Name: Analisi Imaging di Neuron Interaction Glia in Platform Cultura Microfluidic (MCP) a base di Axon neurone e glia co-cultura di sistema (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 34 s
Description: Scopri l'analisi delle interazioni neurone-glia con imaging ad alta risoluzione utilizzando una piattaforma microfluidica di co-cultura assone-astrocita. Questo metodo consente di studiare la segnalazione cellulare in modo controllato.

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Vorremmo ringraziare il Dott. Jeffrey Rothstein per la fornitura di BAC GLT1 topi eGFP e GLT1 anticorpi; Tufts Center for Neuroscience Research (NIH P30 NS047243, PI, Rob Jackson) per la fornitura di servizi di base preziosi, New facoltà di assunzione di assegnazione (NIH 5P30NS069254 P30-02 , PI, Phil Haydon) in Tufts Neuroscienze Dipartimento.

1. Assemblea della Camera Cultura Microfluidic (MCP) <ol><li> MCP (Figura 1) sono progettati per cavità si aprono culture compartimenti di diversi tipi di cellule 4. Ha tipicamente due compartimenti che sono collegati attraverso i canali centrale (3 mm di diametro). Montaggio di MCP con fondo di vetro piatti è necessario per la preparazione di culture e l&#39;analisi di immagini successive. </li><li> Primo, cappotto sterili fondo di vetro piatti con Polyornithine (Sigma-Aldrich, 1 mg / ml) sciolto in tetraborato di sodio (Sigma-Aldrich, 10 mM pH 8,5) e sono state incubate per una notte a 37 ° C. </li><li> Il giorno seguente, il fondo di vetro rivestite piastre sono state lavate tre volte con DDH 2 O ed essiccato sotto cappa sterile fumi. I fondo di vetro piatti erano poi ulteriormente rivestito con laminina (Sigma-Aldrich, 1 mg / ml) ed essiccati sotto luce UV per 1 ora. Piatti rivestiti sono pronti all&#39;uso o può essere conservato a -20 ° C fino all&#39;uso. Questi un rivestimentori necessari per neuroni e astrociti placcatura in co-coltura. </li><li> Per assemblare la piattaforma cultura, piattaforme cultura microfluidici sono stati collocati in cima alle fondo di vetro rivestite con piatti centrali canali di connessione sul suo lato inferiore per formare una tenuta ermetica. Neurone regolare o terreni di coltura sono stati aggiunti astrociti (dalle zone di placcatura di cella) su entrambi i lati (figura 1) nella assemblato MCP e incubate per 2-4 ore a 37 ° C, per garantire l&#39;assenza di fughe tra MCP e il vetro- piatto fondo. Abbiamo testato con il mezzo prima che le cellule placcatura per garantire non ci sono perdite. L&#39;assemblea di MCP sul vetro a fondo piatto deve essere preparata estemporaneamente prima dell&#39;uso. </li></ol> 2. Preparazione della Cultura neuronale e induzione degli assoni neuronali in assemblato MCP <ol><li> Corticali colture di cellule neuronali sono stati preparati da embrionali 14-16 giorni di età cervello dei topi. Il mezzo di coltura neurone è composto medie Neurobasal, 2% B27 neurobasaL integratore, 2 mM glutammina aggiungendo 1% di 100x glutamax, e 1% di penicillina-streptomysin. Seguendo dissezione del cervello di topo, le meningi stato rimosso dalla corteccia sotto il microscopio da dissezione. Il tessuto è stato quindi macinata con una lama di rasoio per fare piccoli blocchi di tessuto al fine di aumentare la superficie esposta alla tripsina. Blocchi di tessuto sono state tripsinizzate (Sigma-Aldrich, 0,05% di tripsina) per 10 min in un bagno di acqua a 37 ° C, e quindi dissociato delicatamente per triturazione con un incendio lucidato pipetta Pasteur. Cellule dissociate sono state filtrate attraverso un filtro 70 micron a raccogliere chiaro sospensione cellulare neuronale. </li><li> Neuroni (2-3 x 10 6 / ml, 150 ml) sono state piastrate su aree placcatura cella sulla destra (Figura 1) del MCP assemblato in modo che i neuroni possono attaccare nella zona di ritenzione cellulare (Figura 1). Neuroni preparate sono state piastrate in mezzo di placcatura neurone che viene integrata con il 5% di siero bovino fetale (Hyclone) nella regular neurone terreno di coltura. Perché solo i neuroni che fissano nella zona ritenzione delle cellule sono in grado di crescere assoni nell&#39;altro lato della assemblato MCP attraverso canali centrali, è importante densità piastra elevato di neuroni