Name: Un In vivo Test per la verifica della nave Permeabilità Sangue (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 3 s
Description: Scopri un saggio in vivo per valutare la permeabilità dei vasi sanguigni nei topi utilizzando un colorante blu che si lega all'albumina. Questo metodo permette di visualizzare la diffusione nel tessuto interstiziale e studiare l'integrità delle cellule endoteliali in condizioni patologiche.

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Questo lavoro è stato sostenuto da una sovvenzione da parte del National Institutes of Health, R01CA142928.

1. Iniezione endovenosa di Evans Blue in the Vein laterale coda di topo <ol><li> Preparare una soluzione allo 0,5% sterile di blu di Evans in PBS. Se necessario, filtro sterilizzare la soluzione per rimuovere particelle che non è dissolto. </li><li> Aspirare 200 ul Evans soluzione di blu in una siringa. Evitare tutte le bolle d&#39;aria che possano esser sfuggite nella siringa. </li><li> Luogo topi che sono 8-12 settimane di vita in un dispositivo di ritenuta in modo che l&#39;animale non è liberamente mobile, ma la coda può essere gestito. </li><li> Posizionare il dispositivo di ritenuta del mouse sul fianco con la vena caudale laterale è facilmente visibile e sono rivolti verso l&#39;alto. </li><li> Tenere su la coda con la mano non dominante tra il pollice e l&#39;indice. </li><li> Inserire l&#39;ago (calibro piccolo, 27-30) in un anticipo 10-15 gradi, smussata, nella vena caudale laterale verso la direzione della testa. Tenere il parallelepipedo ago e la siringa alla coda. </li><li> Do non si applica la contropressione per confermare il corretto posizionamento in quanto ciò potrebbe comprimere la vena. </li><li> Iniettare lentamente 200 microlitri soluzione Evans blu nella vena della coda del topo. </li><li> Osservare la facilità con cui gli anticipi stantuffo, poiché questa è la prova di corretto posizionamento dell&#39;ago nella vena. </li><li> Ponga il mouse di nuovo nella sua gabbia e osservare per 30 minuti. </li></ol> 2. Organo Raccolta ed estrazione di Evans Blue dagli organi <ol><li> Sacrifica i topi tramite dislocazione cervicale. Ai fini del test Miles dislocazione cervicale è raccomandato in quanto limita la grave interferenza con la permeabilità vascolare. Sacrificare tutti i topi al tempo stesso, il più velocemente possibile. Lavora con coorti di 6 topi o meno, perché poco dopo la morte i vasi sanguigni diventano più permeabili. </li><li> Mettere i topi sulla schiena e il pin i piedi su un bordo bianco. </li><li> Aprire la cavità addominale e toracica per esporre thororgani ACIC e addominale. </li><li> Scatta foto rappresentative per mostrare le differenze di stravaso Evans Blue. Includere tutti i topi nello stesso campo in modo da avere condizioni di luce identiche per tutti i mouse. </li><li> Raccogliere gli organi di interesse e metterli in provette da 1,5 ml </li><li> Pesare un tubo vuoto e portare il valore di bilancio a zero. </li><li> Trasferire il campione di tessuto e peso. Ripetere l&#39;operazione per tutti i campioni di tessuto. Tessuti può essere essiccato per eliminare la variabilità contenuto di acqua tra diversi organi. </li><li> . Aggiungere 500 microlitri formammide in ogni provetta campione di tessuto. </li><li> Trasferire tutte le provette in un bagno d&#39;acqua ° 55 C o di un blocco di calore. Incubare per 24-48 ore per estrarre i Blu di Evans dal tessuto. </li></ol> 3. Quantificazione di Evans Blue travasato nel tessuto interstiziale <ol><li> Centrifugare la formammide / Evans miscela blu per far sedimentare i frammenti di tessuto rimanenti. </li><li> Misurare l&#39;assorbanza a 610nm. Usare 500 microlitri Formammide come bianco. </li><li> Calcola ng Evans Blue stravaso per mg di tessuto. </li><li> Tracciare tutti i dati in un grafico. </li><li> Eseguire l&#39;analisi statistica per determinare differenze significative. </li></ol>

