Name: Lingegneria dei tessuti del colon in un modello murino (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 45 s
Description: Scopri l'ingegneria tissutale intestinale nel topo usando unità di organoidi su scaffold. Questo metodo fornisce una piattaforma affidabile per la rigenerazione tissutale e la modellazione di malattie gastrointestinali.

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Tracy C. Grikscheit, Erik R. Barthel, e Frédéric G. Sala sono supportati dal California Institute for Regenerative Medicine (CIRM), i numeri di concedere RN2-00946-1 (TCG) e TG2-01168 (ERB, FGS). Allison L. Speer è una Società di Chirurgia dell&#39;Università Ethicon studioso. Yashuhiro Torashima è finanziato da un ospedale pediatrico Fellowship Los Angeles Saban Research Career Development Institute.

1. Organoid unità di preparazione <ol><li> Strumenti adeguati per la dissezione del mouse (forbici e pinze) devono essere sterilizzati in autoclave. </li><li> Umanamente eutanasia il mouse donatore secondo protocolli locali IACUC. Assicurarsi che l&#39;animale è morto prima di procedere. </li><li> Fare una incisione mediana per accedere alla cavità peritoneale. Lembi cutanei può essere riflessa come necessario per migliorare l&#39;esposizione. </li><li> Sventrare il piccolo intestino e dividerlo appena distalmente al legamento di Treitz. Separare il piccolo intestino dal suo mesentere con tagliente e dolce smussa. Identificare la giunzione ileocecale e dividere il piccolo intestino 5 millimetri prossimale a questo. </li><li> Con forbici, aprire l&#39;intestino longitudinalmente lungo il confine antimesenterico in una piastra di Petri con 10 ml 4 ° C, soluzione salina tamponata sterile Hanks &#39;(HBSS, Invitrogen, Carlsbad CA) / 1X antibiotico-antimicotico (Anti-Anti, Invitrogen) soluzione. Cancella materia fecale dall&#39;intestino aperto conagitazione poi trasferimento intestino aperto un tubo da centrifuga 15 ml con 10 ml di 4 ° C, sterili HBSS / 1X anti-anti. </li><li> Lavare l&#39;intestino aperto tre volte in 10 ml di 4 ° C, HBSS 1X sterile / anti-anti in una provetta. Ogni lavaggio può essere eseguito con lieve agitazione del tubo 15 ml per 30 sec. Dopo agitazione, il tessuto intestinale scende sul fondo della provetta. Eliminare materiale galleggiante, che è detriti mesenchimale. Rimuovere la soluzione di lavaggio accuratamente con una pipetta. </li><li> Tritare l&#39;intestino lavato in una piastra di Petri con 10 ml di 4 ° C, HBSS 1X sterile / anti-anti a meno di 1 millimetro pezzi quadrati utilizzando un paio di forbici. Raccogliere il materiale tritato con una pipetta automatica e metterla in una provetta. </li><li> Centrifugare la provetta a 500 rpm per 8 min. Eliminare il supernatante, che contiene grassi e mesenchima. </li><li> Digerire il tritato, materiale lavato con 10 ml di HBSS sterili / 1X anti-anti + 0,125 mg / ml dispasi (Invitrogen) e 800 unità / ml collagenasi di tipo 1 (Worthington, Lakewood NJ). Per preparare 40 ml della soluzione di digestione, pesare 5 mg di dispasi, 142 mg di collagenasi, e aggiungere HBSS sterili fino ad un volume di 40 ml. Preparare questa soluzione fresca ogni unità di tempo organoid sono preparati, e mantenere a 4 ° C fino al momento dell&#39;uso. Aggiungere la soluzione digestione direttamente al pellet dal passo 1,8. </li><li> Incubare la provetta contenente il macinato, materiale lavato con la soluzione di digestione a 37 ° C per 20 min. </li><li> Recuperare la provetta e in seguito a distruggere il tessuto digerito da triturazione con una pipetta 10 ml. Ripetere tra 20 fino a 50 volte un aspetto uniforme. </li><li> Centrifugare la provetta per 5 min a 800 rpm. Eliminare il supernatante, che contiene le cellule singole. </li><li> Arrestare la reazione di digestione con 10 ml di 4 ° C, sterile Eagle modificato da Dulbecco (DMEM, Invitrogen) più 10% v / v di