinamica dell'accoppiamento di actina e microtubuli

Fonte: Daniele, F., et. al Sonde TIRFM e GFP sensibili al pH per valutare la dinamica delle vescicole dei neurotrasmettitori nelle cellule di neuroblastoma SH-SY5Y: imaging cellulare e analisi dei dati. J. Vis. Exp. (2015). Questo video mostra l'imaging di cellule di neuroblastoma umano utilizzando un microscopio a fluorescenza a riflessione interna totale (TIRF) per visualizzare vescicole sinaptiche marcate con fluorofori. Le cellule vengono prima focalizzate in modalità epifluorescenza.

Imaging cellulare mediante microscopia a fluorescenza a riflessione interna totale

Imaging di entrambi, l'isolato della membrana plasmatica e il volume intracellulare circostante, sarà presentato un microscopio avanzato che consentono veloce e ad alta risoluzione. L'integrazione di filatura disco e totale microscopia di fluorescenza di riflessione interna in un'unica configurazione permette esperimenti dal vivo imaging al prezzo di acquisizione alta fino a 3,5 s per serie di immagini.

Visualizzazione di formazione di aderenze in cellule per mezzo di avanzati filatura microscopia di fluorescenza di riflessione interna totale disco

Questo protocollo è una guida per l'implementazione della microscopia a riflessione di interferenza su un microscopio a fluorescenza standard per l'imaging senza etichette, ad alto contrasto e ad alta velocità dei microtubuli utilizzando analisi in vitro.

Implementazione della microscopia di riflessione delle interferenze per l'imaging ad alta velocità e senza etichetta dei microtubuli

Descriviamo un approccio di imaging per la determinazione dello stato oligomerico oligomerico medio degli oligomeri mEGFP-tagged-receptor indotti dal legame del ligando nella membrana plasmatica delle cellule viventi. Il protocollo si basa sulla microscopia TIRF (Total Internal Reflection Fluorescence) combinata con l'analisi di Number and Brightness (N&amp;B).

Dinamica di oligomerizzazione dei recettori delle superfici cellulari nelle cellule viventi mediante microscopia a fluorescenza totale di riflessione interna combinata con l'analisi del numero e della luminosità

Questo protocollo presenta le procedure sperimentali per eseguire il test dell'impronta di adesione per visualizzare gli eventi di adesione durante l'adesione a laminazione rapida delle cellule.

Imaging dell'adesione molecolare nel laminaggio cellulare mediante analisi dell'impronta di adesione

La litografia near-UV e la microscopia a forza di trazione sono combinate per misurare le forze cellulari su idrogel micropatterati. Il rilascio mirato indotto dalla luce di singole cellule consente un numero elevato di misurazioni sullo stesso campione.

Controllo dell'adesione cellulare mediante tecniche di modellazione dell'idrogel per applicazioni nella microscopia a forza di trazione

Presentiamo un protocollo per l'implementazione della microscopia a riflessione di interferenza e della microscopia a riflessione totale interna-fluorescenza per l'imaging simultaneo di microtubuli dinamici e proteine associate a microtubuli marcati fluorescenti.

Microscopia a fluorescenza a riflessione interna simultanea e riflessione interna totale per l'imaging di microtubuli dinamici e proteine associate

Questo protocollo è una guida per la visualizzazione dinamica di actina e microtubuli utilizzando un test di microscopia a fluorescenza interna totale (TIRF) in vitro .

Visualizzazione delle dinamiche di accoppiamento di actina e microtubuli in vitro mediante microscopia a fluorescenza a riflessione interna totale (TIRF)

Impara a misurare la nanotopologia dell'adesione cellulare con microscopia a fluorescenza TIRFM ad angolo variabile. Questo metodo consente di analizzare le differenze di adesione tra linee cellulari con precisione nanometrica.

Nanotopology delladesione cellulare su angolo di inclinazione variabile Microscopia Total Internal Reflection Fluorescence (VA-TIRFM) (Video) | JoVE Journal

Nanotopology dell'adesione cellulare su angolo di inclinazione variabile Microscopia Total Internal Reflection Fluorescence (VA-TIRFM)

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