nell&#39;area placcatura cella per garantire pochi neuroni sono collegati al cella area di ritenzione. Una immagine rappresentativa di alta densità di assoni neuronali è mostrato nella figura 2A. </li><li> Il giorno seguente, il mezzo placcatura neurone è stato sostituito dalla media regolare cultura neurone. Medie cambiando è stata compiuta da aspirando accuratamente il terreno dalla superficie cellulare placcatura della camera, ma non dalla zona di ritenzione della cella assemblata MCP, per evitare bolle d&#39;aria nella zona di ritenzione cellulare ei canali centrali di collegamento. Le bolle d&#39;aria si inibiscono gravemente la conseguenza assone e la successiva entrata in canali centrali del MCP. Cellule gliali fattore neurotrofico derivato (GDNF, 10-20 ng / ml) è stato aggiunto anche dall&#39;altro (sinistro)della camera il giorno stesso per facilitare l&#39;induzione della crescita degli assoni 5 dal lato neuronale e trasversale attraverso canali centrali assemblato MCP (Figura 2A). Discreta quantità di crescita dei neuriti spontanea senza GDNF si osserva anche dal lato neuronale e trasversale attraverso i canali centrali della assemblato MCP. Assoni che entrano nel canale centrale sono spesso osservati 2-3 giorni dopo la placcatura. Una volta che gli assoni entra nel canale centrale, di solito immettere lato entro un giorno. Assoni sono normalmente intatto per almeno una settimana dopo aver inserito l&#39;altro lato. </li></ol> 3. L&#39;aggiunta di astrociti in coltura per MCP per stabilire una co-cultura a compartimenti stagni del sistema Colture primarie di astrociti sono stati preparati da P1-3 cervello di topo cucciolo. La procedura di dissociazione cervello è simile alla procedura di isolamento cellulare neuronale descritto sopra. Astrociti sono stati piastrati in piatto 10 cm che sono stati pre-Rivestito con Polyornithine (Sigma-Aldrich, 1 mg / ml). Il mezzo di coltura astrociti (DMEM, 10% di siero fetale bovino, 1% di penicillina-streptomysin) è stato cambiato ogni giorno per i due giorni successivi per rimuovere i detriti. Dopo di che, il mezzo è stato cambiato ogni tre giorni. <ol><li> Astrociti diventano 90% confluenti e formano un monostrato dopo 7 giorni. Astrociti confluenti sono state tripsinizzate e 150 pl di ri-sospese astrociti (1x10 6 / ml) sono stati ri-piastrate nell&#39;area cella fasciame del lato sinistro della assemblato MCP quando assoni stanno per entrare o appena entrato nel lato sinistro l&#39;assemblato MCP. Gli astrociti sono stati di solito 4-5 giorni dopo piastrate i neuroni erano placcato. GDNF è stato rimosso prima della re-placcatura dei astrociti nel lato sinistro della MCP. Re placcati astrociti sono stati attaccati nella zona di ritenzione cellulare, come mostrato dalla immunostaining GFAP (Figura 1). Solo flusso minimo di mezzo tra entrambi i lati delle camere (determinata dalla fluorescenza dsì) è stato trovato nel MCP, come precedentemente illustrato 4,6. </li><li> Astrociti diventano 90% confluenti e formano un monostrato dopo 7 giorni. Astrociti confluenti sono state tripsinizzate e 150 pl di ri-sospese astrociti (1 x 10 6 / ml) sono stati ri-piastrate nell&#39;area cella fasciame del lato sinistro della assemblato MCP quando assoni stanno per entrare o sono entrate in sinistra lato del MCP assemblato. Gli astrociti sono stati di solito 4-5 giorni dopo piastrate i neuroni erano placcato. GDNF è stato rimosso prima della re-placcatura dei astrociti nel lato sinistro della MCP. Re placcati astrociti sono stati attaccati nella zona di ritenzione cellulare, come mostrato dalla immunostaining GFAP (Figura 1). Solo flusso minimo di mezzo tra entrambi i lati delle camere (determinata da coloranti fluorescenti) è stato trovato nel MCP, come precedentemente illustrato 4,6. </li><li> Dopo la ri-placcatura dei astrociti, assoni che sono entrate nel lato sinistro della assemblato MCP interagisce direttamente con il astrocytes di contatto diretto assonale o il rilascio di fattori solubili. Immunocolorazione astrogliale GLT1 membrana plasmatica trasportatore e glutammato neuronale βIII-tubulina è stata eseguita per visualizzare l&#39;interazione tra gli assoni e astrociti, come mostrato nella Figura 2D-F. </li></ol>

