Name: Flusso Isolamento citometrica di primari murini di tipo II cellule alveolari epiteliali per gli studi funzionali e molecolari (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-26T12:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 48 s
Description: Scopri l'isolamento citometrico di cellule alveolari epiteliali di tipo II murine per studi funzionali e molecolari su malattie respiratorie. Questo metodo garantisce elevata purezza e vitalità cellulare.

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Vorremmo ringraziare M. Höxter per l&#39;assistenza tecnica di ordinamento primario AECII murino dal livello di biosicurezza 2 campioni. Questo lavoro è stato sostenuto da finanziamenti della Fondazione per la ricerca tedesca (DFG) a DB (SFB587, TP B12 e BR2221/1-1) e una borsa di studio dalla Scuola di Ricerca Biomedica di Hannover (DFG GSC 108) a AA. DB è supportato da Initiative del Presidente e del Fondo di rete dell&#39;Associazione Helmholtz del tedesco Centri di Ricerca (HGF) con W2/W3-029 numero del contratto.

Dettagli relativi reagenti e materiali necessari sono elencati nella tabella alla fine del protocollo di seguito. Prima di iniziare il lavoro, preparare 15 ml provette (uno per topo) contenente 4 ml di dispasi e pre-riscaldare a 37 ° C in un bagno d&#39;acqua. In un blocco riscaldante, poco riscaldare piccole aliquote di 1% agarosio a bassa fusione (in acqua) a 95 ° C fino liquefatto e poi raffreddare a 45 ° C fino all&#39;utilizzo. 1. Preparazione del polmone mouse <ol><li> Sacrifica il mouse CO 2 asfissia. Nota: Non eseguire dislocazione cervicale come questo danneggerà la trachea affinché seguendo fasi del protocollo, come l&#39;installazione del polmone di liquido, non può essere eseguita con successo. Garantire perdita dei riflessi nocicettivi. </li><li> Spruzzare il mouse con etanolo e fare un taglio lungo la linea mediana ventrale del corpo. Tirare il pelo e la pelle ventrale e, successivamente, anche con attenzione tagliare e rimuovere il peritoneo. </li><li> Exsanguinate l&#39;topo tagliando la vena giugulare sinistra e destra (Vena jugularis) e l&#39;arteria renale (renalis Arteria). Rimuovere il sangue che scorre con il tessuto. </li><li> Attenzione puntura e rimuovere il diaframma per esporre il cuore e polmone tagliando via le costole. Fare attenzione a non danneggiare il polmone. </li><li> Con una cannula 26G e una siringa da 10 ml riempita con fosfato fredda tamponata (PBS), forare il ventricolo destro del cuore e la perfusione polmonare con PBS fino libera di sangue. </li><li> Tagliare e rimuovere le ghiandole salivari per esporre la trachea. Anche tagliare con cautela il muscolo che circonda la trachea. </li><li> Inserire una cannula 22G inabitazione nella trachea, rimuovere l&#39;ago e spingere il catetere di plastica verso il polmone. Fissare il catetere legando un piccolo pezzo di filo intorno trachea e il catetere. </li></ol> 2. La digestione enzimatica del tessuto polmonare Se desiderato, un campione di liquido di lavaggio broncoalveolare può esserepreparato dal lavaggio dei polmoni attraverso il catetere inserito nella trachea con PBS o mezzo prima del passaggio successivo. <ol><li> Utilizzando una siringa da 2 ml, accuratamente infondere un volume massimo di 2 ml di dispasi (dal aliquota 4 ml) nel polmone attraverso il catetere in modo che tutti i lobi sono completamente espanso. Scambiare la siringa con una siringa da 1 ml contenente 0,5 ml di agarosio liquefatto e anche instillare nel polmone. </li><li> Lasciare la siringa sul catetere per evitare il riflusso del agarosio e coprire immediatamente il polmone con carta velina laboratorio e ghiaccio. Lascia il gel di agarosio per un paio di minuti. </li><li> Rimuovere la carta velina, ghiaccio, siringa e catetere, tagliare la trachea e le accise il cuore, polmone e del timo dal petto. Risciacquare il polmone in un piatto con PBS e rimuovere il, timo cuore e trachea