Name: I mitocondri associati Membrane ER (MAMs) e glicosfingolipidi microdomini arricchiti (GEM): Isolamento dal cervello di topo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-04T12:15:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Scopri come isolare le membrane ER associate ai mitocondri (MAMs) e i microdomini arricchiti in glicosfingolipidi (GEM) dal cervello di topo adulto. Questo metodo ottimizzato utilizza omogenizzazione e centrifugazione su gradiente di saccarosio.

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Riconosciamo il contributo di Renata Sano nel concepire il protocollo iniziale. Ad&#39;A. detiene le Jewelers per i bambini (JFC) Dotato Cattedra di Genetica e terapia genica. Questo lavoro è stato finanziato in parte da sovvenzioni NIH GM60905, DK52025 e CA021764, e gli americani libanesi Charities siriane associati (ALSAC).

<html> Il seguente protocollo è stato progettato per l&#39;isolamento e la purificazione di MAMs e gemme da cervello di topo Soluzioni richiesto per l&#39;isolamento di mitocondri, MAMs e gemme Frazionamento per ottenere greggio preparazione mitocondriale: Soluzione A: 0,32 M saccarosio, 1 mM NaHCO 3, 1 mM MgCl 2, 0.5 mM CaCl 2 + inibitori delle proteasi (aggiungere fresco, se necessario) Soluzione B: 0.32 M saccarosio, 1 mM NaHCO3 + inibitori della proteasi (aggiungere fresco, se necessario) MAMs Isolamento: Isolation Medio: 250 mM Mannitolo, 5 mM HEPES pH 7,4, 0,5 mM EGTA, 0,1% BSA Gradiente Buffer: 225 mM mannitolo, 25 mM HEPES pH 7,5, 1 mM EGTA, 0,1% BSA (concentrazione finale) GEM di isolamento: contenuto &quot;&gt; GEM tampone di estrazione: 25 mM HEPES pH 7,5, 0,15 M NaCl, 1% Triton X-100 + inibitori delle proteasi (aggiungere fresco, se necessario) GEM Buffer solubilizzante: 50 mM Tris-HCl, pH 8,8, 5 mM EDTA, 1% SDS + Inibitori della proteasi (aggiungere fresco, se necessario). 1. Passo Frazionamento subcellulare Primo: Celle rimozione dei Nuclei, non lisate e detriti cellulari <ol><li> Eutanasia mouse nella camera di CO 2. </li><li> Rimuovere immediatamente il cervello, dimezzare, mettere in 2 ml provette in ghiaccio e pesare. </li></ol> Nota: Tenere le metà del cervello separato durante tutta la procedura. Quanto segue si applica al trattamento di un mezzo unico cervello. <ol start="3"><li> Luogo cervello metà in pre-refrigerati 2 smerigliatrice di vetro tessuto Dounce ml contenente 1 ml di soluzione fredda A. Omogeneizzare con 15 colpi totali di un pestello spazio di grandi dimensioni. </li><li> Trasferire in una provetta da 15 ml falcon, su ghiaccio, e diluireomogenati fino a 10 volumi w / v, ad esempio 0,225 g di 2,25 ml. </li><li> Centrifugare campione a 1400 xg per 10 min a 4 ° C. </li><li> Rimuovere con attenzione il supernatante e trasferirlo in una 30 ml a fondo rotondo tubo di vetro, sul ghiaccio. Fare attenzione a non disturbare il pellet. </li><li> Risospendere il precipitato in stessi 10 volumi di soluzione A. Omogeneizzare nel macinacaffè stesso, con 3-6 colpi di un pestello piccolo gioco, 1 ml per volta. </li><li> Trasferire in una nuova provetta 15 ml falcon e centrifugare a 710 xg per 10 min a 4 ° C. Ciò si traduce in un pellet di nuclei e detriti cellulari. </li><li> Rimuovere con attenzione il surnatante e piscina con il surnatante salvato nel passaggio 1.6. </li></ol> 2. Secondo passo: Crude Isolamento mitocondri <ol><li> Centrifugare supernatanti a 13800 xg per 10 min a 4 ° C. </li><li> Trasferire il surnatante in un Ultra-Clear provetta da centrifuga Beckman, su ghiaccio </li><li> Risospendere il pellet in 10 volumi di soluzione A. Omogeneizzare nel macinacaffè stesso, con 3-6 colpi di un pestello piccolo gioco, 1 ml per volta. </li><li> Centrifugare come punto 2.1. </li><li> Ripetere i passaggi 2,2-2,4. </li><li> Il pellet risultante è una frazione arricchita mitocondriale. I