Name: Elettroporazione del romboencefalo tracciare traiettorie assonale e Obiettivi Synaptic in embrione di pollo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 4 s
Description: Impara a tracciare le traiettorie assonali e i target sinaptici nel romboencefalo dell'embrione di pollo mediante elettroporazione. Questa tecnica consente di etichettare specifici sottoinsiemi di neuroni e analizzarne la connettività.

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<p class="jove_content"&gt; Ringraziamo il Dott. Yuval Gottlieb-Dror per l&#39;illustrazione elettroporazione. Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni a DSD presso l&#39;Istituto Nazionale per la Psicobiologia in Israele e dal programma di cooperazione di ricerca Niedersachsen-Israele e da sovvenzioni per AK da The Israel Science Foundation, il Ministero Israele di salute, e il centro di eccellenza del Patrimonio-Legacy Biomedical Science collaborazione.</p&gt;

1. Romboencefalo elettroporazione 1.1 gestione Egg <ol><li> Mettere le uova orizzontalmente in un incubatore umidificato (37-38,5 ° C). Gli embrioni sono elettroporati dopo 65-70 ore di incubazione, quando raggiungono 16-17 (HH) stadio (25-30 somiti). </li><li> Togliere le uova dal termostato, rimangono in posizione orizzontale. </li></ol> 1.2 Preparativi <ol><li> Tirare vetro capillari (0,5 mm di diametro). </li><li> Collegare piegati a forma di L oro Genetrodes elettrodi (3 mm di diametro) con un supporto adattatore per il generatore di impulsi. Parametri di elettroporazione sono 25 volt, 5 numeri di impulsi, 45 ms lunghezza dell&#39;impulso, 300 msec intervalli di impulso. </li><li> Preparare una pipetta a bocca, 10 ml della siringa, strisce parafilm, una spazzola morbida, forbici dissezione nitide e 25 ml di soluzione PBS sterile. Tale importo è di solito sufficiente per gestire un vassoio di uovo (18 uova). </li><li> Preparare una miscela adeguata di plasmidi di DNA (5 mg / mL ciascuno) eaggiungere circa 0.025% Veloce colorante verde per visualizzare l&#39;iniezione del DNA. Solitamente un volume di 4 ml è sufficiente per l&#39;iniezione di un vassoio. </li></ol> 1.3 windowing, iniezione ed elettroporazione <ol><li> Pulire i gusci d&#39;uovo con il 70% di etanolo. </li><li> Maneggiare un uovo alla volta a ridurre al minimo il tempo di esposizione embrionale all&#39;aria. </li><li> Fare un buco al polo uovo con le estremità forbici e togliere 3-4 ml di albumina con la siringa. Non rimuovere una maggiore quantità di albumina in quanto riduce la vitalità. </li><li> Aprire una piccola finestra ovale (2,5 x 2 dimensioni cm) al centro superiore del guscio delle uova usando le forbici dissezione. </li><li> Gocciolare qualche goccia di PBS sopra l&#39;embrione per prevenire la secchezza durante tutto il processo. </li><li> Caricare una piccola quantità della miscela DNA nel capillare di vetro usando una pipetta a bocca. </li><li> Posizionare l&#39;embrione con la sua estremità posteriore verso di voi. Nessuna iniezione di inchiostro è richiesta in questa fase, l&#39;embrione è chiaramente visibile. Evitare aumenti di iniezione d&#39;inchiostrosopravvivenza embrionale. Penetrare il romboencefalo caudale tenendo il capillare a ~ 45 °. Non rimuovere la membrana da tutto l&#39;embrione. Iniettare la soluzione di DNA con cura nel lume romboencefalo ed espirare senza formare bolle d&#39;aria. Soluzione di DNA diffonde anteriormente. </li><li> Subito dopo l&#39;iniezione del DNA, posizionare gli elettrodi paralleli al preciso AP e la posizione romboencefalo DV si mira a bersaglio. Spingere gli elettrodi leggermente ventrale senza toccare il cuore, in quanto può ridurre la vitalità. Pulse il elettroporatore. Elettrodi devono essere coperti con bolle per indicare conducibilità elettrica (Figura 1A). </li><li> Rimuovere con attenzione gli elettrodi e gocciolare qualche goccia di PBS per raffreddare l&#39;embrione e per rimuovere le bolle. Sigillare l&#39;uovo apertura correttamente con una striscia di parafilm per evitare l&#39;essiccazione durante l&#39;incubazione. Lavare elettrodi in PBS con la spazzola morbida. </li><li> Mettere uova in incubatrice per il tempo desiderato. La sopravvivenza