rimanente. </li><li> Mettere il polmone nelle restanti 2 ml di dispasi e incubare a temperatura ambiente per 45 min. </li></ol> 3. Preparazione del polmoneSospensione cellulare <ol><li> Rimuovere il polmone dal dispasi e trasferirlo in un piatto contenente 7 ml di anticorpo anti-CD16/32 (1 ug / ml concentrazione finale) in DMEM e 100 microlitri DNasi. </li><li> Utilizzando pinze, completamente disintegrare il tessuto polmonare tirandolo a parte e incubare per 10 min a temperatura ambiente mentre agitando lentamente su un agitatore impostato a 200 rpm. Se desiderato, la sospensione cellulare può essere conservato a 4 ° C fino alla fase successiva. </li><li> Filtrare la sospensione cellulare attraverso maglie nylon prima con 100 micron e successivamente con 70 pm, 48 pm e 30 micron pori. Prendono cura di risciacquare ogni maglia nonché i tubi e piatti accuratamente con DMEM per minimizzare la perdita di cellule e massimizzare la resa. Se in comune tutti i campioni, questo può essere realizzato da qui passando successivamente sospensioni cellule da topi di un gruppo attraverso lo stesso filtro. Sostituire il filtro in caso di intasamento. </li><li> A seconda del volume, trasferire il filtrato a uno o più provette da 50 ml ecentrifugare per 15 minuti a 160 xg e 4 ° C. Rimuovere il surnatante. </li><li> Risospendere il pellet di cellule in 2 ml di tampone di lisi degli eritrociti (0,15 M NH 4 Cl, 0,01 M KHCO 3, 0,1 mM EDTA, pH 7,2) e rapidamente terminare lisi mediante aggiunta di 13 ml di terreno DMEM. Trasferire la soluzione in un tubo da 15 ml e centrifugare per 12 min a 160 xg e 4 ° C. </li></ol> 4. Colorazione anticorpi per citometria a flusso Cell-ordinamento <ol><li> Risospendere le cellule in 3 ml di cocktail di anticorpi primari, preparati in DMEM a diluizioni adatte per citometria a flusso. (Anticorpi precedentemente titolata per diluizioni ottimali di lavoro colorando 1 x 10 6 splenociti in un volume di 100 pl. Uso 3 ml di cocktail anticorpo primario contenente le concentrazioni ottimali per ciascuno degli anticorpi utilizzati per le celle pool da cinque topi. Se più topi sono raggruppati per un campione, regolare il volume). </li><li> Per la colorazione, incubare le cellule per 10 minuti al buioa 4 ° C. </li><li> Lavare le cellule riempiendo il tubo 15 ml di DMEM e centrifugazione per 12 min a 160 xg e 4 ° C. </li><li> Nel caso in cui gli anticorpi disaccoppiati o biotinilato sono stati utilizzati in 4.1: Rimuovere il surnatante e risospendere le cellule in 2-3 ml cocktail di anticorpi secondari. Colorazione per 10 min a 4 ° C al buio. </li><li> Lavare le cellule attraverso il tubo di riempimento con DMEM e centrifugazione per 12 min a 160 xg e 4 ° C. </li><li> Risospendere le cellule in 1 ml di DMEM e pre-filtro attraverso un filtro 50 micron in un tubo per cellula-ordinamento. Opzionale: Contare le cellule per ottenere il numero totale delle cellule in sospensione di cellule del polmone. </li></ol> 5. Cell-ordinamento <ol><li> Mescolare le cellule nel vortex prima cernita. Utilizzare un ugello 100 micron per la cella-cernita dei AECII. Pressione del fluido guaina nonché emissione laser e lunghezze d&#39;onda di rilevamento dipendono strumento utilizzato per citometria a flusso di cellule ordinamento nonché i fluorocromi usati nella antibody colorazione procedura. </li><li> Porta sulle cellule SSC alti che sono negativi per i fluorocromi utilizzati per la colorazione e l&#39;ordinamento in una provetta contenente DMEM. Utilizzare in avanti altezza scatter (FSC-H) vs area (FSC-A) e l&#39;altezza dispersione laterale (SSC-H) vs area (SSC-A) di Windows per escludere eventuali doppiette o aggregati cellulari (vedi dettagli della strategia di gating in Figura 1 a). </li><li> Per raccogliere la centrifuga ordinati cellule per 20 minuti a 280 xg e 4 ° C. </li><li> Risospendere le cellule in coltura-medio o tampone come richiesto per la successiva analisi. </li></ol>