supernatanti (citosol e ER), coprire con parafilm e tenere in ghiaccio. </li><li> Risospendere il pellet con 6 colpi di un pestello piccolo gioco, in 4,8 ml / g (g è riferito al peso del cervello originale) di soluzione B, in un omogeneizzatore fresco. </li><li> Usando pipette Pasteur in vetro, preparare un gradiente discontinuo di saccarosio in un Ultra-Clear provetta da centrifuga Beckman, aggiungendo successivamente al fondo della provetta come segue, con attenzione, assicurando bolle si formano: Resupended pellet (0,32 M saccarosio) 3 ml 850 mM saccarosio (in 1 mM NaHCO3) 3 ml 1 M Saccarosio (in 1 mM NaHCO 3) 3 ml di 1,2 M saccarosio (in 1 mM NaHCO3) </li><li> Centrifugare a 82500 xg per 2 ore a 4 ° C. La separazione risultante alla fine del gradiente produrrà tre bande e un pellet: 1) mielina e altri contaminanti membrana (0,32 M - 0,85 M di interfaccia), 2) ER, Golgi, membrane plasmatiche (0,85 M - 1 M di interfaccia); 3) sinaptosomi (1 M - 1,2 M di interfaccia), 4) grezzo mitocondri (pellet) che viene utilizzato per le successive fasi di purificazione </li></ol> 3. Isolamento dei mitocondri associata a membrana ER, MAMs <ol><li> Risospendere il greggio appena mitocondri isolati da una metà del cervello, in 2 ml di terreno di isolamento contenenti inibitori della proteasi appena aggiunti. </li><li> Preparazione di un gradiente Percoll 30% con il tampone di gradiente da 8 ml per metà del cervello, e il luogo in un Ultra-Clear provetta da centrifuga Beckman. </li></ol> * Nota: Assicurarsi tampone gradiente più concentrato (1,43 volte) per ottenere corretta concentrazione finale dopo diluting Percoll al 30%. <ol start="3"><li> Sospensione livello mitocondriale in cima gradiente preparato lentamente per evitare eventuali bolle. </li><li> Centrifugare a 95.000 xg per 30 min a 4 ° C. </li><li><ol class="lroman"><li> Rimuovere la frazione pesante (fascia inferiore) prima con una pipetta Pasteur di vetro e versare in un nuovo fondo rotondo tubo di vetro, su ghiaccio. </li><li> Rimuovere la frazione leggera (banda superiore) con un altro SECONDO Pasteur pipetta di vetro e versare in un separato fresco a fondo rotondo tubo di vetro, su ghiaccio. </li></ol></li><li> Diluire entrambe frazioni raccolte nel passaggio 3,5 con 10 ml di mezzo di isolamento e centrifugare a 6300 xg per 10 min a 4 ° C. </li><li> Scartare il sopranatante della frazione pesante ottenuta nella fase 3.6, risospendere il pellet con un altro supporto 10 ml Isolamento e centrifugare nuovamente, come passo 3,6. Il pellet risultante sarà la frazione pura mitocondriale. </li><li> Trasferire il surnatante dal Frac Lucezione ottenuta nello stadio da 3,6 a un Ultra-Clear provetta da centrifuga Beckman, sul ghiaccio. Eliminare il pellet. </li><li> Aggiungere mezzo di isolamento al supernatante ottenuto nel passaggio 3,8 per riempire il tubo e centrifugare a 100.000 xg per 1 ora, 4 ° C. Il pellet risultante sarà la frazione MAMs. Rimuovere con attenzione ed eliminare il surnatante. </li></ol> Nota: A questo punto, si può anche centrifugare a 100.000 xg per 1 ora, 4 ° C, il surnatante salvato nella fase 2.6. Il pellet sarà la frazione ER e supernatante la frazione citosolica. 4. Estrazione di glicosfingolipidi-microdomini arricchiti, GEM <ol><li> Lyse puri frazioni mitocondri e / o MAM in 500 pl-1 ml di tampone di estrazione per 20 min in ghiaccio. </li><li> Centrifugare a 15300 lisati xg per 2 minuti a 4 ° C. </li><li> Raccogliere surnatanti (Triton X-100 materiale solubile) e ri-centrifuga pelletsper 2 minuti per rimuovere restante materiale solubile. (Triton X-100 mitocondri estratti e / o Triton X-100 MAMs estratti). </li><li> Solubilizzare pellet in solubilizzanti tampone. Questo materiale solubilizzato rappresenta le frazioni GEM e può essere utilizzato per ulteriori analisi. </li></ol>

