Name: Isolamento e analisi di Brain-sequestrati da leucociti Plasmodium berghei ANKA topi infettati (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-02T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 48 s
Description: Scopri come isolare leucociti infiammatori aderenti dai vasi cerebrali di topi infettati con Plasmodium berghei ANKA. Questo metodo consente la quantificazione e la caratterizzazione fenotipica mediante citometria a flusso.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Gli autori desiderano ringraziare la signorina Liana Mackiewicz per l&#39;assistenza tecnica. Questo lavoro è stato reso possibile grazie vittoriana sostegno governativo Infrastrutture Stato operativo e del governo australiano National Health and Medical Research Council IRIISS e Progetto di sovvenzione 1.031.212.

1. L&#39;infezione di topi con P. berghei-ANKA <ol><li> Sbrinamento un&#39;aliquota di crioconservati P. berghei ANKA PRBC. </li><li> Trattenere una malaria cerebrale resistente topo BALB / c donatore (8-12 settimane di età) con la tecnica a due mani di ritenuta. Iniettare il mouse con 100-200 ml di PRBC utilizzando un insulina siringa da 1 ml (28G ago). Di routine, 1-2 topi donatori vengono iniettati. </li><li> In 4-5 giorni post-infezione (pi) rimuovere topo donatore da gabbia e collocarla su una workstation o un tampone monouso di lavoro. </li><li> Delicatamente frenare il mouse alla fine della coda e con le forbici piccole tagliare la punta della coda (circa 1 mm). In alternativa, una foratura piccola coda usando un ago 25 G può essere eseguita. </li><li> Una goccia di sangue dalla vena della coda del topo in prossimità della fine di un frosted-end vetrino da microscopio. </li><li> Posizionare una seconda slitta (spreader) su un angolo di 45 ° e sostenerlo nella goccia di sangue. Una volta che il sangue si estende lungo il bordo, premere il divaricatore-slide vigiliaolo attraverso il vetrino da microscopio per rendere la striscio di sangue. Lasciare lo striscio asciugare all&#39;aria. </li><li> Fissare strisci di sangue in metanolo 100% per 30 sec e poi colorare i vetrini in Giemsa appena preparato per 10 min. </li><li> Sciacquare striscio di sangue con acqua corrente per 1 minuto, permette di asciugare vetrino ed esaminare al microscopio (100x, immersione in olio). Enumerare PRBC nel 1000 eritrociti e calcolare parassitemia per cento. Topi donatori dovrebbero raggiungere livelli parassitemia tra il 2,5-5% prima di poter essere sanguinato per infezione di animali da laboratorio. </li><li> Raccogliere il sangue dal topo donatore da retro-orbitale sanguinamento usando un micro-ematocrito eparinizzata tubo capillare. Tutti gli esperimenti sono eseguiti in conformità con la Sala Walter &amp; Eliza Istituto animali previste dal Comitato Etico. A seconda delle esigenze locali animali Ethic Comitatologia sanguinamento altre potrebbero essere utilizzate. Sciogliere quantità di sangue in mezzo RPMI ad una concentrazione finale di 1x10 6 pRBC/0.2 ml. Si consideri cheun ematocrito normale mouse è ~ 6x10 9 cellule rosse del sangue / 1 ml. </li><li> Infect C57BL sperimentale / 6 topi (8-12 settimane) iniettando per via intraperitoneale (ip) 1x10 6 pRBC/0.2 ml. </li><li> Per monitorare i livelli di parassitemia di topi infettati seguire i passaggi 1,3-1,8. Parassitemia deve essere determinato ogni 2-3 giorni a partire dal giorno 2 o 3 pi </li><li> Insorgenza di malaria grave in C57BL / 6 topi potrebbe manifestarsi come aspetto ingobbito, ruffed pelliccia e bassa attività. Alcuni topi possono recuperare in questa fase, ma la progressione della perdita di auto-raddrizzante riflesso indica malattia irreversibile e gli animali devono essere sottoposti a eutanasia. </li></ol> 2. Perfusione Intracardial di topi e di estrazione del cervello <ol><li> Assemblare un sistema manuale di perfusione gravità assicurando un serbatoio di 500 ml di una colonna di supporto fissato alla parte superiore di una colonna di supporto 60 cm. Collegare tubo di plastica per l&#39;estremità inferiore del serbatoio e fissare un morsetto del tubo per controllare il flusso del buffer. Collegare il tubo di un ago 23 G. Fill il serbatoio con PBS (mantenuto a 22 ° C), aprire la fascetta e permettono di eseguire tampone attraverso il tubo per rimuovere tutte le bolle d&#39;aria. </li><li> Eutanasia P. berghei ANKA-infetto mouse CO 2 inalazione. Confermare la morte per mancanza di pedale, orbitale e le risposte respiratorie. </li><li> Pin del mouse eutanasia dalle zampe posteriori e anteriori dorsalmente su una tavola di dissezione di polistirolo contenute in un vassoio di plastica. A seconda del locale Comitato di Etica degli animali anestesia requisiti possono essere somministrati prima di inizio pefusion intracardial. </li><li> Pulire lato