<ol><li>Fehrenbach, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alveolar+epithelial+type+II+cell%3A+defender+of+the+alveolus+revisited%5BTitle%5D)+AND+%22Respir.+Res%22%5BJournal%5D)">Alveolar epithelial type II cell: defender of the alveolus revisited.</a> Respir. Res. 2, 33-46 (2001).</li>
<li>Folkerts, G., Nijkamp, F. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Airway+epithelium%3A+more+than+just+a+barrier%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Pharmacol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Airway epithelium: more than just a barrier.</a> Trends Pharmacol. Sci. 19, 334-341 (1998).</li>
<li>Gereke, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+alterations+in+type+II+alveolar+epithelial+cells+in+CD4%2B+T+cell+mediated+lung+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Respir.+Res%22%5BJournal%5D)">Phenotypic alterations in type II alveolar epithelial cells in CD4+ T cell mediated lung inflammation.</a> Respir. Res. 8, 47(2007).</li>
<li>Gereke, M., Jung, S., Buer, J., Bruder, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alveolar+type+II+epithelial+cells+present+antigen+to+CD4%28%2B%29+T+cells+and+induce+Foxp3%28%2B%29+regulatory+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Alveolar type II epithelial cells present antigen to CD4(+) T cells and induce Foxp3(+) regulatory T cells.</a> Am. J. Respir. Crit Care Med. 179, 344-355 (2009).</li>
<li>Gribar, S. C., Richardson, W. M., Sodhi, C. P., Hackam, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((No+longer+an+innocent+bystander%3A+epithelial+toll-like+receptor+signaling+in+the+development+of+mucosal+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Med%22%5BJournal%5D)">No longer an innocent bystander: epithelial toll-like receptor signaling in the development of mucosal inflammation.</a> Mol. Med. 14, 645-659 (2008).</li>
<li>Herold, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alveolar+epithelial+cells+direct+monocyte+transepithelial+migration+upon+influenza+virus+infection%3A+impact+of+chemokines+and+adhesion+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Alveolar epithelial cells direct monocyte transepithelial migration upon influenza virus infection: impact of chemokines and adhesion molecules.</a> J. Immunol. 177, 1817-1824 (2006).</li>
<li>Knight, D. A., Holgate, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+airway+epithelium%3A+structural+and+functional+properties+in+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Respirology%22%5BJournal%5D)">The airway epithelium: structural and functional properties in health and disease.</a> Respirology. 8, 432-446 (2003).</li>
<li>Schmiedl, A., Kerber-Momot, T., Munder, A., Pabst, R., Tschernig, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+distribution+in+lung+parenchyma+early+after+pulmonary+infection+with+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Res%22%5BJournal%5D)">Bacterial distribution in lung parenchyma early after pulmonary infection with Pseudomonas aeruginosa.</a> Cell Tissue Res. 342, 67-73 (2010).</li>
<li>Loveday, E. K., Svinti, V., Diederich, S., Pasick, J., Jean, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporal-+and+Strain-Specific+Host+MicroRNA+Molecular+Signatures+Associated+with+Swine-Origin+H1N1+and+Avian-Origin+H7N7+Influenza+A+Virus+Infection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Temporal- and Strain-Specific Host MicroRNA Molecular Signatures Associated with Swine-Origin H1N1 and Avian-Origin H7N7 Influenza A Virus Infection.</a> J. Virol. 86, 6109-6122 (2012).</li>
<li>Marriott, H. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interleukin-1beta+regulates+CXCL8+release+and+influences+disease+outcome+in+response+to+Streptococcus+pneumoniae%2C+defining+intercellular+cooperation+between+pulmonary+epithelial+cells+and+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Interleukin-1beta regulates CXCL8 release and influences disease outcome in response to Streptococcus pneumoniae, defining intercellular cooperation between pulmonary epithelial cells and macrophages.</a> Infect. Immun. 80, 1140-1149 (2012).</li>
<li>Mata, M., Morcillo, E., Gimeno, C., Cortijo, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((N-acetyl-L-cysteine+%28NAC%29+inhibit+mucin+synthesis+and+pro-inflammatory+mediators+in+alveolar+type+II+epithelial+cells+infected+with+influenza+virus+A+and+B+and+with+respiratory+syncytial+virus+%28RSV%29%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">N-acetyl-L-cysteine (NAC) inhibit mucin synthesis and pro-inflammatory mediators in alveolar type II epithelial cells infected with influenza virus A and B and with respiratory syncytial virus (RSV).</a> Biochem. Pharmacol. 82, 548-555 (2011).</li>
<li>Zarbock, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+surfactant+protein+C+mutation+A116D+alters+cellular+processing%2C+stress+tolerance%2C+surfactant+lipid+composition%2C+and+immune+cell+activation%5BTitle%5D)+AND+%22BMC.+Pulm.+Med%22%5BJournal%5D)">The surfactant protein C mutation A116D alters cellular processing, stress tolerance, surfactant lipid composition, and immune cell activation.</a> BMC. Pulm. Med. 12, 15(2012).</li>