<ol><li>Beck, K. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inducible+NO+synthase%3A+role+in+cellular+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Biol%22%5BJournal%5D)">Inducible NO synthase: role in cellular signaling.</a> J. Exp. Biol. 202, 645-653 (1999).</li>
<li>Bertglia, S., Giusti, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+nitric+oxide+in+capillary+perfusion+and+oxygen+delivery+regulation+during+systemic+hypoxia%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Role of nitric oxide in capillary perfusion and oxygen delivery regulation during systemic hypoxia.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 288, H525-H531 (2005).</li>
<li>Miles, A. A., Miles, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+reactions+to+histamine%2C+histamine-liberator+and+leutaxine+in+the+skin+of+guinea+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol.+%28London%29%22%5BJournal%5D)">Vascular reactions to histamine, histamine-liberator and leutaxine in the skin of guinea pigs.</a> J. Physiol. (London). 118, 228-257 (1952).</li>
<li>Weis, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+permeability+in+cardiovascular+disease+and+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Hematol%22%5BJournal%5D)">Vascular permeability in cardiovascular disease and cancer.</a> Curr. Opin. Hematol. 15, 243-249 (2008).</li>
<li>Kumar, P., Shen, Q., Pivetii, C. D., Lee, E. S., We, M. H., Yuan, S. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+of+endothelial+hyperpermeability%3A+implications+in+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev.+Mol.+Med%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms of endothelial hyperpermeability: implications in inflammation.</a> Expert Rev. Mol. Med. 30, 11-19 (2009).</li>
<li>Viazzi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+permeability%2C+blood+pressure%2C+and+organ+damage+in+primary+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertens.+Res%22%5BJournal%5D)">Vascular permeability, blood pressure, and organ damage in primary hypertension.</a> Hypertens. Res. 31, 873-879 (2008).</li>
<li>Scheppke,, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+vascular+permeability+suppression+by+topical+application+of+a+novel+VEGFR2%2FSrc+kinase+inhibitor+in+mice+and+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Retinal vascular permeability suppression by topical application of a novel VEGFR2/Src kinase inhibitor in mice and rabbits.</a> J. Clin. Invest. 118, 2337-2346 (2008).</li>
<li>Blanchet, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+CD34+Leads+To+Exacerbated+Autoimmune+Arthritis+through+Increased+Vascular+Permeability%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Loss of CD34 Leads To Exacerbated Autoimmune Arthritis through Increased Vascular Permeability.</a> J. Immunol. 184, 1292-1299 (2010).</li>
<li>Dvorak, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mast+cell-derived+mediators+of+enhanced+microvascular+permeability%2C+vascular+permeability+factor%2Fvascular+endothelial+growth+factor%2C+histamine%2C+and+serotonin%2C+cause+leakage+of+macromolecules+through+a+new+endothelial+cell+permeability+organelle%2C+the+vesiculo-vacuolar+organelle%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Immunol.+Allergy%22%5BJournal%5D)">Mast cell-derived mediators of enhanced microvascular permeability, vascular permeability factor/vascular endothelial growth factor, histamine, and serotonin, cause leakage of macromolecules through a new endothelial cell permeability organelle, the vesiculo-vacuolar organelle.</a> Chem. Immunol. Allergy. 85, 185-204 (2005).</li>
<li>Le Guelte, A., Gavard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+endothelial+cell-cell+junctions+in+endothelial+permeability%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Role of endothelial cell-cell junctions in endothelial permeability.</a> Methods Mol. Biol. 763, 265-279 (2011).</li>
<li>Martins-Green, M., Petreaca, M., Yao, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+assay+system+for+in+vitro+detection+of+permeability+in+human+%22endothelium%22%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">An assay system for in vitro detection of permeability in human "endothelium".</a> Methods Enzymol. 443, 137-153 (2008).</li>
</ol>

Gli autori non hanno alcun conflitto o in competizione interessi finanziari.

Permeabilità vascolare è un indicatore fondamentale per lo stato dei vasi sanguigni. Aumento della permeabilità vascolare ha dimostrato di essere presente in numerose malattie sistemiche, compreso il diabete, ipertensione e malattie autoimmuni 6,7,8. Aumento della permeabilità vascolare ha dimostrato di essere mediata da shear stress, fattori di crescita come il fattore di crescita vascolare endoteliale e fattore di crescita dei fibroblasti, mediatori infiammatori quali serotonina, istamina e bradichinina <su...