ventrale con il 70% di etanolo. </li><li> Usare le forbici grandi e pinze per aprire la pelle lungo la linea mediana per esporre la cavità toracica. Piegare la pelle e il pin ai lati. </li><li> Tenere sterno con pinza sottile e tagliare il diaframma e lungo i due lati dello sterno tranciamento delle costole. Fare attenzione a non danneggiare i grandi vasi sanguigni. </li><li> Pin la gabbia toracica dalla sterno liberamente accanto alla testa. </li><li> Tenere spirito ventricolih pinza sottile e accuratamente incise atrio destro con le forbici sottili. </li><li> Inserire l&#39;ago 23G collegato al sistema di perfusione gravità in ventricolo sinistro verso l&#39;aorta ascendente, mentre è in esecuzione PBS. Inserire solo 0,5 cm dalla punta dell&#39;ago. </li><li> Perfusione del mouse per 5 minuti o fino a quando effluenti è chiara. </li><li> Sblocca il mouse e lo posi sul suo addome. Pulire la testa con il 70% di etanolo. </li><li> Utilizzando le forbici grandi, fare un taglio appena sopra la zona cervicale del midollo spinale. </li><li> Utilizzare le forbici pregiati per fare una mediana caudale-rostrale taglio a partire dalla base del cranio e la pelle a buccia per scoprire l&#39;cranio. </li><li> Tenendo la testa, posizionare le lame di una forbice piccole in ciascuna cavità orbitale ed effettuare un taglio tra le orbite. </li><li> Praticare un taglio longitudinale lungo la sutura sagittale e con attenzione buccia il teschio su ogni emisfero del cervello verso l&#39;esterno. </li><li> Con una spatola, sollevare delicatamente il cervello e metterlo in una provetta da centrifuga da 10 ml contenente mezzo RPMI. </li></ol>3. Isolamento di Brain-sequestrati leucociti (BSL) <ol><li> Lavorare in una cappa di sicurezza, posto appena prelevato cervello sopra un filtro in acciaio inossidabile cella (40-60 maglia) in una piastra Petri contenente 3-5 ml di mezzo di coltura RPMI tessuto. </li><li> Tagliare il tessuto cerebrale in piccoli pezzi. </li><li> Spingere piccoli pezzi di tessuto cerebrale attraverso il filtro cella utilizzando uno stantuffo cristallo. </li><li> Trasferire omogenato cerebrale in una provetta da 10 ml e centrifugare a 250 xg per 10 min a 4 ° C. </li><li> Sciogliere pellet in 3 ml di mezzo RPMI, contenente 0,05% Collagenase D e 2U/ml DNAsi I. </li><li> Ruotare miscela per 30 min a temperatura ambiente. Rimuovere i detriti cellulari spingendo la miscela attraverso un filtro 70 micron cella nylon e / o mediante incubazione in ghiaccio per 5 min. </li><li> Lay omogenato cerebrale su un cuscino 7 ml di Percoll 30% e centrifugare a 400 xg (senza freni) per 20 min a temperatura ambiente. </li><li> Risospendere il pellet in 1 ml di tampone di lisi cellulare rosso sangue e incubare in ghiaccio per 5 min alisare PRBC aderente, che non può essere rimosso dal cervello mediante perfusione intracardial. </li><li> Aggiungere 9 ml di terreno RPMI, lavare le cellule e centrifugare a 250 xg per 10 min a 4 ° C. </li><li> Risospendere BSL contenenti pellet in 50-100 ml di mezzo RPMI e trasferire le cellule su un tubo Eppendorf. </li><li> Diluire un&#39;aliquota 5-10 microlitri del campione cellulare 1:2 in Trypan blu per l&#39;identificazione di cellule vitali. </li><li> Contare le cellule vitali al microscopio utilizzando un emocitometro. Dal giorno 6 in poi, quando pi P. berghei ANKA topi infettati mostrare segni neurologici, 20,000-100,000 BSLs possono essere recuperati. </li></ol> 4. Tipizzazione di BSL di Citometria a Flusso Multicolor <ol><li> Centrifugare le cellule a 250 xg per 10 min a 4 ° C, aspirare il surnatante e risospendere pellet in 50 pl di tampone colorazione (PBS, 1% di siero fetale bovino (FCS), 2 mM EDTA). </li><li> Aggiungere il 1 ml di anticorpo purificato anti-CD16/32 (Fcblock). </li><li> Incubare le cellule per 10 min in ghiaccio. </li><li> Lavare le cellule con 1 ml di tampone di colorazione. Centrifugare le cellule a 250 xg per 10 min a 4 ° C e aspirare il surnatante. </li><li> Risospendere le cellule in 50 pl di tampone contenente colorazione diluizioni ottimali predeterminate di richieste anticorpi fluorescenti, ovvero anti-CD4, anti-CD8, anti-TCR e anti-NK1.1. </li><li> Incubare per 1 ora su ghiaccio. </li><li> Lavare le cellule con 1 ml di tampone di colorazione. Centrifugare le cellule a 250 xg per 10 min a 4 ° C e aspirare il surnatante. </li><li> Risospendere le cellule in 100 microlitri di PBS. </li><li> Trasferire le cellule a un tubo di plastica di citometria a flusso. </li><li> Utilizzando un citofluorimetro, acquisire almeno 5.000-10.000 eventi. Adeguati controlli e campioni di cellule non marcate con fluorocromi di compensazione dovrebbe essere incluso come richiesto. </li><li> Analizzare i risultati utilizzando il software appropriato citometria a flusso. </li></ol>