<li>Taubenberger, J. K., Morens, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathology+of+influenza+virus+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Pathol%22%5BJournal%5D)">The pathology of influenza virus infections.</a> Annu. Rev. Pathol. 3, 499-522 (2008).</li>
<li>Dobbs, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+culture+of+alveolar+type+II+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Isolation and culture of alveolar type II cells.</a> Am. J. Physiol. 258, L134-L147 (1990).</li>
<li>Corti, M., Brody, A. R., Harrison, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+primary+culture+of+murine+alveolar+type+II+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Cell+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and primary culture of murine alveolar type II cells.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 14, 309-315 (1996).</li>
<li>Beers, M. F., Kim, C. Y., Dodia, C., Fisher, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localization%2C+synthesis%2C+and+processing+of+surfactant+protein+SP-C+in+rat+lung+analyzed+by+epitope-specific+antipeptide+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Localization, synthesis, and processing of surfactant protein SP-C in rat lung analyzed by epitope-specific antipeptide antibodies.</a> J. Biol. Chem. 269, 20318-20328 (1994).</li>
<li>Phelps, D. S., Floros, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localization+of+pulmonary+surfactant+proteins+using+immunohistochemistry+and+tissue+in+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Lung+Res%22%5BJournal%5D)">Localization of pulmonary surfactant proteins using immunohistochemistry and tissue in situ hybridization.</a> Exp. Lung Res. 17, 985-995 (1991).</li>
<li>Wang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiated+human+alveolar+type+II+cells+secrete+antiviral+IL-29+%28IFN-lambda+1%29+in+response+to+influenza+A+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Differentiated human alveolar type II cells secrete antiviral IL-29 (IFN-lambda 1) in response to influenza A infection.</a> J. Immunol. 182, 1296-1304 (2009).</li>
<li>Wang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Innate+immune+response+to+influenza+A+virus+in+differentiated+human+alveolar+type+II+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Cell+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Innate immune response to influenza A virus in differentiated human alveolar type II cells.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 45, 582-591 (2011).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Nostro protocollo per l&#39;isolamento di AECII murino mediante citometria a flusso offre un modo rapido di accedere cellule primarie del polmone mouse per tutta una serie di studi funzionali e molecolari. La procedura descritta produce popolazioni altamente vitali e puro di AECII che sono in numero sufficiente per le successive analisi dirette, come l&#39;RNA isolamento (vedi figura 2b) e studi del trascrittoma. Per applicazioni funzionali, è anche possibile per coltivare le cellule isolate, consentend...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti </td></tr><tr><td> inabitazione cannula Introcan 22G </td><td> Braun </td><td> REF 4252098B </td><td></td></tr><tr><td> Dispasi, 100 ml (5000 unità caseinolytic) </td><td> BD Biosciences </td><td> 354235 </td><td> aliquota da 4 ml in provette da 15 ml, conservare a -20 ° C </td></tr><tr><td> Biozym placca agarosio </td><td> Biozym </td><td> 840101 </td><td> 1% w / v in H 2 O </td></tr><tr><td> Deoxyribonuclease I da pancreas bovino, 2000 unità Kunitz / flaconcino </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D4263 </td><td> fresco Sciogliere il contenuto di 1 fiala in 300 ml DMEM </td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Gibco </td><td> 22320-022 </td><td> utilizzato secondo quanto previsto dal costruttore (Low Glucose, piruvato, HEPES) </td></tr><tr><td> filtri cellulari (100 micron, 75 micron) </td><td> BD Falcon </td><td> 352360, 352350 </td><td></td></tr><tr><td> maglia di nylon (48 micron, 30 micron) </td><td> Buckmann GmbH </td><td> 03-48/26-1020, 03-30/18-108 </td><td></td></tr><tr><td> CellTrics 50 um filtro </td><td> PARTEC </td><td> 04-0042-2317 </td><td></td></tr><tr><td> anti-topo CD16/CD32 </td><td> BioLegend </td><td> 101302 </td><td> clone 93; purificato </td></tr><tr><td> anti-topo F4/80 </td><td> BioLegend </td><td> 123116 </td><td> clone BM8; APC accoppiato </td></tr><tr><td> anti-topo CD11b </td><td> BioLegend </td><td> 101208 </td><td> clone M1/70; PE accoppiato </td></tr><tr><td> anti-topo CD11c </td><td> BioLegend </td><td> 117310 </td><td> clone N418; APC accoppiato </td></tr><tr><td> anti-topoCD45 </td><td> BioLegend </td><td> 103102 </td><td> clone 30-F11; purificato </td></tr><tr><td> anti-topo CD19 </td><td> eBioscience </td><td> 12-0193-83 </td><td> EBIO 1D3; PE accoppiato </td></tr><tr><td> policlonale di capra anti-topo IgG </td><td> BD Pharmingen </td><td> 550767 </td><td> policlonale, PE accoppiato </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Anticorpi accoppiati a fluorocromi alternativi possono essere utilizzati, a seconda del citofluorimetro e laser disponibili. </td></tr></tbody></table>