<ol><li>Stevens, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuron-astrocyte+signaling+in+the+development+and+plasticity+of+neural+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Neuro-Signals%22%5BJournal%5D)">Neuron-astrocyte signaling in the development and plasticity of neural circuits.</a> Neuro-Signals. 16, 278-288 (2008).</li>
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<li>Debanne, D., Rama, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Astrocytes+shape+axonal+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Science+signaling%22%5BJournal%5D)">Astrocytes shape axonal signaling.</a> Science signaling. 4, pe11(2011).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Il neurone MCP based e astrociti co-coltura sistema consente di dissezione neurone dettagliata astroglia vie di segnalazione permettendo solo gli assoni passare i canali centrali e interagire con le cellule astrogliali. Questo co-coltura sistema può essere comodamente impostato con neurone convenzionale e procedure di coltura astrociti. Abbiamo anche descritto un applicazione pratica di questo sistema di co-coltura con l&#39;impiego di un reporter eGFP based per dimostrare assone-dipendente attivazione promotore GLT1 ne...

<table border="1"><tbody><tr><td> Siero fetale bovino </td><td> Hyclone </td><td> SH30070.03 </td><td> per la placcatura neurone per neurone medio cutlure </td></tr><tr><td> Siero fetale bovino </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> F4135 </td><td> per il terreno di coltura astrociti </td></tr><tr><td> Gliale fattore nervoso derivato </td><td> R &amp; D Systems </td><td> 212-GD </td><td> Applicare 10-20 ng / ml a lato neurone della camera </td></tr><tr><td> Dulbecco modificato aquila medio alte concentrazioni di glucosio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 11995 </td><td></td></tr><tr><td> 70 millimetri filtro cella </td><td> BD Falcon </td><td> 352350 </td><td></td></tr><tr><td> Sterile piatto di vetro basso </td><td> MatTek Corporation </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Piattaforme cultura microfluidici </td><td> Xona microfluidica LLC </td><td> SND150 </td><td></td></tr><tr><td> 6 pozzetti della piastra di coltura </td&gt; <td> Cellstar </td><td> 657 160 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Neuron terreno di coltura <ul><li> Media Neurobasal </li><li> 2% B27 supplemento Neurobasal </li><li> 2 mM glutammato aggiungendo 1% 100x glutamax </li><li> 1% di penicillina-streptomysin </li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Neuron terreno di coltura per cellule placcatura <ul><li> Media Neurobasal </li><li> 2% B27 supplemento Neurobasal </li><li> 2 mM glutammato aggiungendo 1% 100x glutamax </li><li> 1% di penicillina-streptomysin </li><li> 5% di siero fetale bovino SH30070.03 </li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Terreno di coltura astrociti <ul><li> Dulbecco modificato eagle glucosio medio alto </li><li> 10% di siero bovino fetale F4135 </li><li> 1% di penicillina-streptomysin </li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Materiali Tabella 1. Utilizzati per la microfluidica cultura piattaforma basata su assone neuronale e glia di co-cultura di sistema. </td></tr></tbody></table>

analisi imaging di neuron interaction glia in platform cultura microfluidic (mcp) a base di axon neurone e glia co-cultura di sistema

Imaging Analysis of Neuron to Glia Interaction in Microfluidic Culture Platform (MCP)-based Neuronal Axon and Glia Co-culture System