<ol><li>Brian de Souza, J., Riley, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebral+malaria%3A+the+contribution+of+studies+in+animal+models+to+our+understanding+of+immunopathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Microbes+and+Infection%22%5BJournal%5D)">Cerebral malaria: the contribution of studies in animal models to our understanding of immunopathogenesis.</a> Microbes and Infection. 4, 291-300 (2002).</li>
<li>Schofield, L., Grau, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunological+processes+in+malaria+pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Immunological processes in malaria pathogenesis.</a> Nature. 5, 722-735 (2005).</li>
<li>Miller, L. H., Baruch, D. I., Marsh, K., Doumbo, O. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathogenic+basis+of+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The pathogenic basis of malaria.</a> Nature. 415, 673-679 (2002).</li>
<li>Howe, C. L., Lafrance-Corey, R. G., Sundsbak, R. S., Lafrance, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+monocytes+damage+the+hippocampus+during+acute+picornavirus+infection+of+the+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+neuroinflammation%22%5BJournal%5D)">Inflammatory monocytes damage the hippocampus during acute picornavirus infection of the brain.</a> Journal of neuroinflammation. 9, 50(2012).</li>
<li>LaFrance-Corey, R. G., Howe, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+Brain-infiltrating+Leukocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Isolation of Brain-infiltrating Leukocytes.</a> J. Vis. Exp. (52), e2747(2011).</li>
<li>Lim, S. M., Koraka, P., Osterhaus, A. D., Martina, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((West+Nile+virus%3A+immunity+and+pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Viruses%22%5BJournal%5D)">West Nile virus: immunity and pathogenesis.</a> Viruses. 3, 811-828 (2011).</li>
<li>Belnoue, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+pathogenic+role+of+brain-sequestered+alphabeta+CD8%2B+T+cells+in+experimental+cerebral+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">On the pathogenic role of brain-sequestered alphabeta CD8+ T cells in experimental cerebral malaria.</a> Journal of Immunology. 169, 6369-6375 (2002).</li>
<li>Campanella, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemokine+receptor+CXCR3+and+its+ligands+CXCL9+and+CXCL10+are+required+for+the+development+of+murine+cerebral+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Science+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Chemokine receptor CXCR3 and its ligands CXCL9 and CXCL10 are required for the development of murine cerebral malaria.</a> Proceedings of the National Academy of Science U S A. 105, 4814-4819 (2008).</li>
<li>Hansen, D. S., Bernard, N. J., Nie, C. Q., Schofield, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NK+cells+stimulate+recruitment+of+CXCR3%2B+T+cells+to+the+brain+during+Plasmodium+berghei-mediated+cerebral+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">NK cells stimulate recruitment of CXCR3+ T cells to the brain during Plasmodium berghei-mediated cerebral malaria.</a> Journal of Immunology. 178, 5779-5788 (2007).</li>
<li>Amante, F. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+role+for+natural+regulatory+T+cells+in+the+pathogenesis+of+experimental+cerebral+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+journal+of+pathology%22%5BJournal%5D)">A role for natural regulatory T cells in the pathogenesis of experimental cerebral malaria.</a> The American journal of pathology. 171, 548-559 (2007).</li>
<li>Nie, C. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IP-10-mediated+T+cell+homing+promotes+cerebral+inflammation+over+splenic+immunity+to+malaria+infection%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+pathogens%22%5BJournal%5D)">IP-10-mediated T cell homing promotes cerebral inflammation over splenic immunity to malaria infection.</a> PLoS pathogens. 5, e1000369(2009).</li>
<li>Franke-Fayard, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+malaria+parasite+sequestration%3A+CD36+is+the+major+receptor%2C+but+cerebral+pathology+is+unlinked+to+sequestration%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Science+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Murine malaria parasite sequestration: CD36 is the major receptor, but cerebral pathology is unlinked to sequestration.</a> Proceedings of the National Academy of Science U S A. 102, 11468-11473 (2005).</li>
<li>Nitcheu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perforin-dependent+brain-infiltrating+cytotoxic+CD8%2B+T+lymphocytes+mediate+experimental+cerebral+malaria+pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunololgy%22%5BJournal%5D)">Perforin-dependent brain-infiltrating cytotoxic CD8+ T lymphocytes mediate experimental cerebral malaria pathogenesis.</a> Journal of Immunololgy. 170, 2221-2228 (2003).</li>
<li>Lundie, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood-stage+Plasmodium+infection+induces+CD8%2B+T+lymphocytes+to+parasite-expressed+antigens%2C+largely+regulated+by+CD8alpha%2B+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceeding+of+the+National+Academy+of+Science+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Blood-stage Plasmodium infection induces CD8+ T lymphocytes to parasite-expressed antigens, largely regulated by CD8alpha+ dendritic cells.</a> Proceeding of the National Academy of Science U S A. 105, 14509-14514 (2008).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