flusso isolamento citometrica di primari murini di tipo ii cellule alveolari epiteliali per gli studi funzionali e molecolari

Flow Cytometric Isolation of Primary Murine Type II Alveolar Epithelial Cells for Functional and Molecular Studies

Durante gli ultimi anni, il contributo delle cellule alveolari di tipo II epiteliali (AECII) a vari aspetti della regolazione immunitaria nel polmone è stato sempre più riconosciuto. AECII hanno dimostrato di partecipare alla produzione di citochine in vie aeree infiammate ed agire anche come cellule presentanti l&#39;antigene sia infezione e cellule T mediata autoimmunità 1-8. Pertanto, essi sono particolarmente interessanti anche in contesti clinici, quali vie aeree iper-reattività estera e di auto-antigeni così come le infezioni che direttamente o indirettamente si rivolgono AECII. Tuttavia, la nostra comprensione delle funzioni immunologiche dettagliate serviti da cellule alveolari di tipo II epiteliali nel polmone sano così come in infiammazione rimane frammentario. Molti studi in materia di funzione AECII vengono eseguite utilizzando il mouse o umani linee cellulari epiteliali alveolari 9-12. Lavorando con linee cellulari offre sicuramente una serie di vantaggi, come la disponibilità di grandi numeri of cellule per analisi approfondite. Tuttavia, riteniamo che l&#39;uso di primaria AECII murino permette una migliore comprensione del ruolo di questo tipo di cellule in processi complessi come infezione o infiammazione autoimmune. Primaria AECII murino possono essere isolati direttamente da animali affetti da tali disturbi respiratori, nel senso che sono stati sottoposti a tutti gli altri fattori estrinseci che giocano un ruolo nel contesto analizzato. Come esempio, AECII vitali possono essere isolate da topi infettati intranasale con virus influenzale A, che colpisce principalmente queste cellule per la replicazione 13. È importante sottolineare che, attraverso l&#39;infezione ex vivo di AECII isolati da topi sani, gli studi sulle risposte cellulari montati su di infezione può essere ulteriormente estesa. Nostro protocollo per l&#39;isolamento di primaria AECII murino si basa sulla digestione enzimatica del polmone topo seguita da etichettare la sospensione cellulare risultante con anticorpi specifici per CD11c, CD11b, F4/80,CD19, CD45 e CD16/CD32. AECII granulari vengono identificate come la dispersione non marcato e lateralmente alta (SSC alta) popolazione cellulare e sono separati da fluorescenza activated cell smistamento 3. In confronto ai metodi alternativi di isolare cellule epiteliali primarie da polmoni di topo, il nostro protocollo per l&#39;isolamento di citometria a flusso AECII per selezione negativa produce intatta, altamente puro AECII vitale e in tempi relativamente brevi. Inoltre, e in contrasto con i metodi convenzionali di isolamento di panning e deplezione dei linfociti tramite legame di anticorpo-accoppiati biglie magnetiche 14, 15, citometria a flusso di cellule ordinamento consente discriminazione attraverso dimensione cellulare e granularità. Dato che la strumentazione per selezione