degli embrioni è di circa il 90% 2-3 giorni dopoelettroporazione, e riduce fino al 50% 12 giorni dopo l&#39;elettroporazione. </li></ol> 2. Analisi di embrioni 2.1 preparazione Flat-mount e immunofluorescenza <ol><li> Flat-mount preparativi del cervello posteriore possono essere eseguite fino a E6.5 di visualizzare facilmente gli assoni al microscopio o di uno stereo-microscopio. </li><li> Sezionare con cura l&#39;embrione separandola dalla membrane che circondano e vasi sanguigni. Posizionare l&#39;embrione in un piccolo silicone - rivestito piastra di Petri contenente PBS. Attaccare l&#39;embrione al piatto con perni di tungsteno rivolti dorsalmente. Eseguire una fenditura dorsale nel romboencefalo tettoia parapioggia con tagliente capillari di vetro. </li><li> Usando le pinzette taglienti e micro-forbici tenere la parte superiore della testa e tirare con molta attenzione il tessuto hindbrain dal rostrale caudale. Dopo separazione della romboencefalo eliminare i rimanenti tessuti ventrali raggiungere una preparazione pulita. </li><li> Incubare la romboencefalo con 4Paraformaldeide soluzione% (PFA) per 1-2 ore a temperatura ambiente (RT). Lavare il romboencefalo con PBT (PBS/0.1% Triton X-100) per rimuovere PFA. </li><li> Per immunofluorescenza in hindbrains piatto montati aggiungere 500 ml di soluzione di bloccaggio (5% di siero di capra in PBT e incubare per 2 ore a RT Incubare con 1 m anticorpo ON a 4 ° C. Lavare con PBT (15 min x 3). Incubare con il 2 ° anticorpo per 2 ore a temperatura ambiente. Lavare con PBT (15 min x 3). </li><li> Posizionare il romboencefalo fronte dorsalmente su un vetrino. Aggiungi mezzi di montaggio fluorescenti sul cervello posteriore. Utilizzare vetro capillari o aghi di tungsteno per appiattire il romboencefalo sulla diapositiva. </li><li> Aggiungere piccole quantità di grasso ad ogni angolo per impedire spremitura del tessuto dal vetrino. Collocare il vetrino sulla parte superiore del cervello posteriore e di evitare bolle d&#39;aria. Per aderenza aggiungere smalto per coprire i bordi di vetro. </li></ol> 2.2 Cryo-sezioni ed immunofluorescenza <ol><li> Cryo-sezioni del tronco encefalico can essere eseguita in qualsiasi momento per visualizzare traiettorie assonali. Eppure, dopo E6.5 questo dovrebbe essere il metodo preferito per la difficoltà di visualizzare assoni nell&#39;embrione piatto montata, che diventa troppo spesso. Inoltre, la dimostrazione di sinapsi richiede sezionamento del tessuto e una vista di alto ingrandimento al microscopio. </li><li> Sezionare l&#39;embrione e rimuovere tutti i tessuti circostanti. Risciacquare con PBS. Tagliare l&#39;embrione alla parte caudale del midollo utilizzando micro-forbici e pinzette taglienti. Fai una vasta incisione tra il cervelletto e il mesencefalo e rimuovere l&#39;intero tronco encefalico. Il tessuto deve contenere il midollo, ponte e cervelletto. </li><li> Fissare il tronco encefalico in PFA 4% per il pernottamento (ON) a 4 ° C, lavare con PBS (10 min x 3), e incubare con il 30% di saccarosio per ON a 4 ° C fino al naufragio. </li><li> Incorpora il romboencefalo in un crio-stampo con ottobre composto (Optimal Cutting Temperature), e metterlo a -20 ° C fino a congelamento, come descritto altrove 11. </li><li&gt; Posizionare il blocco di ottobre nel criostato in corrispondenza dell&#39;asse della sezione desiderata. Larghezza della sezione è di 12 micron. </li><li> Asciugare i vetrini. Aggiungere 100 microlitri soluzione bloccante in ogni diapositiva per 2 ore a temperatura ambiente. Aggiungere 100 ml di anticorpi (diluito in soluzione di blocco fino alla concentrazione desiderata). Il periodo di incubazione per 1 ° e 2 ° anticorpi è ON a 4 ° C o 2 ore a temperatura ambiente, rispettivamente. Per ogni periodo di incubazione, aggiungere delicatamente striscia parafilm sulla parte superiore della diapositiva per prevenire la secchezza. Lavare con PBS (10 min x 3) tra gli anticorpi. Se necessario, aggiungere 1:1.000 Dapi (4&#39;-6-Diamidino-2-fenilindolo), diluito in PBS per 20 minuti a RT. Risciacquare con PBS. </li><li> Montare il vetrino con mezzi di montaggio fluorescenti. Lasciate asciugare per 1 ora prima dell&#39;analisi. </li></ol>