L&#39;isolamento e l&#39;analisi di BSL è un metodo che permette la caratterizzazione e la quantificazione delle cellule infiammatorie migrazione al cervello in risposta al danno tissutale o infezione in modelli murini sperimentali. L&#39;introduzione di una fase di perfusione intracardial per la rimozione del comparto sangue prima dell&#39;estrazione organi e isolamento cellulare successiva è utile per prevenire la contaminazione di cellule infiammatorie con leucociti circolanti non-infiammatorie. Questo potrebbe non e...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti (opzionale) </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Soluzioni e tamponi </td></tr><tr><td> Giemsa azur eosina blu metilene soluzione </td><td> Merck Millipore </td><td> 1.09204.0500 </td><td> Diluizione 1:10 in acqua distillata </td></tr><tr><td> RPMI media </td><td></td><td></td><td> Mouse tonicità </td></tr><tr><td> Mouse tonicità PBS </td><td></td><td></td><td> 20 mM fosfato di sodio, 0,149 NaCl, pH 7,3 </td></tr><tr><td> 0,4% Trypan Blue </td><td> Sigma Aldrich </td><td> T-8154 </td><td> 1:2 </td></tr><tr><td> Collagenasi D </td><td> Biochimica Worthington </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Deoxyribonuclease (DNAsi) I </td><td> Sigma Aldrich </td><td> D4263-5VL </td><td> Da pancreas bovino </td></tr><tr><td> Percoll </td><td> GE Healthcare </td><td> 17-0891-01 </td><td> Soluzione al 30% in PBS </td></tr><tr><td> Ultrapura Tris </td><td> Invitrogen </td><td> 15505-020 </td><td></td></tr><tr><td> Cloruro di ammonio (NH 4 Cl) </td><td> AnalaR </td><td> 10017 </td><td></td></tr><tr><td> Red Cell Lysis Buffer </td><td></td><td></td><td> 17 mM Tris, 14nM NH 4 Cl, pH 7,2 </td></tr><tr><td> FCS </td><td> Gibco </td><td> 1009 </td><td></td></tr><tr><td> EDTA sale disodico </td><td> Merck </td><td> 10093.5V </td><td> 0,1 M, pH 7,2 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Anticorpi e coniugati </td></tr><tr><td> Anti-mouse CD16/CD32 (Fc Block), clone 2.4G2 </td><td> BD Pharmingen </td> &lt;td&gt; 553142 </td><td> 1 ml in 50 microlitri tampone di colorazione (0.5mg/50 ml) </td></tr><tr><td> FITC-anti-topo CD4, clone H129.19 </td><td> BD Pharmingen </td><td> 553651 </td><td></td></tr><tr><td> PE-anti-topo NK1.1, clone PK136 </td><td> BD Pharmingen </td><td> 553165 </td><td></td></tr><tr><td> PerCPCy5.5-anti-topo CD8, clone 53-6-7 </td><td> BD Pharmingen </td><td> 551162 </td><td></td></tr><tr><td> APC-anti-topo TCR-β, clone H57-597 </td><td> BD Pharmingen </td><td> 553174 </td><td></td></tr><tr><td> PE-anti-topo CXCR3, clone 220803 </td><td> R &amp; D Systems </td><td> FAB1685P </td><td></td></tr><tr><td> Biotinilato anti-topo-CCR5, clone C34-3448 </td><td> BD Pharmingen </td><td> 559922 </td><td></td></tr><tr><td> Steptavidin-PerCP-Cy5.5 </td><td> BD Pharmingen </td><td> 551419 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Attrezzature e materiali </td></tr><tr><td> SuperFrost vetrino da microscopio </td><td> Lomb Menzel-Glaser </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Pinze, forbici dissezione </td><td> REDA Instrumente </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 500 ml PBS serbatoio </td><td> Nalgene </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Tubi in gomma vulcanizzata </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Ago 23G </td><td> BD PrecisionGlide </td><td> 302008 </td><td></td></tr><tr><td> Cella dissociazione kit contenenti metalli setaccio </td><td> Sigma Aldrich </td><td> CD-1 </td><td></td></tr><tr><td> 70 micron nylon filtro cella </td><td> BD Falcon </td><td> 352350 </td><td></td></tr><tr><td> Emocitometro </td><td> Neubauer GmbH </td><td> 717810 </td><td></td></tr><tr><td> Citometria a Flusso tubi </td><td> BD Falcon </td><td> 352008 </td><td></td></tr></tbody></table>