cellulare citofluorimetrica è disponibile, la procedura descritta può essere applicata a costi relativamente bassi. Accanto a anticorpi standard e enzimi per la disintegrazione del polmone, senza reagenti aggiuntivi, come magneticoperline sono richiesti. Le cellule isolate sono adatti per un&#39;ampia gamma di studi funzionali e molecolari, che comprendono la coltura in vitro di cellule T e saggi di stimolazione così come trascrittoma, proteoma o analisi secretoma 3, 4.

Quando si ordina sospensioni di cellule polmonari isolati da topi sani, il cancello AECII in genere rappresentano circa il 42 ± 10% di tutti gli eventi. Tale percentuale può essere notevolmente inferiore quando topi con patologie respiratorie come una infezione virale vengono utilizzati, come la sospensione cellulare iniziale conterrà una percentuale notevolmente più elevata di linfociti e di altre cellule immunitarie reclutati per le vie respiratorie. Per AECII isolata da polmoni IAV infetti al giorno 3 dopo l&#39;infe...

Descriviamo l&#39;isolamento rapido di primarie murine di tipo II le cellule epiteliali alveolari (AECII) per selezione di citometria di flusso negativo. Questi AECII mostrano alta vitalità e purezza e sono adatte per una vasta gamma di studi funzionali e molecolari riguardanti il ​​loro ruolo in condizioni respiratorie come le malattie autoimmuni o infettive.

Flusso Isolamento citometrica di primari murini di tipo II cellule alveolari epiteliali per gli studi funzionali e molecolari

Negli ultimi anni, il contributo delle cellule epiteliali alveolari di tipo II (AECII) a vari aspetti della regolazione immunitaria nel polmone è stato...

L'obiettivo generale di questa procedura è isolare cellule epiteliali alveolari di tipo due, primarie, pure e vitali, per successivi analisi funzionali e molecolari. In primo luogo, il polmone e la trachea di un topo sacrificato vengono instillati con una soluzione di DYS displays e successivamente con agarosio. Il polmone viene quindi asportato dopo che il dispa ha digerito il tessuto polmonare.Il tessuto viene disintegrato manualmente. La sospensione ottenuta viene filtrata attraverso una serie di maglie con dimensione decrescente dei pori. Successivamente, le cellule epiteliali alveolari di tipo due vengono colorate e isolate mediante selezione negativa citofluorimetrica.In definitiva, le cellule epiteliali alveolari di tipo due isolate possono essere utilizzate per eseguire saggi funzionali e molecolari allo scopo di studiarne il ruolo nelle infezioni respiratorie e nelle malattie autoimmuni polmonari. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della immunologia polmonare, in particolare nel contesto delle malattie polmonari autoimmuni e delle infezioni virali. La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale poiché la preparazione dell'o

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Immunologia e Infezioni

Una preparazione altamente purificato di cellule dendritiche del polmone del mouse è descritto. Particolare enfasi è data l'isolamento delle tradizionali sottoinsieme delle cellule dendritiche.