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</ol>

<p class="jove_content"&gt; Nessun conflitto di interessi dichiarati.</p

In elettroporazione ovo è uno strumento fattibile, affidabile ed efficace per esaminare le specifiche delle cellule e la guida assonale durante pulcino sviluppo del sistema nervoso 20. In questo protocollo si descrive una modalità di elettroporazione in romboencefalo pulcino a E2.75 utilizzando elementi enhancer che consentano l&#39;etichettatura condizionale di interneuroni specifici. Questa strategia è combinato con il sistema di recepimento PiggyBac-mediata di inserire geni estranei nel g...

Romboencefalo rappresenta un mozzo relè chiave del sistema nervoso comunicando tra il sistema nervoso centrale e periferico tramite ascendente e discendente reti neuronali. Esso regola le funzioni di base tra cui la respirazione, la coscienza, l&#39;udito, e la coordinazione motoria 1-3. Durante lo sviluppo embrionale precoce, la romboencefalo vertebrati viene transitoriamente suddiviso lungo il suo asse antero-posteriore (AP) in rhombomeres ripetitivi, in cui si formano diversi tipi di cellule neuronali e generano molteplici centri nuclei del tronco cerebrale 4. Il cervello posteriore è diviso lungo il suo asse dorso-ventrale (DV) in una piastra basale e alari, in cui progenitori neuronali discrete diventano specificati e differenziano in distinti luoghi DV 3,5,6. Come il primo AP e specifiche DV modelli neuronali sono di istituzione dei circuiterie tronco cerebrale funzionale è in gran parte sconosciuto. Di acquisire conoscenze su questo fondamentalequestione, gli strumenti sono necessari al fine di etichettare specifici sottoinsiemi di neuroni nel cervello posteriore e presto per tracciarne la traiettoria degli assoni e la connettività nelle fasi più avanzate. Abbiamo precedentemente utilizzati specifici elementi enhancer, e un sistema di espressione condizionale Cre / loxP-based per il monitoraggio traiettoria assonale delle dorsali interneuroni spinali nei primi embrione di pollo 7-9. Nel manoscritto attuale abbiamo preso di mira il cervello posteriore e aggiornato il paradigma sperimentale per l&#39;etichettatura di fine interneuroni romboencefalo embrionali, gli assoni e ai loro obiettivi sinaptici, utilizzando una strategia di elettroporazione modificato e il PiggyBac - trasposizione del DNA mediata. La nostra nuova strategia permette la codifica dei sottotipi neuronali distinti in un lato del cervello posteriore e il tracciamento delle loro proiezioni assonali e siti sinaptici nelle varie fasi embrionali, da 2 a 12 giorni dopo l&#39;elettroporazione. In base a questo metodo, abbiamo etichettato la dorsale più a sottogruppo di interneuroni romboencefalo (dA1/Atoh1 + </sup&gt; celle) e ha rivelato due controlaterale ascendenti modelli di proiezione assonale, ogni deriva da una posizione diversa AP e allunga in un funicolo distinto. sono stati trovati DA1 assoni al progetto e formano sinapsi nei nuclei uditivi, mesencefalo e in strati multipli del cervelletto 10. La combinazione di pulcino elettroporazione, genetica rintracciamento di neuroni e analisi di siti per proiezioni molto stadi avanzati di sviluppo prevede una piattaforma unica per studiare la formazione di reti neuronali nel cervello e per chiarire i meccanismi molecolari che presiedono circuito.