isolamento e analisi di brain-sequestrati da leucociti<em&gt; plasmodium berghei</em&gt; anka topi infettati

Isolation and Analysis of Brain-sequestered Leukocytes from Plasmodium berghei ANKA-infected Mice

Si descrive un metodo per l&#39;isolamento e la caratterizzazione di cellule infiammatorie aderenti da vasi sanguigni cerebrali di P. berghei ANKA topi infettati. L&#39;infezione di ceppi sensibili del mouse con questo risultati di deformazione parassita nella induzione di sperimentale malaria cerebrale, una sindrome neurologica che riassume alcuni aspetti importanti del Plasmodium falciparum mediata da malaria grave in 1,2 esseri umani. Forme mature di sangue stadi malaria esprimere proteine ​​parassite sulla superficie del eritrociti infetti, che consente loro di legarsi a cellule endoteliali vascolari. Questo processo induce ostruzioni del flusso sanguigno, causando ipossia e 3 emorragie e stimola anche il reclutamento di leucociti infiammatori al sito di sequestro parassita. A differenza di altre infezioni, ad esempio virus neutrotopic 4-6, sia la malaria-parassitati globuli rossi (PRBC), così come associati inflammleucociti stre rimangono sequestrati all&#39;interno dei vasi sanguigni e non infiltrante il parenchima cerebrale. Perciò, per evitare la contaminazione di leucociti sequestrati con cellule circolanti non-infiammatorie, ampia perfusione intracardial di topi infetti-prima dell&#39;estrazione di organi e lavorazione dei tessuti è necessario in questa procedura per rimuovere il comparto sangue. Dopo la perfusione, i cervelli vengono raccolte e sezionati in piccoli pezzi. La struttura del tessuto è ulteriormente disturbato da trattamento enzimatico con collagenasi D e DNAsi I. L&#39;omogenato cerebrale risultante viene poi centrifugato su un gradiente di Percoll che permette la separazione dei cervelli sequestrati leucociti (BSL) mielina e detriti da altri tessuti. Cellule isolate vengono quindi lavate, contati utilizzando un emocitometro e colorate con anticorpi fluorescenti per la successiva analisi mediante citometria a flusso. Questa procedura consente una completa caratterizzazione fenotipica dei leucociti infiammatori migrazione al cervello in response a vari stimoli, compreso il colpo così come le infezioni virali o parassitarie. Il metodo prevede anche un utile strumento per la valutazione di nuovi trattamenti antinfiammatori in pre-clinici modelli animali.