calore-siero fetale bovino inattivato (HI-FBS, Invitrogen). Risospendere la pellet e agitare la provetta. </li><li> Centrifugare la provetta per 5 min a 800 rpm. Rimuovere il surnatante con cura con una pipetta automatica fino a quando le ultime gocce. Utilizzare una pipetta di plastica monouso per le ultime gocce per evitare di risospensione del pellet. </li></ol> 2. Caricamento di acido poliglicolico impalcatura <ol><li> Formare 2-mm, 5 mm di diametro scaffold cilindriche esterne di acido poliglicolico non tessuto (2 mm di spessore, 60 mg cm-3 densità apparente, la porosità&gt; 95%, Fibre Concordia, RI Coventry) come descritto nel rif. 4. </li><li> Tagliare il distale 2 mm di una usa e getta 1000 pipetta microlitro punta con le forbici preparati con etanolo al 70% in acqua distillata. </li><li> Posizionare il patibolo in un 4-pozzetti cultura. Caricare le unità organoid sull&#39;impalcatura con la pipetta 1000 microlitri, prima nel lume e quindi sulla superficie esterna. Utilizzare una pinza per garantire rivestimento del lume. Non disturbare o rompere la forma cilindrica del polimero. </li&gt; </ol> 3. L&#39;impianto in mouse Host <ol><li> Utilizzare un mouse singenici host lo stesso sfondo del donatore, se disponibile. In caso contrario, impiegano un diabetico non obesi immunocompromessi / immunodeficienza combinata grave o NOD / SCID animale (Jackson Laboratories, Sacramento CA). </li><li> Indurre l&#39;anestesia generale con isoflurano. Shave, preparazione ed attaccare l&#39;addome del mouse. </li><li> Eseguire un&#39;incisione 5 millimetri linea mediana per guadagnare l&#39;accesso alla cavità peritoneale. Identificare e sviscerare con attenzione l&#39;omento maggiore. Posizionare il polimero caricato sulla omento e avvolgerlo con il tessuto. Non strappare l&#39;omento. </li><li> Fissare il polimero all&#39;omento con una sutura 5-0 monocryl. Delicatamente sostituire il omento con il polimero avvolto nella sua posizione anatomica. </li><li> Chiudere l&#39;incisione addominale a strati con 4-0 punti di sutura Vicryl. Eseguire la chiusura dei muscoli e fare attenzione a non danneggiare i visceri addominali sotto l&#39;incisione. Utilizzare punti staccati per la pelle. </li><li> Somministrare analgesia postoperatoria con 2 mg / kg di ketoprofene (Ketofen, Fort Dodge Animal Health) in acqua sterile come un pomfo sottocutanea adiacente alla incisione. Gli animali devono essere valutati tutti i giorni e se l&#39;animale sta dimostrando segni di dolore o disagio, una dose supplementare di ketoprofene può essere somministrato il giorno post operatorio 2. Il terzo giorno post-operatorio, l&#39;animale deve essere totalmente recuperato senza evidenza di dolore o disagio. Se il dolore o angoscia continua il giorno post operatorio 3, questo è considerato anormale e dovrebbe essere affrontata in conformità con i protocolli di cura IACUC e animale degli impianti. </li><li> Lasciare il mouse per recuperare e il tessuto-ingegnerizzato intestino a crescere per quattro settimane. Dare l&#39;annuncio accesso animale libitum nei roditori chow (Lab Dieta 5001, PMI nutrizione, St. Louis MO) e acqua con Septra 200 mg / 40 mg per 5 ml (Hi-Tech Pharmacal, Amityville NY) alla diluizione 1:100. </li></ol> 4. Raccolto <ol><li> HumaNely eutanasia l&#39;animale ospite quattro settimane dopo l&#39;impianto. </li><li> Riaprire l&#39;incisione originale e riflettere la pelle cranialmente per facilitare l&#39;accesso alla cavità peritoneale. </li><li> Aprite il livello muscolare e di identificare il tessuto ingegnerizzato costrutto come un globo di tessuto. </li><li> Abbattere adesioni al costrutto da intra-addominale con visceri dissezione netta. </li><li> Fissare il costrutto in formalina per paraffina dopo il montaggio, oppure utilizzare il tessuto fresco per saggi biochimici come real-time PCR o isolamento delle proteine. </li></ol>