<table><tbody><tr><td>Elettrodi da 3 mm Genetrodes in oro a forma di L</td><td>BTX, Harvard Apparatus</td><td>45-0162</td><td></td></tr><tr><td>generatore di impulsi, ECM 830</td><td>BTX, Harvard Apparatus</td><td>45-0002</td><td></td></tr><tr><td>OCT (temperatura di taglio ottimale) Compound</td><td>Tissue-Tek</td><td>Sakura 4583 O.C.T. Smalto composto</td><td></td></tr><tr><td></td><td>da qualsiasi fornitore commerciale</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

elettroporazione del romboencefalo tracciare traiettorie assonale e obiettivi synaptic in embrione di pollo

Electroporation of the Hindbrain to Trace Axonal Trajectories and Synaptic Targets in the Chick Embryo

Elettroporazione del pulcino embrionale tubo neurale ha molti vantaggi come essere veloce ed efficiente per l&#39;espressione di geni estranei in cellule neuronali. In questo manoscritto forniamo un metodo che dimostra univocamente come l&#39;elettroporazione di DNA nel cervello posteriore aviaria in E2.75, al fine di etichettare specificamente un sottoinsieme di progenitori neuronali, e come seguire le loro proiezioni assonali e traguardi sinaptiche in Gran fase avanzata di sviluppo, fino a E14.5. Abbiamo utilizzato nuovi strumenti genetici tra cui specifici elementi enhancer, Cre / Lox - plasmidi base e il sistema di recepimento DNA PiggyBac-mediata di guidare l&#39;espressione della GFP in un sottotipo di cellule romboencefalo (la dorsale più sottogruppo di interneuroni, DA1). Traiettorie e target di DA1 assoni assonale sono seguiti a inizio e fine fasi embrionali in varie regioni del tronco encefalico. Questa strategia contribuisce tecniche avanzate per il targeting di cellule di interesse nel romboencefalo embrionale e per il TRACing formazione circuito a più stadi di sviluppo.

Questo protocollo è stato recentemente utilizzato per scoprire i modelli assonale e siti di proiezione di DA1 sottogruppo di interneuroni nella romboencefalo pulcino 10. Per etichettare specificamente questi assoni, un elemento enhancer (Atoh1), che è stata precedentemente caratterizzata da specifici per i neuroni spinali DI1 8,12,13, è stato confermato da esprimere in romboencefalo DA1 cellule 10. L&#39;elemento è stato clonato a monte di Cre ricombinasi e co-elettroporato a E2.75 insie...

Come le reti neuronali sono stabiliti nel cervello embrionale è una questione fondamentale nella neurobiologia dello sviluppo. Qui abbiamo combinato una tecnica di elettroporazione con nuovi strumenti genetici, come ad esempio Cre / Lox-plasmidi e PiggyBac-mediata sistema trasposizione del DNA nel romboencefalo aviaria di etichettare interneuroni dorsali e monitorare le loro proiezioni assonali e traguardi sinaptiche a vari stadi di sviluppo.

Elettroporazione del romboencefalo tracciare traiettorie assonale e Obiettivi Synaptic in embrione di pollo

Electroporation of  the chick embryonic neural tube has many advantages such as being quick and efficient  for the expression of foreign genes into ...