I risultati in Fig. 2 percentuali di spettacoli e di numeri assoluti delle diverse popolazioni BSL recuperati da cervelli di perfusi o unperfused topi di controllo della malaria-infettati e ingenuo. Isolato BSL sono state colorate con PE-anti-NK1.1 e APC-anti-TCR β-anticorpi, come indicato nel testo del protocollo. In linea con i risultati precedenti 7-9, αβTCR + cellule T comprende una percentuale elevata della piscina BSL nel cervello di perfusi malaria topi infettati (giorno 6 pi). Questa popola...

Un metodo per l&#39;isolamento di aderenti leucociti infiammatori dai vasi sanguigni cerebrali dei<em&gt; Plasmodium berghei</em&gt; ANKA topi infettati è descritto. Il metodo consente la quantificazione e caratterizzazione fenotipica di leucociti isolati dopo colorazione con anticorpi fluorescenti e successiva analisi mediante citometria a flusso.

Isolamento e analisi di Brain-sequestrati da leucociti<em&gt; Plasmodium berghei</em&gt; ANKA topi infettati

We describe a method for isolation and  characterization of adherent inflammatory cells from brain blood vessels of P. berghei ANKA-infected mice. ...

L'obiettivo generale di questa procedura è isolare i leucociti infiammatori aderenti dai vasi sanguigni cerebrali di topi infetti da plasmodium burge eye anca per indurre la malaria cerebrale sperimentale. I topi sono infettati con plasmodium berge eye anca parassitato globuli rossi mediante iniezione. Dopo che i topi iniziano a mostrare segni di malattia, le cellule circolanti dei topi infetti da malaria vengono rimosse mediante perfusione intraorale.Il cervello viene quindi raccolto e il tessuto viene digerito con enzimi per consentire l'isolamento dei leucociti infiammatori. La citometria a flusso multicolore viene quindi eseguita per l'immunofenotipo. L'analisi dei leucociti sequestrati al cervello dei dati risultanti rivela la percentuale e il numero assoluto di leucociti che migrano verso il cervello dei topi infetti da malaria.Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo della patogenesi della malaria, come ad esempio quale tipo di cellule infiammatorie migrano verso il sito di sequestro del parassita nel cervello di animali infetti in diverse condizioni sperimentali. La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale. Le fasi di perfusione sono dif

isolation-analysis-brain-sequestered-leukocytes-from-plasmodium

Research

Ricerca

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia e Infezioni

Microscopia intravitale di seguire gli eventi emodinamici infiammatori e temporale e spaziale del microcircolo piale.

Microscopia intravitale della microcircolazione cervello di topo usando una finestra chiusa del cranio

Un metodo rapido per ottenere leucociti infiltrati dal cervello murino è descritto. Questo metodo utilizza una pendenza costante Percoll e gradiente discontinuo di Ficoll selezionare e purificare i leucociti arricchito strato. Leucociti isolati può quindi essere caratterizzata da misure di citometria a flusso.

Isolamento di Brain-infiltrazione Leucociti

Questo video dimostra la generazione di un modello murino sperimentale di malaria cerebrale. Gli sporozoiti isolati da zanzare femmine infette da Plasmodium berghei vengono iniettati nelle vene della coda di un topo trattenuto, causando l'interruzione della barriera emato-encefalica e l'infiammazione cerebrale, causando la malaria cerebrale. Questo modello murino infetto offre uno strumento prezioso per studiare in vivo la patologia microvascolare associata alla malaria cerebrale.