Formazione e il mantenimento di barriere permeabili selettive sono essenziali per lo sviluppo di organi corretto e 1,2 prestazioni. Cellule endoteliali linea lume del vaso sanguigno e formano una barriera semipermeabile che è essenziale per il trasporto selettivo tra sangue e lo spazio interstiziale di tutti gli organi. Una barriera di permeabilità adeguata è mantenuta attraverso stretti cellula-cellula giunzioni che sono strettamente controllate da fattori di crescita, citochine e molecole correlate allo stress altri 3. Deterioramento della barriera endoteliale può causare aumentata permeabilità vascolare e perdite. Questi effetti sono visti in diversi stati patologici e la comprensione della segnalazione sottolineatura molecolare richiede metodi multidisciplinari 4,5. In questo articolo, si descrive un metodo in vivo per misurare la permeabilità nave che utilizza un modello di topo. Il saggio stiamo descrivendo, anche noto come saggio Miles, è una ben establmentata metodo per testare la permeabilità vascolare in vivo. Il saggio è basato sul fatto che, in condizioni fisiologiche basali, albumina non attraversa la barriera endoteliale. Evans blu, un colorante azoico con alta affinità per l&#39;albumina, viene iniettato nel flusso sanguigno di un animale sperimentale, e in condizioni fisiologiche, esso dovrebbe essere limitato entro vasi sanguigni. Quando uno stimolo permeabilità vascolare è aggiunto, sia a livello topico o per via sistemica, i vasi sanguigni iniziano a perdere proteine ​​e, quindi, anche il blu Evans che è legato all&#39;albumina. Ciò provoca una colorazione bluastra rapida dei tessuti che hanno vasi permeabili. Iniezione di successo del colorante nella vena laterale della coda del mouse è fondamentale per il buon esito dell&#39;esperimento. Vena tecnica Tail iniezione richiede pratica estesa e deve essere masterizzato prima di iniziare l&#39;esperimento. Permeabilità vasale è fortemente dipendente dall&#39;età e dal peso del l&#39;IMAL, così quando si confrontano diversi ceppi di topi è imperativo che i topi o dei soggetti di prova diversi da avere vicino date di nascita e peso identici. Altri fattori che influenzano la permeabilità della barriera endoteliale sono condizioni ambientali come temperatura, umidità, e molto importante, lo stress manipolazione del mouse. A causa del gran numero di fattori che possono influenzare l&#39;esito dell&#39;esperimento è sempre consigliabile che l&#39;esperimento viene ripetuto almeno tre volte e analisi statistica effettuata. Questo test può essere utilizzato o per confrontare permeabilità vasale di topi che sono stati geneticamente modificati, nonché topi con differenti background genetico. Permeabilità può essere valutata in presenza o assenza di uno stimolo, a seconda della funzione del gene che è modulato. Questo dosaggio può anche essere utilizzato o per testare l&#39;effetto di composti differenti permeabilità vasale.

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> REAGENTE </td></tr><tr><td> EVANS BLU </td><td> SIGMA </td><td> E2129 </td><td></td></tr><tr><td> FORMAMIDE </td><td> INVITROGEN </td><td> 15515-026 </td><td></td></tr><tr><td> PBS </td><td></td><td></td><td> Fosfato 0,2 M 1.5M NaCl pH 7,4 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> ATTREZZATURE </td></tr><tr><td> SPETTROFOTOMETRO </td><td> EPPENDORF </td><td> 952000006 </td><td></td></tr><tr><td> MOUSE dispositivo di sicurezza per </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 340012 </td><td></td></tr><tr><td> SIRINGA </td><td> BD </td><td> 309659 </td><td></td></tr><tr><td> AGHI </td><td> BD </td><td> 305106 </td><td> Il calibro dell&#39;ago dipende dalla taglia dell&#39;animale. </td></tr><tr><td> SALDO </td><td> DENVER STRUMENTO </td><td> TP-64 </td><td></td></tr></tbody></table>