L'obiettivo generale di questa procedura è quello di etichettare sottogruppi specifici di neuroni nel cervello posteriore del pollo e di tracciare le loro traiettorie assonali e i bersagli. Ciò si ottiene aprendo prima una piccola finestra ovale al centro di una giornata embrionale.2.75. I plasmidi del DNA successivo all'uovo vengono iniettati nel lume del cervello posteriore.Quindi il cervello posteriore viene elettroporato unilateralmente per consentire l'espressione dei costrutti nel gruppo neuronale desiderato e le uova incubate. Infine, il tronco encefalico viene sezionato dall'intero embrione per la preparazione a montaggio piatto o il sezionamento tissutale. In definitiva, è possibile ottenere risultati che mostrano proiezioni assonali e bersagli sinaptici nella parte posteriore, nel cervello e nel cervelletto in varie fasi dello sviluppo attraverso la colorazione immunofluorescente e l'analisi al microscopio.Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo della neurobiologia dello sviluppo, come ad esempio il modo in cui specifiche cellule neuronali proiettano i loro assoni e formano connessioni sinaptiche durante lo sviluppo embrionale. Per prepararsi all'elettroporazione, incubarli a 37-38 gradi e mezzo Celsius per 65-70 ore fino a raggiungere lo stadio 16-17. Mentre le uova sono in incubazione, i capillari di vetro collegano gli elettrodi d'oro piegati a forma di L con un supporto adattatore al narratore di impulsi.Impostare i parametri di elettroporazione su 25 volt, cinque numeri di impulso, 45 millisecondi di lunghezza dell'impulso e 300 intervalli di impulso. Preparare una pipetta per la bocca, una siringa da 10 millilitri, strisce di paraforme, una spazzola morbida, forbici da dissezione affilate e 25 millilitri di PBS sterile. Preparare una miscela adeguata di plasmidi di DNA e aggiungere colorante verde veloce per visualizzare il DNA iniettato.Quando gli ovuli hanno raggiunto il corretto stadio di sviluppo, rimuoverli dall'incubatrice e tenerli in posizione orizzontale. Usa il 70% di etanolo per pulire i gusci d'uovo. Maneggiare un uovo alla volta per ridurre al minimo l'esposizione embrionale.È ora di arieggiare con la punta delle forbici. Fai un buco sul palo dell'uovo e con la siringa rimuovi da tre a quattro millilitri di albumina. Usando le forbici da dissezione, apri una piccola finestra ovale sul polo orizzontale superiore del guscio d'uovo.Durante l'intero processo, gocciolare alcune gocce di PBS sopra l'embrione per prevenire la secchezza. Utilizzando una pipetta orale, caricare una piccola quantità della miscela di DNA nel capillare di vetro. Quindi, posiziona l'embrione con la sua vista indiretta all'estremità posteriore.Quindi, tenendo il capillare a circa 45 gradi, penetrare nel cervello posteriore della coccola. Non rimuovere alcuna membrana intorno all'embrione senza formare bolle d'aria. Espira con attenzione per iniettare la soluzione di DNA nel lume del cervello posteriore.La soluzione si diffonderà anteriormente subito dopo l'iniezione di DNA. Posizionare gli elettrodi paralleli nelle precise posizioni mirate del cervello posteriore AP e DV. Senza toccare il cuore, spingere leggermente gli elettrodi ventralmente e pulsare l'elettro.Gli elettrodi devono essere coperti con bolle per indicare la conduttività elettrica, rimuovere con cura gli elettrodi e gocciolare alcune gocce di PBS per raffreddare l'embrione e rimuovere le bolle. Utilizzare una striscia di perfil per sigillare correttamente l'apertura dell'uovo per evitare che si secchi durante l'incubazione con una spazzola morbida e PBS lavare gli elettrodi, posizionare l'uovo nell'incubatrice per il tempo desiderato. La sopravvivenza degli embrioni è di circa il 90% due o tre giorni dopo l'elettroporazione e si riduce fino al 50% 12 giorni dopo l'elettroporazione.Per preparare il cervello posteriore, sezionare attentamente l'embrione, separandolo dalle membrane e dai vasi sanguigni circostanti. Posizionare l'embrione in una piccola capsula di Petri rivestita di silicone contenente PBS con l'embrione rivolto dorsalmente. Usa i perni di tungsteno per fissarlo al piatto.Quindi utilizzando un capillare di vetro affilato. Fai una fessura dorsale nella piastra del tetto del cervello posteriore con pinzette affilate e micro forbici. Tenere la