Generazione di un modello murino di malaria cerebrale sperimentale utilizzando sporozoiti derivati da zanzare ospiti

Questo video mostra un test per l'immunizzazione di un modello murino con sporozoiti vivi attenuati. Gli sporozoiti di Plasmodium attenuati dalle radiazioni vengono iniettati nel lato dorsale dell'orecchio del topo. Dopo le iniezioni in più punti su entrambe le orecchie, il topo può riprendersi.

Immunizzazione intradermica con sporozoiti vivi attenuati in un modello murino

Gli invade parassita della malaria e replicati all'interno delle cellule rosse del sangue. La valutazione accurata di invasione merozoite e parassitemia è quindi fondamentale per la valutazione nel corso di infezione malarica. Qui si descrive un protocollo basato citometria a flusso per la misurazione di questi parametri in un modello murino di malaria.

In Vivo Valutazione del roditore Plasmodium parassitemia e merozoite Invasion di Citometria a flusso

Descriviamo qui un protocollo per isolare le cellule mieloidi dalla pelle di topo e drenare i linfonodi dopo l'iniezione intradermica di sporozoiti di Plasmodium. La citometria a flusso delle cellule raccolte fornisce un test affidabile per caratterizzare la risposta infiammatoria della pelle e drenante dei linfonodi al parassita.

Mieloide isolamento delle cellule da topo pelle e drenante linfonodi seguito intradermica immunizzazione con vivo attenuato<em&gt; Plasmodium</em&gt; sporozoiti

Descriviamo un modello murino di malaria cerebrale sperimentale e mostriamo come la patologia infiammatoria e microvascolare possa essere monitorata in vivo utilizzando la risonanza magnetica.

Tracciamento in vivo di sviluppo dell&#39;edema e patologia microvascolare in un modello di malaria cerebrale sperimentale mediante l&#39;utilizzo di immagini a risonanza magnetica

A causa delle sorprendenti somiglianze del ciclo di vita e della biologia dei parassiti della malaria dei roditori con i parassiti della malaria umana, i modelli di malaria dei roditori sono diventati indispensabili per la ricerca sulla malaria. Qui, abbiamo standardizzato alcune delle tecniche più importanti utilizzate nell'analisi fenotipica di specie di malaria roditore selvatico e transgenico.

Phenotypic Analisi del roditore Malaria Parassita Sessuale e Sessuale Fasi Sangue e Mosquito Fasi

L'obiettivo generale di questo protocollo è quello di istruire come estrarre, mantenere e dissociare le cellule di astrocite e microglia dal sistema nervoso centrale, seguite da infezione da parassiti protozoi.

Isolamento concomitante di astrociti primari e microglia per l'infezione da parassiti di Protozoi

Ad oggi, i protocolli per l'isolamento simultaneo di tutti i principali tipi di cellule residenti nel sistema nervoso centrale dallo stesso topo sono una richiesta insoddisfatta. Il protocollo mostra una procedura applicabile nei topi con encefalomielite autoimmune naïve e sperimentale per studiare reti cellulari complesse durante la neuroinfiammazione e contemporaneamente ridurre il numero di topi richiesti.

Isolamento simultaneo dei principali tipi di cellule residenti nel sistema nervoso centrale da topi adulti con encefalomielite autoimmune

Lo sviluppo sessuale del Plasmodium avviene nell'intestino medio della zanzara. Prendere di mira le fasi sessuali del parassita è una strategia promettente per bloccare la trasmissione. Abbiamo sviluppato Ookluc, un P. berghei transgenico che esprime nanoluciferasi dopo la formazione dello zigote, consentendo lo screening ad alto rendimento di composti che bloccano la trasmissione. Questo articolo descrive in dettaglio i metodi per lo screening utilizzando Ookluc.

Ookluc: una linea di Plasmodium berghei per l'identificazione di composti che bloccano la trasmissione

Scopri come isolare leucociti infiammatori aderenti dai vasi cerebrali di topi infettati con Plasmodium berghei ANKA. Questo metodo consente la quantificazione e la caratterizzazione fenotipica mediante citometria a flusso.

Isolamento e analisi di Brain-sequestrati da leucociti

Esplora altri video