un<em&gt; in vivo</em&gt; test per la verifica della nave permeabilità sangue

An in vivo Assay to Test Blood Vessel Permeability

Questo metodo si basa sulla iniezione endovenosa di Evans blu in topi come modello animale di prova. Blu di Evans è un colorante che si lega all&#39;albumina. In condizioni fisiologiche l&#39;endotelio è impermeabile all&#39;albumina, in modo da Evans blu resti albumina legata restrizioni all&#39;interno dei vasi sanguigni. In condizioni patologiche che promuovere un aumento della permeabilità delle cellule endoteliali vascolari parzialmente perdono i loro contatti stretti e l&#39;endotelio diventa permeabile alle proteine ​​di piccole dimensioni come l&#39;albumina. Questa condizione consente per lo stravaso di Blu di Evans nei tessuti. Un endotelio sano impedisce stravaso del colorante nei tessuti circostanti vascolarizzati. Organi con aumento della permeabilità mostrerà significativamente aumentata colorazione blu rispetto a organi con endotelio intatto. Il livello di permeabilità vascolare può essere valutata mediante semplice visualizzazione o misurazione quantitativa del colorante incorporato per milligrammo di tessuto di controllo contro animale sperimentale / tessuto. Due PoweRFUL aspetti di questo test è la sua semplicità e le caratteristiche quantitative. Evans blu colorante può essere estratto dai tessuti incubando una quantità specifica di tessuto in formammide. Evans Blue è massima assorbanza a 620 nm e minimo assorbimento è a 740 nm. Utilizzando una curva standard per Evans blu, misure di densità ottica può essere convertito in colorante milligrammo catturato per milligrammo di tessuto. Analisi statistica dovrebbe essere utilizzato per valutare le differenze significative nella permeabilità vascolare.

Abbiamo utilizzato un saggio di permeabilità in vivo per verificare perdite nave in topi 8-12 settimane di vita. Questo test è utile per confrontare la relativa permeabilità vascolare tra animali di diverso background genetico o in un singolo ceppo di topi sottoposti a trattamenti che colpiscono il sistema vascolare. I nostri risultati mostrano che un ceppo di topi geneticamente modificati che abbiamo creato nel nostro laboratorio ha un endotelio più permeabile rispetto ai topi wild-type. Questi cambia...

Stiamo presentando un<em&gt; In vivo</em&gt; Saggio per testare vaso sanguigno permeabilità. Questo saggio è basato sulla iniezione endovenosa di un colorante e la successiva visualizzazione della sua diffusione negli spazi interstiziali.

Un<em&gt; In vivo</em&gt; Test per la verifica della nave Permeabilità Sangue

This method is based on the intravenous injection of Evans Blue in mice as the test animal model. Evans blue is a dye that binds albumin. Under ...

Questo video presenta un saggio in vivo per testare la permeabilità dei vasi sanguigni. Nei topi, le cellule endoteliali rivestono i vasi sanguigni e formano una barriera semipermeabile. In condizioni fisiologiche, l'endotelio è impermeabile alla maggior parte delle proteine, che rimangono così confinate al flusso sanguigno.In condizioni patologiche che favoriscono un aumento della permeabilità vascolare, le cellule endoteliali perdono parzialmente i contatti reciproci. L'endotelio diventa permeabile a piccole proteine come l'albumina. In questo saggio, viene iniettato per via endovenosa un colorante blu che si lega all'albumina in condizioni di aumentata permeabilità endoteliale.La D attraversa la barriera endoteliale e si diffonde nello spazio interstiziale. Ciò provoca infine una colorazione bluastra del tessuto interessato prima dell'inizio dell'esperimento. Preparare tutti i materiali necessari, nonché pipette e punte sterili.Blu di Evans, spatola sterile, PBS sterile, siringa sterile e aghi. Topi, dispositivo di contenimento per topi, strumenti di dissezione, tavola per dissezione e spilli. Bilancia analitica, blocco riscaldante per bagno d'acqua a 55 gradi Celsius.Pesare la

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Saggio di transcitosi delle cellule endoteliali come modello in vitro per valutare la permeabilità della barriera emato-retinica interna

Nel presente protocollo, la funzione di barriera endoteliale della ghiandola sottomandibolare (SMG) è stata valutata iniettando diversi traccianti fluorescenti pesati molecolari nelle vene angolari di modelli animali in vivo sotto un microscopio a scansione laser a due fotoni.

In vivo Rilevamento della permeabilità vascolare nella ghiandola sottomandibolare del topo

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