Neurone propria interazione glia è fondamentale per funzione fisiologica del sistema nervoso centrale (CNS). La comunicazione bidirezionale è sofisticato mediata da specifiche vie di segnalazione tra neuroni e glia 1,2. Identificazione e caratterizzazione di queste vie di segnalazione è essenziale per la comprensione di come l&#39;interazione neurone a glia forme CNS fisiologia. In precedenza, le colture di neuroni e glia misti sono stati ampiamente utilizzati per il test e la caratterizzazione di vie di segnalazione tra neuroni e glia. Quello che abbiamo imparato da questi preparativi e altri strumenti in vivo, tuttavia, ha suggerito che la segnalazione reciproci tra neuroni e glia sono presentati spesso in settori specifici all&#39;interno dei neuroni (cioè, assoni, dendriti, o soma) 3. Per questo è importante per sviluppare un nuovo sistema di cultura che permette la separazione dei compartimenti neuronali ed esamina in particolare l&#39;interazione tra glia e neuronali assoni / dendriti. Inoltre, il sistema convenzionale coltura mista non è in grado di differenziare i fattori solubili e segnali in membrana di contatto tra neuroni e glia. Inoltre, la grande quantità di neuroni e cellule gliali del convenzionale sistema di co-coltura manca la risoluzione necessaria per osservare l&#39;interazione tra un singolo assone e cellule gliali. In questo studio, si descrive un assone romanzo e glia sistema di co-coltura con l&#39;uso di una piattaforma microfluidica cultura (MCP). In questo sistema di co-coltura, neuroni e cellule gliali sono coltivati ​​in due camere separate che sono collegati attraverso molteplici canali centrali. In questa piattaforma microfluidica cultura, solo i processi neuronali (soprattutto assoni) può entrare nel lato gliali attraverso i canali centrali. In combinazione con potente etichettatura proteina fluorescente, questo sistema permette esame diretto di percorsi di segnalazione tra interazioni assonali / dendritiche e gliali, tales assone-mediata regolazione trascrizionale nelle cellule gliali, glia-mediata traffico recettore in terminali neuronali e glia-mediata della crescita degli assoni. Il diametro ridotto della camera vieta anche significativamente il flusso del neurone arricchito medio nella camera gliale, facilitando sondaggio della diretta membrana-proteina tra assoni / dendriti e superfici gliali.

Time-lapse imaging di analisi assone indotta da attivazione del promotore GLT1 negli astrociti Il neurone compartimenti e astrociti co-coltura sistema consente solo i processi neuronali, in particolare gli assoni, di interagire selettivamente con astrociti. Seguendo la costituzione ottimale di assoni e astrociti (o altre cellule gliali) co-coltura in assemblata MCP, diversi tipi di assone-glia interazioni possono essere studiate come; assone indotta attivazione di attivazione astrogliale gene p...

Questo studio descrive le procedure di creazione di un nuovo assone neuronale e (astro) glia co-coltura piattaforma. In questo sistema di co-coltura, la manipolazione di interazione diretta tra un singolo assone (e singole cellule gliali) diventa possibile, consentendo l&#39;analisi meccanicistica del neurone reciproco segnalazione gliali.

Analisi Imaging di Neuron Interaction Glia in Platform Cultura Microfluidic (MCP) a base di Axon neurone e glia co-cultura di sistema

L'interazione appropriata tra neuroni e glia è fondamentale per la funzione fisiologica del sistema nervoso centrale (SNC). Questa comunicazione bidirezionale è...