<ol><li>Grikscheit, T. C., Siddique, A., Ochoa, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+small+intestine+improves+recovery+after+massive+small+bowel+resection%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Surg%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered small intestine improves recovery after massive small bowel resection.</a> Ann. Surg. 240, 748-754 (2004).</li>
<li>Wales, P. W., Christison-Lagay, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short+bowel+syndrome%3A+epidemiology+and+etiology%5BTitle%5D)+AND+%22Sem.+Ped.+Surg%22%5BJournal%5D)">Short bowel syndrome: epidemiology and etiology.</a> Sem. Ped. Surg. 19, 3-9 (2010).</li>
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<li>Kato, T., Tzakis, A. G., Selvaggi, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+and+multivisceral+transplantation+in+children%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Surg%22%5BJournal%5D)">Intestinal and multivisceral transplantation in children.</a> Ann. Surg. 243, 756-766 (2006).</li>
<li>Reyes, J., Bueno, J., Kocoshis, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+status+of+intestinal+transplantation+in+children%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Ped.+Surg%22%5BJournal%5D)">Current status of intestinal transplantation in children.</a> J. Ped. Surg. 33, 243-254 (1998).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Vi presentiamo un protocollo per la produzione di tessuti ingegnerizzati intestino nel topo utilizzando un unità-on-scaffold approccio organoid. Le fasi più critiche sono quelle della preparazione organoid unità. Bisogna fare attenzione a pulire in modo adeguato e meccanicamente elaborare il tessuto, ma la stessa cura deve essere presa per non overdigest o overtriturate le unità organoid dopo la digestione viene eseguita (passo 1.11). Se questo è fatto, le unità organoid può essere ridotto a singole cellule, che possono...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti (opzionale) </td></tr><tr><td> HBSS </td><td> Gibco </td><td> 114170-112 </td><td></td></tr><tr><td> Antibiotico-antimicotica 100X </td><td> Invitrogen </td><td> 15240-062 </td><td></td></tr><tr><td> Dispasi </td><td> Gibco </td><td> 17105-041 </td><td></td></tr><tr><td> Collagenasi tipo 1 </td><td> Worthington </td><td> LS004194 </td><td></td></tr><tr><td> DMEM glucosio Alta 1X </td><td> Gibco </td><td> 11995-065 </td><td></td></tr><tr><td> Di calore FBS inattivato </td><td> Invitrogen </td><td> 16140-071 </td><td></td></tr><tr><td> Biofelt 100% PGA </td><td> Concordia Medical </td><td> FELT01-1005 </td><td> Per la preparazione del polimero, come in rif.4 </td></tr><tr><td> Poli-L-lattico </td><td> Durect </td><td> B6002-1 </td><td> Per la preparazione del polimero, come in rif. 4 </td></tr><tr><td> Collagene di tipo I, coda di topo </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C3867-1VL </td><td> Per la preparazione del polimero, come in rif. 4 </td></tr><tr><td> Ketoprofene 100 mg / ml </td><td> Fort Dodge Animal Health </td><td> 71-cheto-100-50 </td><td></td></tr><tr><td> LabDiet 5001 roditore chow </td><td> LabDiet </td><td> 5001 </td><td></td></tr><tr><td> Septra 200 mg / 40 mg per 5 ml, USP </td><td> Hi-Tech Pharmacal </td><td> 50383-824-16 </td><td></td></tr><tr><td> Isoflurano, USP </td><td> Phoenix Pharmaceuticals </td><td> 57319-507-06 </td><td></td></tr></tbody></table>