<ol><li>Poburko, D., Kuo, K. H., Dai, J., Lee, C. H., van Breemen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organellar+junctions+promote+targeted+Ca2%2B+signaling+in+smooth+muscle%3A+why+two+membranes+are+better+than+one%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Pharmacol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Organellar junctions promote targeted Ca2+ signaling in smooth muscle: why two membranes are better than one.</a> Trends Pharmacol. Sci. 25 (1), 8-15 (2004).</li>
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</ol>

Nessuno degli autori ha conflitti di interesse da dichiarare.

I siti di contatto tra membrane intracellulari o tra organelli e la membrana plasmatica di cellule rappresentano dinamiche piattaforme di segnalazione per processi cellulari di base. La caratterizzazione accurata della loro funzione e la composizione sia in condizioni fisiologiche e patologiche richiede protocolli di purificazione affidabili e riproducibili. I metodi qui descritti sono stati specificamente ottimizzate dal nostro laboratorio per l&#39;isolamento e la purificazione dei MAMs e loro gemme corrispondenti del...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente / materiale </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> REAGENTI </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Frazionamento </td></tr><tr><td> Saccarosio </td><td> Fisher Scientific </td><td> S5-500 </td><td></td></tr><tr><td> Bicarbonato di Sodio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> S-5761 </td><td></td></tr><tr><td> Cloruro di magnesio, esaidrato </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP214-500 </td><td></td></tr><tr><td> Cloruro di calcio, diidrato </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C-5080 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> MAM </td></tr><tr><td> D-mannitolo </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> M9546-250G </td><td></td></tr><tr><td> Hepes </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP310-500 </td><td></td></tr><tr><td> EGTA </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> E4378-250G </td><td></td></tr><tr><td> BSA, Frazione V, shock termico, liofilizzato </td><td> Roche </td><td> 03-116-964-001 </td><td></td></tr><tr><td> Percoll </td><td> GE </td><td> 17-0891-02 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> GEM </td></tr><tr><td> Triton X-100 </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> T9284-500 ml </td><td></td></tr><tr><td> Cloruro di sodio </td><td> Fisher Scientific </td><td> S271-3 </td><td></td></tr><tr><td> Tris Base </td><td> Roche </td><td> 03-118-142-001 </td><td></td></tr><tr><td> HCl </td><td> Fisher Scientific </td><td> A144S-500 </td><td></td></tr&gt; <tr><td> EDTA </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP120-500 </td><td></td></tr><tr><td> Di sodio dodecil solfato (SDS) </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP166-500 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Comune </td></tr><tr><td> Compresse inibitori della proteasi, completi EDTA-free </td><td> Roche </td><td> 11-873-580-001 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> ATTREZZATURE </td></tr><tr><td> 2 ml Douce All-Glass tessuto Grinders </td><td> Kimble Chase </td><td> 885300-0002 </td><td></td></tr><tr><td> 15 ml in polipropilene Tubi per centrifuga coniche, BD Falcon </td><td> BD </td><td> 352097 </td><td></td></tr><tr><td> 30 ml a fondo rotondo in vetro da centrifuga Tubi </td><td> Kimble Chase </td><td> 45500-30 </td><td></td></tr><tr><td> 15 ml a fondo rotondo in vetro CentriFuge Tubi </td><td> Kimble Chase </td><td> 45500-15 </td><td></td></tr><tr><td> Tubi ultracentrifuga, Ultra-Clear, pareti sottili, mm 14x89 </td><td> Beckman-Coulter </td><td> 344059 </td><td></td></tr><tr><td> Parafilm </td><td> Cole-Parmer </td><td> PM996 </td><td></td></tr><tr><td> Monouso in vetro borosilicato Pasteur Pipette, 9 &quot; </td><td> Fisher Scientific </td><td> 13-678-20C </td><td></td></tr></tbody></table>

i mitocondri associati membrane er (mams) e glicosfingolipidi microdomini arricchiti (gem): isolamento dal cervello di topo

