Name: Stress Test cardiaca indotta da dobutamina e monitorato da cateterizzazione cardiaca nei topi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 45 s
Description: Scopri il test da stress cardiaco indotto da dobutamina e monitorato mediante cateterizzazione cardiaca nei topi. Questo metodo permette di rivelare patologie cardiache subcliniche nei topi obesi.

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Ringraziamo il Dott. Helio Salgado, Renata Lataro e Mauro de Oliveira, Facoltà di Medicina di Ribeirão Preto, Università di San Paolo e il dottor Ben Janssen, Cardiovascular Research Institute di Maastricht, Università di Maastricht, per la generosa assistenza durante il processo di configurazione. Questo lavoro è stato sostenuto da FONDECYT concessione n ° 11090114 di DSC

Protocollo è stato approvato dal Comitato Etico di Medicina Clinica Alemana Facultad de-Universidad del Desarrollo. I. Preparazione infusione di dobutamina <ol><li> Sciogliere 10 mg di dobutamina in 20 ml di acqua distillata sterile, per ottenere una soluzione stock di 500 ug / ml dobutamina. Aliquotare e conservare a -20 ° C. Questa soluzione può essere utilizzata per almeno 3 mesi. </li><li> Scongelare una aliquota di soluzione di dobutamina a temperatura ambiente. </li><li> Diluire la soluzione stock in dobutamina sterile 0,9% NaCl, per ottenere dobutamina soluzione di lavoro, la cui concentrazione è calcolata utilizzando la formula: dobutamina (pg / ml) = peso corporeo x 0,2. </li><li> Riempire una siringa da 1 ml 29Gx1 / 2 &quot;con dobutamina soluzione di lavoro. </li><li> Inserire l&#39;ago della siringa in un cm 20 PE-10 tubo. </li><li> Regolare la siringa nella pompa per infusione seguendo le istruzioni del produttore. </li><li> Impostare la rampa di infusione in una fase-Al passaggio formato con un aumento di 10 microlitri / min per ogni passo, per 6 passaggi. </li></ol> II. Preparazione Sensore di pressione <ol><li> Per minimizzare la deriva del segnale, sensore di pressione immergere in acqua sterile a 37 ° C per almeno 15 min. Non bagnare il catetere più di 0,5 cm di profondità, per evitare che la pressione idrostatica colpisce il sensore di pressione. </li><li> Elettronicamente calibrare il sensore di pressione 25 e 100 mmHg. Elettrico di ingresso (Volt) viene convertito in segnale di pressione (mmHg). </li><li> Impostare la frequenza di campionamento di 2 k / s e usare il filtro passa basso con un cut-off a 100 Hz. Segnale di pressione impostato a zero mmHg. </li><li> Segna da 15 mm dalla punta del catetere. Distante per raggiungere il cuore dal punto di introduzione è stato stimato mediante ecocardiografia, rilevando la presenza del catetere nel ventricolo sinistro. </li></ol> III. Preparazione del mouse per il cateterismo <ol><li> Peso C57BL / 6 topi maschi, settimane di età 30-32. </li><li> Iniettare per via intraperitoneale 60 mg / kg di ketamina e 4 mg / kg xilazina 1. Nota: altri anestetici potrebbero essere utilizzati, ad esempio: 350-450 mg / kg avertin, 50 ug / kg pentobarbital o 1,5 - 2% 2-3 isoflurano. </li><li> Shave il collo con un rasoio elettrico. </li><li> Posizionare il mouse anestetizzato in posizione supina su una piastra riscaldata riscaldamento isotermico. Fissare le sue membra con nastro di carta. </li><li> Eseguire un pizzico punta per confermare sedazione completa. </li><li> Inserire delicatamente una sonda rettale per controllare la temperatura del corpo. Utilizzando la sonda vaselinized è raccomandato. </li><li> Se la temperatura del corpo diversa da 37 ° C ± 0,5 ° C, regolarlo mediante la piastra riscaldante. </li><li> Mettere muso mouse vicino l&#39;apporto di ossigeno. </li><li> Posizionare la regione del collo del mouse con lo stereomicroscopio. </li></ol> IV. Acquisizione dei dati <ol><li> Nel software 7 LabChartPro, selezionare un canale per la registrazione della pressione e un canale per la frequenza cardiaca (HR)registrazione. Per questi ultimi, selezionare l&#39;opzione &quot;Misurazioni cicliche&quot; e misura impostato come frequenza. </li><li> Per il canale di pressione impostano la scala: da 0 a 150 mmHg. </li><li> Per HR canale impostato Scala: da 200 a 600 bpm. </li><li> Premere il tasto di avvio per iniziare la registrazione. </li><li> Inserire i commenti che indicano le procedure eseguite, ad esempio: la somministrazione dell&#39;anestesia, l&#39;inizio della infusione di dobutamina, dobutamina concentrazione, la respirazione cambia. </li></ol> V. cateterismo cardiaco 4,5 <ol><li> Eseguire una piccola incisione sul lato destro vicino alla mascella. Con le forbici separare la pelle-muscolare del tessuto connettivo. </li><li> Eseguire una dissezione longitudinale (1,5 - 2 cm) sul lato destro della trachea. Separare il tessuto connettivo, grasso e muscolare con pinze curve, in modo