l&#39;ingegneria dei tessuti del colon in un modello murino

Tissue Engineering of the Intestine in a Murine Model

Dell&#39;ingegneria tissutale piccolo intestino (TESI) è stato utilizzato con successo per salvare i ratti Lewis dopo massiccia resezione dell&#39;intestino tenue, con conseguente ritorno al peso pre-operatorie entro 40 giorni. 1 negli esseri umani, massiccia resezione del piccolo intestino può causare sindrome da intestino corto, un malassorbimento funzionale stato che conferisce una significativa morbidità, mortalità e costi sanitari tra cui la dipendenza nutrizione parenterale, insufficienza epatica e cirrosi, e la necessità di trapianti di organi multiviscerale. 2 In questo lavoro si descrivono e documentano il nostro protocollo per la creazione di tessuti ingegnerizzati intestino in un modello murino con una unità multicellulare organoid-on-scaffold approccio. Unità Organoid sono aggregati multicellulari derivanti dall&#39;intestino che contengono elementi sia delle mucose e mesenchimali, 3 il rapporto tra che conserva l&#39;intestinale nicchia delle cellule staminali. 4 Nella ricerca in corso e future, la transizione della nostra tecnica nelladel mouse consentirà di indagine dei processi che intervengono durante la formazione TESI utilizzando gli strumenti disponibili transgeniche in questa specie. 5 La disponibilità di ceppi di topi immunocompromessi inoltre ci permette di applicare la tecnica di tessuto intestinale umano e ottimizzare la formazione di TESI umana come xenotrapianto del mouse prima della sua transizione verso gli esseri umani. Il nostro metodo utilizza le buone prassi di fabbricazione (GMP) reagenti e materiali che sono già stati approvati per l&#39;uso in pazienti umani, e offre quindi un vantaggio significativo rispetto agli approcci che si basano su tessuti animali decellularizzato. L&#39;obiettivo finale di questo metodo è la sua traduzione per gli esseri umani come una strategia di medicina rigenerativa terapeutico per la sindrome dell&#39;intestino corto.

La figura 1 mostra uno schema generale per il protocollo qui documentato. Il risultato finale di questo protocollo è una struttura sferica del globo o tissutale intestino murino con un lume, mucosa, sottomucosa, muscolare e circostante. Figura 2A mostra un globo tipico rispetto ad un polimero di partenza patibolo. Figura 2B mostra lo stesso costrutto bruscamente bivalved di rivelare le sue lumen. Figura 3 illustra un ematossilina / eosina-stained paraff...

Questo articolo e il video di accompagnamento presentare il nostro protocollo per la generazione di tessuto ingegnerizzato intestino nel topo, utilizzando un organoid unità-on-scaffold approccio.

L&#39;ingegneria dei tessuti del colon in un modello murino

L'intestino tenue ingegnerizzato in tessuto (TESI) è stato utilizzato con successo per salvare ratti Lewis dopo una massiccia resezione dell'intestino tenue, determinando il ritorno a...

Questo video illustrerà la nostra tecnica per generare un intestino tenue ingegnerizzato a livello tissutale nel topo, utilizzando un approccio basato su unità organoidi su impalcatura. In questo esperimento, gli animali sono stati trattati in conformità con le linee guida del comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali e del Centro per la Cura degli Animali dell'Istituto di Ricerca Savon del Children's Hospital di Los Angeles. Il primo passaggio consiste nel reperimento dell'intestino intero del topo.Il topo eutanasizzato in modo umano e gli strumenti vengono preparati con etanolo al 70% in acqua, e viene effettuata un'incisione mediana per accedere alla cavità peritoneale. L'intestino tenue viene eviscerato e diviso appena al di sotto del legamento di Treitz. Successivamente viene dissezionato con tecnica affilata e ottusa dal mesentere e dai suoi vasi.Infine, l'ileo è stato trasversalizzato a cinque millimetri prossimalmente alla valvola ileocecale. L'intestino tenue prelevato è mostrato in scala. Procediamo quindi ad aprire l'intestino longitudinalmente lungo il margine antimesenterico in una soluzione salina tamponata di Hank contenente antibiotico e antimicotico

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Questo video descrive il protocollo dettagliato per la resezione intestinale in un modello murino. Questa tecnica fornisce informazioni sul malassorbimento, il sovraaccumulo e la tossicità biliare indotti dall'ileectomia nell'intestino del topo.

