Name: La stampa Sommerso di celle su una superficie modificata utilizzando un flusso di Microspotter continua (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 29 s
Description: Scopri la stampa sommersa di cellule per screening farmacologico e valutazione citotossica utilizzando un microspotter a flusso continuo. Questo metodo consente il posizionamento preciso di fibroblasti su superfici immerse.

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Gli autori desiderano ringraziare Chris Morrow per l&#39;assistenza tecnica. Il finanziamento è stato fornito dal NIH SBIR (R43) concedere 1R43GM101859-01 (MPI) GRANT10940803.

1. Cella Cultura Preparazione <ol><li> Conservare le scorte di cellule NIH/3T3 in azoto liquido fino al momento dell&#39;uso. </li><li> Preparare completa supporti per cellule NIH/3T3 utilizzando Dulbecco Modified Eagle Medium (DMEM) supplementato con 10% di siero fetale bovino, 10 mM tampone HEPES, 50 unità / ml di penicillina e 50 mg / ml di streptomicina. </li><li> Scongelare cellule per 2-3 minuti in un bagno d&#39;acqua a 37 ° C. </li><li> Risospendere le cellule in 5 ml di mezzo completo e centrifugare a 1500 xg per 3 min. </li><li> Rimuovere il surnatante cellulare senza disturbare il pellet. </li><li> Risospendere le cellule in 5 ml di media e contare le cellule utilizzando un emocitometro. <ol><li> Rimuovere 10 ml di sospensione cellulare e posto in una provetta da 0,5 ml. </li><li> Aggiungere 10 ml di Trypan Blue alla sospensione cellulare e mescolare con la punta della pipetta. </li><li> Pipettare 10 ml di cellule colorate in una camera emocitometro. </li><li> Contare le celle in emocitometro a 10xingrandimento. <ol><li> Contare le cellule vive (piccole palline bianche) per 4 dei 9 grandi piazze. Contare solo le cellule vive che non appaiono blu scuro dalla macchia Trypan Blue. </li><li> Calcolare il numero medio di cellule per piazzale, causando il numero di cellule x 10 4 cellule / ml nel cellule sospensione originale. </li><li> Alveoli ad una densità di 1 x 10 5 cellule / ml con un totale di 5 ml in ciascuna beuta T25. </li></ol></li><li> Cellule di coltura tra il 70% e l&#39;80% di confluenza prima degli esperimenti di inizio. Aggiorna i media ogni 2-3 giorni o secondo necessità. </li></ol></li></ol> 2. Stampa Preparazione della superficie <ol><li> Mark un rettangolo con pennarello sul fondo di una cultura trattati tessuto polistirene (TCTPS) 12 pozzetti la dimensione della testina di stampa (7 mm x 19 mm). </li><li> Pipettare 50 microlitri di siero fetale bovino in area rettangolare e diffonderla sull&#39;intera regione con la punta. </li><li> Lasciare la piastra di Petriin una sterile biosicurezza cappuccio O / N per consentire al posto del siero si asciughi completamente. Queste piastre devono essere preparati non più di due giorni prima dell&#39;uso. </li></ol> 3. Stampa sommerso <ol><li> Lavare la testina di stampa con acqua distillata. <ol><li> Riempire una capsula di Petri 60 mm Con acqua distillata e ancorare la testina di stampa sulla superficie. </li><li> Fluire acqua distillata attraverso ciascuna delle linee per 2 min a 150 ml / min usando una pompa pneumatica. </li><li> Eliminare l&#39;acqua dalla piastra di Petri e riempirlo con acqua pulita. </li><li> Spostare la testina di stampa su e giù in acqua 3 volte. </li></ol></li><li> Ancorare il centro della testa di stampa sul posto siero rivestite in 12 piastra ben pre-preparati. </li><li> Prime la testina di stampa con i media completi pre-riscaldato, 300 ml per canale. </li><li> Stampa cellule sospeso ad una concentrazione di 50.000 cellule / ml sulla superficie e 60 microlitri / min, 100 microlitri per canale. </li><li> Posizionare la testina di stampa, a sinistra ancorata contro ilsuperficie, e il collettore in un incubatore di coltura cellulare impostato a 5% di CO 2 e 37 ° C per 2 h. </li><li> Dopo l&#39;incubazione 2 ore, rimuovere la testina di stampa e posizionare il coperchio sul piatto di coltura. Il momento in cui la testina di stampa rimosso è considerato il punto di tempo 0 ore. </li></ol> 4. Standard di coltura cellulare <ol><li> Aggiungere 1 ml di supporti preriscaldata a una piastra TCTPS 12 pozzetti siero-spotted preparato al punto 2. </li><li> Prelevare 1 ml della sospensione cellulare residua dal passaggio 2 e pipetta in un singolo pozzetto di una 12 pozzetti TCTPS piastra. Ciò produrrà una coltura contenente 50.000 cellule nel piatto. </li><li> Posizionare la piastra di coltura cellulare in un incubatore a 37 ° C per 2 h. </li><li> Dopo l&#39;incubazione 2 hr iniziare il cronometraggio; coerenza tra campioni stampati e di semina, questo è considerato il punto di tempo 0 ore. </li></ol> 5. Culture Visualization <ol><li> Dopo 0, 2, 24, e 48 hr cellule prese da ciascuno dei due metodi described sopra e immagine utilizzando un microscopio invertito standard. <ol><li> Colorare le cellule con ioduro di propidio, una macchia rosso fluorescente che è incorporato solo nel nucleo delle cellule morte. <ol><li> Lavare delicatamente le cellule 3 volte con 1 ml di tampone fosfato isotonico con calcio e magnesio (PBS + +) per rimuovere eventuali detriti. </li><li> Aggiungere 1 ml di pre-riscaldato PBS + + a ciascun recipiente di coltura. </li><li> Aggiungere 1 ml di soluzione di ioduro di propidio magazzino (1 mg / ml) per ogni nave cultura. </li><li> Incubare le cellule colorate con ioduro di propidio a 37 ° C per 10 min. </li></ol></li><li> Immagine le cellule utilizzando un microscopio invertito a 10x e 40x di ingrandimento. </li></ol></li><li> Eliminare le celle in un contenitore a rischio biologico appropriato. </li></ol>