da esporre la carotide destra vicino alla trachea. </li><li> Inserire un espansore nel lato destro animale per esporre la carotide. Pulsatilepressione generata dal cuore facilita l&#39;identificazione dell&#39;arteria. La vena giugulare, che è rosso scuro, è sulla destra. </li><li> Separare l&#39;arteria dai tessuti adiacenti con pinze curve. Il nervo vago, che assomiglia a un filo bianco, si trova lungo l&#39;arteria. </li><li> Tagliare un pezzo 20 cm 6/0 filo di seta e &quot;doppio&quot; di esso. </li><li> Passare il filo &quot;doppio&quot; sotto l&#39;arteria da sinistra a destra. Tagliare il filo, in modo da ottenere le estremità separate. </li><li> Passa un terzo filo (10 cm) sotto l&#39;arteria. </li><li> Un nodo stretto nel thread posizionato vicino alla testa, e uno sciolto nel filo più distale. </li><li> Fare un nodo sciolto nel thread mezzo, e fissare l&#39;estremità destra del filo centrale per il pad di riscaldamento con un nastro di carta. </li><li> Tenere carotide umido facendo cadere sterile 0,9% NaCl. Asciugare l&#39;eccesso di liquido con bastoncini di cotone. </li><li> Tendere il filo inferiore con una fascetta pinza emostatica. </li><li> Fissare la posizione della forbice hemostat da pinching la pelle dell&#39;addome, estende il filo superiore, per occludere il flusso sanguigno. Verificare che il tessuto connettivo intorno all&#39;arteria è stato rimosso. L&#39;arteria dovrebbe essere pieno di sangue e privo di pulsazioni. Impedire fili da produrre una forza di coppia sulla arteria. </li><li> Realizzare una sezione trasversale nick vicino al fondo della arteria con un micro-Vannas forbice. Gocce di sangue sarà versato. </li><li> Inserire il catetere nell&#39;arteria carotide. Assicurarsi di introdurre l&#39;intero sensore di pressione. Verificare che non vi è perdita di sangue. </li><li> Regolare delicatamente il nodo centrale filo, per mantenere il catetere in posizione. Non comprimere troppo, il sensore di pressione è molto fragile. </li><li> Rilasciare le forbici hemostat dall&#39;addome animale. </li><li> Tenere il catetere con la mano e spingere il filo centrale, al fine di evitare la perdita di sangue. Nota: arteria dovrebbe essere pieno di sangue. </li><li> Avviare segnali di pressione di registrazione. </li><li> Quando il catetere è all&#39;interno, lasegnale di pressione arteriosa oscilla 60-70 a 100-120 mmHg. La forma del segnale di pressione è mostrato nella Figura 1.A. Nota: se siete interessati a, a questo punto nel tempo è possibile registrare la pressione arteriosa se ​​il segnale è stabile per almeno 5 min. HR valori sono stati ottenuti dalle forme d&#39;onda di pressione considerando un intervallo di 30 secondi di segnale di registrazione. È possibile utilizzare anche un metodo ECG per la misura diretta di HR, in accordo con gli obiettivi di indagine. </li><li> Spingere delicatamente il catetere fino ad osservare una variazione della forma del segnale di pressione (Figura 1 B). Una volta che il catetere è all&#39;interno del ventricolo sinistro, il segnale di pressione oscilla da 0 a 100-120 mmHg. Se è difficile far scorrere il catetere, pizzicare petto animale con due dita. </li><li> Continuo controllo della frequenza respiratoria, temperatura corporea, livello di anestesia e segnale di pressione. Tutti loro dovrebbero rimanere stabili. </li></ol> VI. L&#39;infusione di Dobutamina <ol><li&gt; Per incannulazione della vena giugulare assicurarsi di staccare il tessuto adiposo intorno alla vena, per evitare la perforazione. La procedura chirurgica per occlusione venosa è simile al procedimento mostrato per carotide. </li><li> Introdurre un PE-10 tubo nella vena. Verificare che il flusso di sangue non è bloccato spostando all&#39;indietro lo stantuffo della siringa. </li><li> Infusione di dobutamina inizia con 10 microlitri / min e finire con 60 microlitri / min. In ogni passo, la velocità di infusione viene mantenuta per 2 min 6. </li><li> Dopo la dose di dobutamina ultimo, l&#39;eutanasia l&#39;animale con una overdose di anestesia. </li></ol> VII. Analisi dei dati <ol><li> Per l&#39;analisi dei dati, scegliere la sezione dei dati registrati di tuo interesse. Essere sicuri di prendere in considerazione un intervallo di tempo in cui il segnale di pressione è stabile. </li><li> Selezionare l&#39;icona di installazione nel modulo di pressione sanguigna. Indicare il tipo selezionato di segnale di pressione. </li><li> Automaticamente le 7 display software LabChartPro dire, massimavalori minimi e per HR, pressione sistolica (P max), la pressione diastolica (P min), pressione telediastolica (EDP), massimo sviluppo a pressione positiva (dP / dtmax) e la massima pressione negativa sviluppo (dP / dt min). Inoltre, i parametri cardiaci può essere raffigurato sulla traccia di pressione. </li></ol>