Questo protocollo stabilisce una nuova piattaforma di coltura cellulare condivisa tra assoni neuronali e astrociti per analizzare le interazioni tra neuroni e astrociti mediante imaging ad alta risoluzione. In primo luogo, assemblare la camera di coltura microfluidica, preparare le colture neuronali e indurre gli assoni neuronali a penetrare nel lato opposto del MCP. Successivamente, aggiungere astrociti coltivati per stabilire un sistema di coltura condivisa compartimentalizzato; i risultati, inclusi imaging a intervalli di tempo con microscopia confocale a immunofluorescenza, possono contribuire a comprendere le interazioni tra assoni, astrociti e assoni neuronali.L'idea per questo metodo è nata quando abbiamo cercato di separare l'effetto del processo neuronale rispetto alla secrezione neuronale nella regolazione del GT. In genere, le persone nuove rispetto al metodo incontrano difficoltà nell'indurre l'assone in un'altra parte del compartimento cellulare. È richiesta un'alta densità di neuroni sani piastrati sul lato neuronale, con i neuroni posizionati vicino ai canali centrali.Le camere aperte MCP sono progettate per colture compartimentalizzate di diversi tipi di cellule; rivestimenti in poliuretano e laminina sono necessari per la semina di neuroni e astrociti nella coltura co-colturale. Inizialmente, applicare una soluzione di poliuretano da un milligrammo per millilitro alle piastre con fondo in vetro sterile e incubare a 37 gradi Celsius durante la notte. Lavare le piastre con fondo rivestito tre volte con acqua doppio-distillata e quindi posizionarle sotto una cappa sterile per farle asciugare.Successivamente, ricoprire la piastra con laminina ad una concentrazione di un milligrammo per millilitro e asciugare sotto luce UV per un'ora. L'assemblaggio di MCP sulla piastra con fondo in vetro deve essere preparato fresco prima dell'uso. Posizionare la piattaforma di coltura microfluidica con i canali di collegamento centrali sul lato inferiore e formare una sigillatura stretta con il vetro ricoperto.Piatti inferiori. Aggiungere il mezzo di coltura standard per neuroni o astrociti su entrambi i lati del MCP assemblato. Incubare la camera da due a quattro ore a 37 gradi Celsius e verificare l'assenza di perdite tra il MCP e il vetro.Piatto inferiore. Colture cellulari di neuroni corticali sono appena state preparate da cervelli di topi embrionali di 14-16 giorni. Dopo la dissezione del cervello del topo, rimuovere le meningi dalla corteccia sotto il microscopio stereoscopico.Usare una lametta per trinciare il tessuto in piccoli blocchi di tessuto e posizionare i blocchi tritati in un tubo dopo la centrifugazione. Eliminare il mezzo sovrannatante rispetto al pellet e aggiungere 0,05% Try per 10 minuti in un bagno d'acqua a 37 gradi Celsius. Dissociare le cellule mediante pipettaggio delicato con una pipetta Pasteur a punta fiammeggiata.Filtrare il campione attraverso un setaccio da 70 micron per raccogliere una sospensione cellulare neuronale chiara utilizzando la piastratura neuronale. Mezzo integrato con 5% di FBS per la semina. 150 microlitri di neuroni sul lato destro della piastra MCP assemblata.Un'elevata densità di neuroni, poiché soltanto i neuroni che si attaccano nell'area di ritenzione cellulare sono in grado di far crescere assoni attraverso i canali centrali fino all'altro lato del MCP assemblato. Il giorno successivo, aspirare con attenzione il mezzo dall'area di semina cellulare della camera e sostituire il mezzo di semina per neuroni con il normale mezzo di coltura per neuroni.Medio, aggiungere 20 nanogrammi per millilitro di fattore neurotrofico derivato dai glia, o GDNF, al lato degli astrociti della camera. Questo crea un gradiente chimico che aiuterà a indurre la fuoriuscita degli assoni dal lato neuronale attraverso i canali centrali del MCP assemblato. Due giorni dopo, monitorare la presenza di assoni che entrano nel canale centrale.Una volta che gli assoni entrano nel canale centrale, di solito raggiungono l'altro lato entro un giorno. Gli assoni rimangono normalmente integri per almeno una settimana dopo aver raggiunto l'altro lato. Dissociato il cervello da P uno a tre topi, si seminano astrociti in piatti di poliuretano da 10 centimetri.Coltivare, le cellule ricambiano il mezzo di coltura degli astrociti una volta al giorno per i due giorni successivi, quindi una volta ogni tre giorni dopo sette giorni, quando gli astrociti hanno formato un monolayer confluenziale al 90%. Raccogliere le cellule mediante tripsina. Circa cinque giorni dopo che i neuroni sono stati seminati, aspirare il GDNF. Quindi seminare 150 microlitri degli astrociti risospesi nel lato sinistro del MCP assemblato. Quando gli assoni stanno per entrare o sono appena entrati, dopo la riseminazione degli astrociti, gli assoni che entrano nel lato sinistro del MCP assemblato interagiscono direttamente con gli astrociti, sia mediante contatto assiale diretto sia mediante il rilascio di fattori solubili.Monitorare gli astrociti per verificarne l'adesione all'area di ritenzione cellulare. Immunoistocolorare le cellule nel sistema di co-coltura compartimentalizzato per visualizzare proteine specifiche coinvolte nell'interazione tra assoni e astrociti. Il sistema di co-coltura di neuroni e astrociti compartimentalizzato permette esclusivamente ai processi neuronali, in particolare agli assoni, di interagire selettivamente con gli astrociti.Qui descriviamo l'attivazione trascrizionale indotta dagli assoni del trasportatore del glutammato negli astrociti. Questi studi utilizzano topi transgenici, che ospitano l'espressione di un reporter fluorescente EGF sotto il controllo del promotore genomico GT uno. Una densità elevata di neuroni viene coltivata nell'area di ritenzione cellulare del MCPA assemblato; la vista ingrandita mostra gli assoni che attraversano i canali centrali e penetrano nel lato opposto, con la colorazione per la tubulina beta tre che rivela il cono di crescita dell'assone.Il sistema MCP permette il monitoraggio dei fasci assonali mentre crescono attraverso il canale centrale e raggiungono l'altro lato. La colorazione immunoistochimica per GT one identifica gli astrociti nel lato gliale del sistema MCP. L'immagine mostra il contatto tra assoni e astrociti positivi per GLT one.L'espressione del reporter EGFP si correla con l'attivazione del promotore endogeno di GT one, con l'espressione proteica e con l'attività funzionale. La valutazione dell'attività del promotore di GT one in singoli astrociti in C two mostra una immunoreattività significativamente aumentata per GLT one nel sistema di co-coltura compartimentalizzato. In modo importante, il sistema MCP permette acquisizioni di immagini in time-lapse per monitorare i cambiamenti dinamici.Ad esempio, questi dati mostrano l'attivazione del promotore GT uno indotta dagli assoni con retro GT uno EGFP astrociti e neuroni di tipo selvaggio un giorno dopo la semina degli astrociti. Minima fluorescenza EGFP viene osservata. L'intensità EGFP aumenta significativamente 48 ore dopo la co-coltura, quando gli assoni sono ben penetrati nel lato degli astrociti e interagiscono entrando in contatto diretto con gli astrociti qui.Il trattamento con chinina sul lato neuronale del MCP assemblato ha indotto la morte cellulare neuronale. In modo interessante, ha inoltre stimolato il restringimento e la degenerazione dell'assone, nonché la riduzione della fluorescenza EGFP assonale. Questi cambiamenti dinamici dell'intensità della fluorescenza EGFP in risposta agli assoni hanno chiaramente dimostrato che l'attività del promotore Astroglia GT uno è modulata dall'interazione con l'assone.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come stabilire il sistema di coltura cellulare utilizzando la piattaforma di coltura microfluidica; una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita correttamente in pochi giorni.