Mitochondria-associated ER Membranes (MAMs) and Glycosphingolipid Enriched Microdomains (GEMs): Isolation from Mouse Brain

Organelli intracellulari sono strutture altamente dinamiche con diversa forma e composizione, che sono sottoposti a stimoli intrinseci ed estrinseci delle cellule-specifiche. Le loro membrane sono spesso giustapposti a siti di contatto definiti, che diventano centri per lo scambio di molecole di segnalazione e dei componenti della membrana 1,2,3,4. Le inter-organelli microdomini di membrana che si formano tra il reticolo endoplasmatico (ER) ei mitocondri all&#39;apertura del IP3-sensibili Ca 2 + sono noti canali come i mitocondri associato-ER membrane o MAMS 4,5,6. La proteina / lipide composizione e le proprietà biochimiche di questi siti di contatto di membrana sono stati ampiamente studiati in particolare in relazione al loro ruolo nella regolazione intracellulare Ca 2 + 4,5,6. La ER serve come fonte principale di Ca 2 + intracellulare, e in questa capacità regola una miriade di processi cellulari a valle di Ca 2 + segnalazione, including post-traduzionale folding delle proteine ​​e proteine ​​maturation7. Mitocondri, invece, mantenere l&#39;omeostasi Ca 2 +, tamponando citosolico Ca 2 + concentrazione impedendo così l&#39;apertura di percorsi apoptotici a valle di Ca 2 + squilibrio 4,8. La natura dinamica delle MAMs li rende luoghi ideali di base per analizzare i meccanismi cellulari, tra cui Ca 2 + di segnalazione e regolazione di mitocondriale Ca 2 + sopravvivenza concentrazione, la biosintesi dei lipidi e dei trasporti, il metabolismo energetico cellulare e 4,9,10,11,12. Diversi protocolli sono stati descritti per la purificazione di questi microdomini di tessuto epatico e cellule coltivate 13,14. Assunzione di metodi precedentemente pubblicati in considerazione, abbiamo adattato un protocollo per l&#39;isolamento dei mitocondri e MAMs dal cervello di topo adulto. Per questa procedura, abbiamo aggiunto un ulteriore passaggio di purificazione, cioè un estrazione Triton X100, che enables l&#39;isolamento del glicosfingolipide arricchito microdomini (GEM), frazione dei MAMs. Queste preparazioni GEM condividere componenti proteiche diverse con zattere caveolae e lipidi, derivati ​​dalla membrana plasmatica o altre membrane intracellulari, e si propone di funzionare come la raccolta punti per il raggruppamento delle proteine ​​recettori e per interazioni proteina-proteina 4,15.

Sulla base della nostra esperienza con l&#39;utilizzo di questo protocollo possiamo tranquillamente lo consiglio per l&#39;isolamento e la purificazione di MAMs, gemme e frazioni mitocondriali di cervello di topo. La procedura indicata è altamente riproducibile e coerente. In figura 1 si mostra una immagine rappresentativa dello strato modo puro mitocondri e MAMs su un gradiente Percoll (passo 3.4). A definito, banda lattiginoso contenente purificata mitocondri (Mito-P) segrega al fondo del tubo ultrace...

Questa procedura illustra come isolare dal cervello di topo adulto i mitocondri associate membrane ER o MAMS e glicosfingolipidi-arricchiti frazioni microdomini di MAMs e preparati mitocondriali.

I mitocondri associati Membrane ER (MAMs) e glicosfingolipidi microdomini arricchiti (GEM): Isolamento dal cervello di topo

Intracellular organelles are highly dynamic structures with varying shape and composition, which are subjected to cell-specific intrinsic and extrinsic ...