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Un Decellularization Metodologia per la produzione di un naturale acellulare intestinale Matrix

La tecnologia di imaging migliorata consente l'imaging tridimensionale degli organi durante lo sviluppo. Qui descriviamo un intero sistema di coltura di organi che consente l'imaging dal vivo dei villi in via di sviluppo nell'intestino fetale del topo.

Mouse fetale Whole Intestino Sistema Cultura per Ex Vivo La manipolazione delle vie di segnalazione e tridimensionale Imaging in diretta di Sviluppo del villo

Piccole tecniche di imaging consentono di animali esami diagnostici seriali e interventi terapeutici in vivo. Recentemente, l'ambito di applicazione è notevolmente ampliato e comprende attualmente la valutazione dello sviluppo del tumore del colon, la guarigione delle ferite e il monitoraggio di infiammazione. Questo protocollo illustra le diverse potenziali applicazioni di endoscopia murino.

Murino Endoscopia per In Vivo Guarigione Imaging Multimodale di Cancerogenesi e valutazione della ferita intestinale e infiammazione

Cellule intestinali staminali epiteliali (ISC) sono mescolati con le cellule Paneth. Queste cellule sono differenziate progenie della ISC, che supportano la ISC e fornire protezione antibatterica. Qui mostriamo come abbiamo utilizzato modelli transgenici condizionali mouse per stabilire che le cellule Paneth svolgono un ruolo cruciale nel mantenimento degli epiteli intestinali.

Protocolli per l&#39;analisi del ruolo delle cellule Paneth in Rigenerazione della murino Intestino con condizionale<em&gt; Cre-lox</em&gt; Modelli mouse

Qui si descrive la procedura dettagliata di intestinale ischemia-riperfusione nei topi che causa ferite riproducibili senza la mortalità per favorire la standardizzazione di questa tecnica in tutto il campo. Questo modello di intestinale danno da ischemia-riperfusione può essere utilizzato per studiare i meccanismi cellulari e molecolari di lesioni e di rigenerazione.

Modello murino di ischemia-riperfusione intestinale Injury

La funzione di barriera epiteliale intestinale disregolata e le risposte immunitarie sono segni distintivi della malattia infiammatoria intestinale che rimangono scarsamente studiate a causa della mancanza di modelli fisiologici. Qui descriviamo un modello di loop intestinale del topo che impiega un segmento intestinale ben vascolarizzato ed esteriore per studiare la permeabilità della mucosa e il reclutamento di leucociti in vivo.

Valutazione funzionale della permeabilità intestinale e della migrazione transepiteliale neutrofila nei topi utilizzando un modello standardizzato di loop intestinale

Questo protocollo offre istruzioni dettagliate per stabilire organoidi murini dell'intestino tenue, isolare le cellule linfoidi innate di tipo 1 dalla lamina propria dell'intestino tenue murino e stabilire co-colture tridimensionali (3D) tra entrambi i tipi di cellule per studiare le interazioni bidirezionali tra le cellule epiteliali intestinali e le cellule linfoidi innate di tipo 1.

Co-coltura di organoidi epiteliali murini dell'intestino tenue con cellule linfoidi innate

Descriviamo un protocollo che descrive in dettaglio l'isolamento delle cripte del colon murino per lo sviluppo di colonoidi tridimensionali. I colonoidi stabiliti possono quindi essere differenziati terminalmente per riflettere la composizione cellulare dell'epitelio ospite prima di ricevere una sfida infiammatoria o di essere diretti a stabilire un monostrato epiteliale.

Studiare gli effetti epiteliali dell'infiammazione intestinale in vitro su colonoidi murini accertati

Qui descriviamo la costruzione di un sistema modello di linea cellulare intestinale tridimensionale (3D) di base e un protocollo di inclusione della paraffina per la valutazione microscopica ottica di equivalenti intestinali fissi. La colorazione di proteine selezionate consente l'analisi di più parametri visivi da un singolo esperimento per un potenziale utilizzo in studi preclinici di screening farmacologico.

Sistema modello intestinale tridimensionale (3D) di base con una componente immunitaria

Scopri l'ingegneria tissutale intestinale nel topo usando unità di organoidi su scaffold. Questo metodo fornisce una piattaforma affidabile per la rigenerazione tissutale e la modellazione di malattie gastrointestinali.

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