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Questo protocollo mira a dimostrare come combinare in vitro microelettrodi con dispositivi microfluidici per lo studio della trasmissione del potenziale d'azione in colture neuronali. Analisi dei dati, vale a dire l'individuazione e la caratterizzazione dei materiali di moltiplicazione di potenziali di azione, è eseguita utilizzando un nuovo avanzato, ma facile da usare e liberamente disponibile, strumento computazionale.

Microfluidica di interfacciamento con microelettrodi per studiare comunicazione neuronale e propagazione del segnale assonale

Qui, presentiamo un approccio semplice utilizzando specifici mezzi di coltura che permettono la creazione di colture arricchite di neuroni e astrociti, o colture neurone-glia dalla corteccia embrionale, con alto rendimento e riproducibilità.

Un modello di coltura cellulare per studiare il ruolo delle interazioni Neuron-Glia in Ischemia

Lavori recenti scoprono l'impatto neuronale sulle cellule di glioma pediatrico di alto grado (pHGG) e le loro interazioni reciproche. Il presente lavoro mostra lo sviluppo di un modello in vitro che co-coltiva cellule pHGG e neuroni glutamatergici e registra le loro interazioni elettrofisiologiche per imitare tali interattività.

Co-coltura di neuroni glutamatergici e cellule di glioma pediatrico di alto grado in dispositivi microfluidici per valutare le interazioni elettriche

Questo protocollo descrive una co-coltura microglia-neuronale stabilita da cellule neuronali primarie isolate da embrioni di topo ai giorni embrionali 15-16 e microglia primaria generata dal cervello di topi neonatali nei giorni post-natali 1-2.

Generazione e co-coltura di microglia primarie murine e neuroni corticali

Questo protocollo descrive un sistema microfluidico che modella le dinamiche metaboliche neuronali post-danno assonale, consentendo l'imaging, l'analisi multi-omica e gli studi meccanicistici del rimodellamento metabolico intrinseco.

Chip microfluidico per la costruzione di modelli di lesioni assonali e l'abilitazione dell'analisi multi-omica

Scopri l'analisi delle interazioni neurone-glia con imaging ad alta risoluzione utilizzando una piattaforma microfluidica di co-cultura assone-astrocita. Questo metodo consente di studiare la segnalazione cellulare in modo controllato.

Analisi Imaging di Neuron Interaction Glia in Platform Cultura Microfluidic (MCP) a base di Axon neurone e glia co-cultura di sistema (Video) | JoVE Journal

Analisi Imaging di Neuron Interaction Glia in Platform Cultura Microfluidic (MCP) a base di Axon neurone e glia co-cultura di sistema

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