L'obiettivo generale di questa procedura è isolare il mitocondrio, la membrana del reticolo endoplasmatico, i microdomini o MAMs dal cervello di topo; i MAMs purificati vengono successivamente estratti per ottenere frazioni di microdomini arricchite in glicofingerlipidi, o gems. Questo viene ottenuto innanzitutto dissezionando il cervello di topo, che viene poi omogeneizzato in un tampone specifico utilizzando un omogeneizzatore Dounce. L'omogenato risultante viene centrifugato a bassa velocità per rimuovere nuclei, cellule integre e detriti cellulari.Il secondo passaggio consiste nel preparare una frazione mitocondriale grezza. Mediante un'ulteriore centrifugazione del sopranatante, il pellet ottenuto viene risospeso e ulteriormente separato utilizzando un gradiente discontinuo di saccarosio. Successivamente, la frazione mitocondriale grezza viene applicata a un gradiente percoll.Dopo la centrifugazione e diversi passaggi di lavaggio, si ottengono la frazione mitocondriale pura e le MAM. L'ultimo passaggio consiste nel trattare le MAM con una soluzione contenente TRITTON X 100 per estrarre la frazione del microdominio arricchito in lipidi glicofinger gem. Infine, la purezza delle frazioni viene convalidata mediante analisi di western blot utilizzando anticorpi specifici per marcatori proteici caratteristici delle diverse frazioni organellari.Il vantaggio principale di questa procedura rispetto ai metodi esistenti è che è stata adattata per l'isolamento delle frazioni mitocondriali mam e gem dal cervello di topo adulto utilizzando una quantità relativamente ridotta di materiale di studio. Questa procedura ottimizzata è molto riproducibile e consente di isolare quantità sufficienti delle diverse frazioni organellari da utilizzare da parte dei ricercatori, in particolare in campo di neurobiologia. Per l'analisi delle loro proteine di interesse, la dimostrazione della procedura sarà effettuata da a, a, una tecnica del mio laboratorio.Dopo aver rimosso il cervello da un topo eutanasizzato con anidride carbonica, iniziare questa procedura tagliando il cervello a metà. Posizionare ciascuna metà in un tubo separato da due millilitri posto sul ghiaccio. Pesare i tubi utilizzando un tubo da due millilitri vuoto e pre-raffreddato per azzerare la bilancia e conservarli sul ghiaccio.Trasferire metà del cervello in un omogeneizzatore di tessuto in vetro da due millilitri precedentemente raffreddato, contenente un millilitro di soluzione fredda di frazionamento. Omogeneizzare con un totale di 15 movimenti completi utilizzando un pestello con ampio gioco. Collocare l'omogenato in un tubo Falcon sterile da 15 millilitri posto sul ghiaccio e diluire fino a 10 volumi di soluzione fredda di frazionamento A in base al peso del campione.Quindi centrifugare il campione a 1.400 ×g per 10 minuti a quattro gradi. Rimuovere con attenzione il sopranatante avendo cura di non disturbare il pellet e trasferirlo in un tubo da centrifuga in vetro rotondo da 30 millilitri posto sul ghiaccio. Successivamente, risospendere il pellet nello stesso volume di soluzione di frazionamento, pari a 10 volumi.Omogeneizzare il pellet risospeso nello stesso omogeneizzatore, un millilitro alla volta. Questa volta utilizzare da tre a sei movimenti di un pestello con piccolo spazio libero. Riunire l'omogeneato in un tubo Falcon da 15 millilitri e centrifugare a 710 ×g per 10 minuti a quattro gradi Celsius.Questo porta alla formazione di nuclei apoptotici e detriti cellulari. Rimuovere con attenzione il sopranatante e unirlo al precedente sopranatante conservato dalla centrifugazione precedente per iniziare l'isolamento dei mitocondri: centrifugare i sopranatanti S a 13.800 × g per 10 minuti a 4 gradi Celsius. Successivamente, trasferire il pellet in un tubo da centrifuga Beckman UltraClear su ghiaccio.Risospendere i pellet contenenti la frazione mitocondriale in 10 volumi di soluzione di frazionamento A e omogeneizzare un millilitro alla volta. Questa volta utilizzare da tre a sei passaggi di un pestello con piccolo spazio libero, combinando gli omogeneati in un nuovo tubo centrifuga in vetro rotondo da 30 millilitri posto sul ghiaccio. Purificare ulteriormente il campione ripetendo questi passaggi un’altra volta.Centrifugare l'omogenato. Prelevare i supernatanti S e riomogenizzare il pellet cellulare un millilitro alla volta dopo averlo sospeso in 10 volumi di soluzione A. Il passaggio successivo consiste nel risospendere il pellet contenente la frazione