Isolamento di cellule polmonari mouse dendritiche

Qui si descrive un metodo efficace per l'isolamento, l'identificazione e la purificazione delle cellule epiteliali del timo topo (TEC). Il protocollo può essere utilizzato per gli studi di funzione del timo per il normale sviluppo delle cellule T, la disfunzione del timo, e la ricostituzione delle cellule T.

Isolamento, identificazione e purificazione di cellule murine timica epiteliali

Lo stato di salute del polmone si riflette il tipo e il numero di cellule immunitarie che sono presenti nei bronchioli dei polmoni. Descriviamo una tecnica di lavaggio broncoalveolare che consente di isolare e studio delle cellule non aderenti e fattori solubili dal tratto respiratorio inferiore dei topi.

Lavaggio broncoalveolare murini di polmoni per analizzare infiammatoria infiltrazione cellulare

Questo lavoro descrive un protocollo basato su FACS che consente l'isolamento facile e simultaneo di periciti tipo I e II di tipo muscolare scheletrico.

Isolamento delle pericelle di tipo I e II di muscoli scheletrici del mouse

La presente comunicazione descrive le metodologie di isolamento e coltura dei macrofagi alveolari da esseri umani e modelli murini per scopi sperimentali.

Isolamento e coltura In Vitro dei macrofagi alveolari murini ed umani

Questo articolo fornisce una metodologia dettagliata per la dissociazione dei tessuti e gli approcci di frazionamento cellulare che consentono l'arricchimento di cellule epiteliali vitali dalle regioni prossimali e distali del polmone umano. Qui questi approcci sono applicati per l'analisi funzionale di cellule progenitrici epiteliali polmonari attraverso l'uso di modelli di coltura di organoidi 3D.

Isolamento e arricchimento di cellule progenitrici epiteliali polmonari umane per la coltura di organoidi

In questo articolo, le cellule endoteliali polmonari primarie sono state isolate e coltivate da topi neonatali.

Isolamento delle cellule endoteliali polmonari primarie di topo

Questo protocollo descrive in dettaglio l'isolamento di popolazioni vive immunitarie e non immuni dal polmone di topo allo stato stazionario e in seguito all'infezione influenzale. Fornisce inoltre strategie di gating per l'identificazione di sottogruppi di cellule epiteliali e mieloidi.

Isolamento di popolazioni di cellule mieloidi ed epiteliali vive dal polmone di topo

Questo protocollo presenta un metodo basato su citometria a flusso per isolare cellule epiteliali alveolari di tipo II (AECII) vitali da polmoni murini neonatali, giovani o adulti (infetti o non infetti). Questo approccio consente a seguito studi molecolari e/o funzionali dell'AECII di identificarne il ruolo durante l'infiammazione e l'infezione polmonare.

Isolamento delle cellule epiteliali alveolari di tipo II da polmoni murini neonatali, giovani e adulti adattabili a contesti sperimentali infettivi

Questo articolo presenta un metodo basato citometria di flusso per studiare la composizione immunitario dei aorte. Il documento illustra anche una tecnica aggiuntiva che consente di esaminare avventizia circostante e parete del vaso a parte. Questo metodo apre la possibilità di eseguire analisi fenotipica dei leucociti aortica e applicare diversi saggi immunologici per gli studi di aterosclerosi.

Analisi Citometria a flusso di cellule immunitarie all&#39;interno aorte Murine

Scopri l'isolamento citometrico di cellule alveolari epiteliali di tipo II murine per studi funzionali e molecolari su malattie respiratorie. Questo metodo garantisce elevata purezza e vitalità cellulare.

Flusso Isolamento citometrica di primari murini di tipo II cellule alveolari epiteliali per gli studi funzionali e molecolari

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