parte superiore della testa e tirare il tessuto cerebrale posteriore con molta attenzione dal rostrale al bambino.Dopo la separazione del cervello posteriore, rimuovere i tessuti ventrali rimanenti. Incubare il cervello posteriore in aldeide paraforme al 4% o in una soluzione di PFA per una o due ore a temperatura ambiente. Quindi lavarlo con PBT per rimuovere il PFA.Dopo aver seguito la preparazione per l'immunofluorescenza descritta nel protocollo di testo, posizionare il cervello posteriore rivolto dorsalmente su un vetrino. Aggiungere un mezzo di montaggio fluorescente sul cervello posteriore e utilizzare capillari di vetro o aghi di tungsteno per appiattire il cervello posteriore sul vetrino. Aggiungere una piccola quantità di grasso ad ogni angolo per evitare che il fazzoletto venga schiacciato dal vetrino coprioggetto.Posizionare con cura un vetrino coprioggetti sulla parte superiore del cervello posteriore evitando bolle d'aria per l'aderenza. Aggiungere lo smalto sui bordi del vetro di copertura. Le criosezioni del tronco encefalico possono essere eseguite in qualsiasi fase dello sviluppo, ma dopo E 6.5.Dovrebbero essere il metodo preferito a causa della difficoltà di visualizzare gli assoni nell'embrione montato piatto, che diventa molto spesso. Inoltre, la dimostrazione della sinapsi richiede il sezionamento del tessuto e la visione ad alto ingrandimento al microscopio. Per preparare un campione per la criosezione, sezionare l'embrione e rimuovere tutti i tessuti che circondano il cervello.Risciacquare con PBS. Quindi usa micro forbici e pinzette affilate per tagliare l'embrione nella regione della coccola del midollo. Fai un'ampia incisione tra il cervelletto e il mesencefalo e rimuovi l'intero tronco encefalico.Il tessuto dovrebbe contenere il midollo e il cervelletto. Nell'esempio seguente, un elemento enhancer che è espresso nel sottogruppo DA uno di interneuroni nel cervello posteriore di controllo è stato clonato a monte della ricombinasi Cree e co-elettroporato con un plasmide reporter GFP citoplasmatico Cree dipendente. Una preparazione a montatura piatta allo stadio E 4.5 rivela due modelli di proiezione assonale ascendente controlaterale per mappare le proiezioni assonali di DA uno interneuroni nelle fasi successive dello sviluppo.Una cassetta reporter GFP incondizionata pre-con è stata clonata tra due bracci piggyback, insieme all'enhancer A TOH one creen e al vettore di trasposizione. Utilizzando questa strategia, la MG FP precompatibile condizionale al C elettroporata viene integrata nei cromosomi del pollo e, di conseguenza, la cassetta di arresto viene rimossa solo nei neuroni D uno, consentendo un'espressione prolungata della GFP. In DA una cellula.La forma mesilata della GFP la lega alla membrana in modo tale che sia localizzata lungo la membrana assonale piuttosto che essere diluita nel citoplasma. In steli cerebrali raccolti a E 13.5 e analizzati in sezioni sagittali. È stato riscontrato che gli assoni DA one si accumulano nel cervelletto e si estendono verso lo strato granulare esterno o EGL, che è contrassegnato da cellule ZI one positive.Sono stati analizzati anche i bersagli sinaptici degli assoni D uno nel cervelletto. Gli embrioni E 2,75 sono stati elettroporati con la proteina della vescicola sinaptica due plasmidi reporter, insieme a un potenziatore Cree H one e la trasposizione piggyback. Questo metodo consente l'espressione del reporter GFP nei termini assonali presinaptici DA.Il cervelletto è stato sezionato a E 13,5 e colorato con il marcatore presinaptico generale taman sinaptico, nonché con calbindina che etichetta lo strato bikini. Una vista ad alto ingrandimento della sezione mostra SV due vescicole sinaptiche GFP positive in più regioni cerebellari, incluso lo strato bikini. Questo risultato rivela le connessioni sinaptiche di DA un cervello posteriore tra neuroni nel cervelletto.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come far funzionare il DNA nell'Hein aviario al secondo giorno embrionale punto 75 al fine di etichettare specificamente un sottoinsieme di cellule neuronali. Questa procedura consente di seguire le proiezioni assonali e le connessioni sinaptiche delle cellule neuronali marcate in più fasi di sviluppo.

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