4 novembre 2012
Questo articolo descrive la somministrazione di Lux-tagged Batteri ai topi e successive In vivo Analisi usando l'imaging bioluminescenza IVIS.
Questo video descrive l'uso dell'imaging bioluminescente su tutto il corpo per lo studio del traffico batterico in topi vivi, con particolare attenzione alla rilevazione della crescita batterica all'interno di xeno-trapianti tumorali. I batteri rappresentano una classe attraente di vettori per la terapia del cancro, poiché possiedono la capacità naturale di crescere in modo preferenziale all'interno dei tumori, sviluppandosi sia all'esterno sia all'interno delle cellule tumorali dopo somministrazione endovenosa. Ceppi batterici ingegnerizzati per esprimere il cassette genico lux permettono la rilevazione contemporanea sia dei batteri sia dei tumori. È ampiamente riconosciuto il valore del monitoraggio longitudinale non invasivo di ceppi batterici in vivo, che riduce l'utilizzo di animali e genera dati statisticamente più rilevanti rispetto ai saggi endpoint.
Questa procedura prevede l'induzione di tumori sottocutanei nei topi. I tumori vengono lasciati sviluppare e monitorati nel tempo. I batteri vengono somministrati e i topi sottoposti a imaging di bioluminescenza in punti temporali prestabiliti per gli esperimenti qui descritti.
Vengono indotti tumori sottocutanei in topi con background immunocompetente o timico. A seconda della scelta dello xenotrapianto, batteri di tipo Lux della specie desiderata, come e coli, vengono coltivati come colture notturne. Le cellule batteriche vengono lavate e risospese alla concentrazione desiderata per somministrazione endovenosa.
10 alla sesta. Un'iniezione di 100 microlitri contenente cellule batteriche è comunemente utilizzata. I topi con tumori sottocutanei, preparati per il trattamento, presentano abitualmente un volume cubico di 100 millimetri.
Utilizzando un ago da siringa da 29 gauge, la sospensione batterica viene iniettata nella vena caudale laterale. I batteri si replicano in modo preferenziale all'interno della massa tumorale nel tempo. I batteri intratumorali continuano a replicarsi per diverse settimane e sono rilevabili mediante imaging IVUS tra il terzo e il sesto giorno.
Dopo la somministrazione, per l'immagine bioluminescente, i topi vivi e anestetizzati vengono posizionati all'interno della camera a 37 gradi dell'ivus. Se desiderato, più topi possono essere immaginati contemporaneamente. Vengono acquisite immagini fotografiche e di luce luminescente utilizzando una camera CCD raffreddata, con le impostazioni software desiderate.
A seconda del dispositivo di imaging, è possibile eseguire un'analisi in due o tre dimensioni. Si ottiene una relazione lineare e robusta tra il numero di batteri intratumorali e i livelli di luce prodotti, consentendo una stima affidabile del numero di batteri in vivo. I batteri esprimenti LX possono inoltre essere rilevati anche da profondità elevate all'interno del corpo.
I batteri commensali colonizzatori dell'intestino che esprimono lux vengono visualizzati per diverse settimane. L'amministrazione post lavaggio dimostra ulteriormente l'utilità dell'imaging bioluminescente per l'analisi dei batteri esprimenti lux negli animali da ricerca.
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Questo articolo descrive l'uso dell'imaging bioluminescente del corpo intero per studiare il traffico batterico in topi vivi. L'attenzione è focalizzata sul rilevamento della crescita batterica all'interno degli xenotrapianti tumorali, evidenziando il potenziale dei batteri come vettori per la terapia del cancro.
Bioluminescent bacterial imaging enables real-time, non-invasive tracking of bacterial trafficking in vivo, supporting preclinical evaluation of bacterial vectors for cancer therapy. This approach reduces animal usage while providing longitudinal, quantitative data on tumor targeting and bacterial persistence. The method enhances predictive confidence in early-stage therapeutic vector development by visualizing spatial and temporal dynamics of bacterial localization within tumors.
The method integrates into the discovery continuum from early vector screening through preclinical validation, enabling iterative design-build-test cycles for bacterial therapeutics.