<ol><li>Hart, C. Y., Burnett, J. C., Redfield, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+avertin+versus+xylazine-ketamine+anesthesia+on+cardiac+function+in+normal+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of avertin versus xylazine-ketamine anesthesia on cardiac function in normal mice.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 281, H1938-H1945 (2001).</li>
<li>Janssen, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+anesthetics+on+systemic+hemodynamics+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of anesthetics on systemic hemodynamics in mice.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287, H1618-H1624 (2004).</li>
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<li>Lorenz, J. N., Robbins, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+intraventricular+pressure+and+cardiac+performance+in+the+intact+closed-chest+anesthetized+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Measurement of intraventricular pressure and cardiac performance in the intact closed-chest anesthetized mouse.</a> Am. J. Physiol. 272, H1137-H1146 (1997).</li>
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<li>Reddy, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+function+in+young+and+old+Little+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gerontol.+A.+Biol.+Sci.+Med.+Sci%22%5BJournal%5D)">Cardiac function in young and old Little mice.</a> J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 62, 1319-1325 (2007).</li>
<li>Christoffersen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+lipid+accumulation+associated+with+diastolic+dysfunction+in+obese+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Cardiac lipid accumulation associated with diastolic dysfunction in obese mice.</a> Endocrinology. 144, 3483-3490 (2003).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Stress test cardiaco indotto da dobutamina e monitorato da cateterismo cardiaco è laborioso. Tuttavia, secondo il protocollo qui descritto e con un breve tempo di formazione, è possibile valutare sei parametri emodinamici in un singolo esperimento che durano circa un&#39;ora. Le fasi critiche del protocollo qui presentati sono i cannulazioni di vasi sanguigni. Per quanto riguarda la cannulazione della carotide, l&#39;incisione effettuata deve essere sufficientemente profonda per rompere i tr...

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> Reagenti </td></tr><tr><td> PE-50/10 </td><td> Warner Instruments </td><td> 64-0752 </td><td></td></tr><tr><td> Filo di seta 6/0 HR17 </td><td> Tagum </td><td> SN0713K </td><td></td></tr><tr><td> Xylacin 20 mg / ml </td><td> Laboratorio Centrovet </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Ketamina 100 mg / ml </td><td> Trascina Pharma </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Cloruro di sodio 0,9% </td><td> Lab Sanderson SA </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Cloridrato Dobutamina </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D0676 </td><td></td></tr><tr><td> Siringa insulina U-100 29G x ½ &quot; </td><td> Terumo Medical Co. </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Pinze per dissezione Micro Style 11,5 cm 7 </td><td> LawtonMedizintechnik </td><td> 09-0959 </td><td></td></tr><tr><td> Graefe Pinze Cvd 0,7 millimetri 7 centimetri </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 62-0263 </td><td></td></tr><tr><td> Morsetti Dieffenbach bulldog Cl Str 38 millimetri </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 60-010 </td><td></td></tr><tr><td> Forbici Vannas 8 centimetri Str Fh </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 63-1400 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Attrezzatura </td></tr><tr><td> SPR-671 Mikro-Tip pressione catetere </td><td> Millar strumenti </td><td> 840-6719 </td><td></td></tr><tr><td> PCU-2000 Pressure Control Unit </td><td> Millar strumenti </td><td> 880-0129 </td><td></td></tr><tr><td> PowerLab 4/30 </td><td> ADinstruments Pty Ltd. </td><td> ML866 </td><td></td></tr><tr><td> LabChartPro 7 </td><td> ADinstruments Pty Ltd. </td><td> MLU260 / 7 </td><td></td></tr><tr><td> Legato200 pompa di infusione </td><td> KdScientific </td><td> KD-KDS210P </td><td></td></tr><tr><td> TCAT-2LV Regolatore di temperatura e la piastra di riscaldamento isotermico </td><td> PhysiTemp strumenti Inc. </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Dotazioni di ossigeno medica </td><td> Indura </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Sonda rettale </td><td> ADinstruments Pty Ltd. </td><td> MLT1404 </td><td></td></tr><tr><td> Microscopio trinoculare, illuminazione assiale </td><td> LW scientifico </td><td> Z2B-TRI-Etne, ILP-1502-LTS1, ILP-1502-DGGF </td><td></td></tr></tbody></table>