mitocondriale arricchita in 4,8 millilitri di soluzione di frazionamento B per grammo di peso cerebrale originale, omogenizzando con sei movimenti di un pestello a piccolo spazio libero in un omogenizzatore nuovo e conservando questo omogenato sul ghiaccio. Successivamente, preparare un gradiente discontinuo di saccarosio in un tubo centrifuga UltraClear Beckman.Per prima cosa, aggiungere la paletta risospesa seguita da tre millilitri di saccarosio 850 millimolari, tre millilitri di saccarosio uno molare e infine tre millilitri di saccarosio 1,2 molare. Assicurarsi di aggiungere la soluzione lentamente dal fondo per garantire che non si formino bolle. Infine, centrifugare a 82.500 ×g per due ore a quattro gradi Celsius.La separazione risultante produrrà tre bande e la frazione soprannatante. La frazione soprannatante contiene i mitocondri grezzi che verranno utilizzati nei successivi passaggi di purificazione. Ripesate i mitocondri grezzi appena isolati da una metà del cervello con due millilitri di mezzo di isolamento.Successivamente, aggiungere otto millilitri di un gradiente al 30% per nucleo in un nuovo tubo da centrifuga UltraClear Beckman. Sovrapporre lentamente la sospensione mitocondriale sul gradiente preparato, evitando attentamente la formazione di bolle. Quindi centrifugare a 95.000 ×g per 30 minuti a quattro gradi Celsius dopo la separazione del gradiente.Prima di tutto, rimuovere la frazione pesante, ovvero la banda inferiore, utilizzando una pipetta di vetro per pasta e trasferirla in un nuovo tubo di vetro con fondo rotondo. Conservare il tubo sul ghiaccio. Successivamente, rimuovere la frazione leggera, ovvero la banda superiore, utilizzando una nuova pipetta di vetro per pasta e trasferirla in un altro tubo di vetro con fondo rotondo fresco e separato.Posizionare anche questa provetta sul ghiaccio. Diluire entrambe le frazioni con 10 millilitri di mezzo di isolamento e centrifugare a 6.300 ×g per 10 minuti a 4 °C. Scartare il soprannatante dalla frazione pesante e risospendere il pellet con altri 10 millilitri di mezzo di isolamento.Centrifugare nuovamente il campione nelle stesse condizioni. Il pellet risultante sarà la frazione mitocondriale pura. Successivamente, trasferire il soprannatante dalla frazione leggera in un tubo da centrifuga Beckman UltraClear su ghiaccio.Il pellet di questa frazione viene scartato poiché contiene mitocondri contaminanti. Aggiungere un volume sufficiente di mezzo di isolamento al sopranatante della frazione leggera fino a riempire la provetta e centrifugare a 100.000 ×g per un'ora a quattro gradi Celsius. Il pellet risultante conterrà le membrane del reticolo endoplasmatico associate ai mitocondri, o MAMs.Rimuovere con attenzione e scartare il sopranitato. Iniziare l'estrazione dei microdomini arricchiti in lipidi a glicofinger o gemme mediante l'aggiunta della frazione MAM in 500 microlitri fino a un millilitro di buffer di estrazione su ghiaccio per 20 minuti. Successivamente, centrifugare il lisato a 15.300 ×g per due minuti a quattro gradi Celsius.Raccogliere il sopranatante e centrifugare il pellet per due minuti per rimuovere tutti i materiali solubili in Triton 100 residui, quindi risospendere infine il pellet nel buffer solubilizzante. Questo materiale solubilizzato rappresenta le frazioni gemmulari e può essere utilizzato per ulteriori analisi. Sono stati eseguiti immunoblotting per verificare la purezza e la distribuzione dei marcatori del reticolo endoplasmatico, delle proteine citosoliche e dei marcatori mitocondriali nella frazione citosolica.La frazione di reticolo endoplasmatico, la frazione mitocondriale pura e la frazione di MAMs. I blotting Western hanno inoltre mostrato che le gems erano positive per cavi in uno, un marcatore di cli, e negative per le proteine del reticolo endoplasmatico e mitocondriali. D'altro canto, le MAMs estratte con Triton X-100 erano positive per i marcatori del reticolo endoplasmatico e mitocondriali e mostravano una quantità minima di cavi in uno durante il tentativo di questa procedura.È importante ricordare di utilizzare tessuto cerebrale appena dissezionato e di mantenere successivamente tutti i campioni, le soluzioni e le provette sul ghiaccio. Inoltre, si raccomanda di conservare una piccola quantità di campione da ogni fase della frazionatura, in modo da poter determinare mediante immunoblotting il successo complessivo della procedura di purificazione.

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