stress test cardiaca indotta da dobutamina e monitorato da cateterizzazione cardiaca nei topi

Cardiac Stress Test Induced by Dobutamine and Monitored by Cardiac Catheterization in Mice

Dobutamina è un β-adrenergico con un&#39;affinità maggiore per il recettore espresso nel cuore (β 1) rispetto ai recettori espressi nelle arterie (β 2). Quando somministrato per via sistemica, aumenta la domanda cardiaca. Così, dobutamina smaschera ritmo anormale o aree ischemiche potenzialmente a rischio di infarto. Monitoraggio della funzione cardiaca durante una prova da sforzo può essere eseguita sia ecocardiografia o cateterizzazione cardiaca. Quest&#39;ultima è una tecnica invasiva ma più accurate e informative che il primo. Test di stress cardiaco indotto da dobutamina e monitorato da cateterismo cardiaco realizzato come qui descritto consente, in un singolo esperimento, la misurazione dei seguenti parametri emodinamici: frequenza cardiaca (HR), la pressione sistolica, pressione diastolica, pressione telediastolica, massima pressione positiva sviluppo (dP / dtmax) e la massima stampa negativaure sviluppo (dP / dt min), in condizioni basali e in dosi crescenti di dobutamina. Come previsto, in topi normali, abbiamo osservato una dobutamina aumento dose-correlato in HR, dP / dt max e dP / dt min. Inoltre, alla massima dose testata (12 ng / g / min), lo scompenso cardiaco di alto contenuto di grassi topi obesi indotta dalla dieta è stato smascherato.

Il segnale di pressione arteriosa è definita da pressione sistolica e diastolica. Quando il sensore di pressione è all&#39;interno del ventricolo sinistro, la sua pressione (LVP) della forma d&#39;onda è caratterizzata da una caduta a zero della pressione diastolica e l&#39;aspetto della contrazione atriale sinistra prima contrazione ventricolare (Figura 1). In condizioni originarie, topi anestetizzati ketamina-xilazina normali aveva HR di 280 ± 24, P max di 107 ± 8, P min di 5 ± 1...

Descriviamo il protocollo di eseguire un test di stress cardiaco indotto da dobutamina e monitorato da cateterizzazione cardiaca in topi normali. Inoltre ci mostra la sua applicazione per smascherare subclinica cardiopatia in alto contenuto di grassi topi obesi indotta dalla dieta.

Stress Test cardiaca indotta da dobutamina e monitorato da cateterizzazione cardiaca nei topi

Dobutamine is a &beta;-adrenergic agonist with an affinity higher for receptor expressed in the heart (&beta;1) than for receptors expressed in the ...

Test da sforzo cardiaco indotto da dobutamina e monitorato mediante cateterismo cardiaco nei topi. In questo video, presenteremo una descrizione passo passo di un test da sforzo cardiaco indotto da dobutamina e monitorato mediante cateterismo cardiaco eseguito in topi normali. Mostreremo anche la sua applicazione per smascherare la malattia cardiaca subclinica in topi obesi indotti da una dieta ricca di grassi.Il topo anestetizzato viene posizionato su una piastra termoregolata. L'apporto di ossigeno viene somministrato attraverso un tubo di plastica e la temperatura corporea viene monitorata utilizzando una sonda rettale per il cateterismo cardiaco. In una procedura a torace chiuso, l'arteria carotide viene utilizzata in quanto l'accesso tramite il sensore di pressione nella punta del catetere è abbastanza sottile da entrare nell'arteria per misurare la pressione arteriosa.Il catetere viene introdotto di circa 10 millimetri. La forma d'onda della pressione arteriosa è simile a questa. Per misurare la pressione ventricolare, il catetere deve seguire la via rettilinea del reticolo endoplasmatico e passare attraverso la valvola aortica fino alla camera ventricolare.La forma dell'onda

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