<ol><li>Fernandes, T. G., Diogo, M. M., Clark, D. S., Dordick, J. S., Cabral, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+cellular+microarray+platforms%3A+applications+in+drug+discovery%2C+toxicology+and+stem+cell+research%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">High-throughput cellular microarray platforms: applications in drug discovery, toxicology and stem cell research.</a> Trends in Biotechnology. 27, 342-349 (2009).</li>
<li>Michelini, E., Cevenini, L., Mezzanotte, L., Coppa, A., Roda, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-based+assays%3A+fuelling+drug+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Bioanal+Chem%22%5BJournal%5D)">Cell-based assays: fuelling drug discovery.</a> Anal Bioanal Chem. 398, 227-238 (2010).</li>
<li>Gao, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+developments+in+microfluidic+devices+for+in+vitro+cell+culture+for+cell-biology+research%5BTitle%5D)+AND+%22TrAC+Trends+in+Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Recent developments in microfluidic devices for in vitro cell culture for cell-biology research.</a> TrAC Trends in Analytical Chemistry. 35, 150-164 (2012).</li>
<li>Geysen, H. M., Schoenen, F., Wagner, D., Wagner, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combinatorial+compound+libraries+for+drug+discovery%3A+an+ongoing+challenge%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Drug+Discovery%22%5BJournal%5D)">Combinatorial compound libraries for drug discovery: an ongoing challenge.</a> Nature Reviews Drug Discovery. 2, 222-230 (2003).</li>
<li>Xu, Y., Shi, Y., Ding, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+chemical+approach+to+stem-cell+biology+and+regenerative+medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A chemical approach to stem-cell biology and regenerative medicine.</a> Nature. 453, 338-344 (2008).</li>
<li>Khademhosseini, A., Langer, R., Borenstein, J., Vacanti, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscale+technologies+for+tissue+engineering+and+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Microscale technologies for tissue engineering and biology.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 2480-2487 (2006).</li>
<li>Bhadriraju, K., Chen, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+cellular+microenvironments+to+improve+cell-based+drug+testing%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Discovery+Today%22%5BJournal%5D)">Engineering cellular microenvironments to improve cell-based drug testing.</a> Drug Discovery Today. 7, 612-620 (2002).</li>
<li>Castel, D., Pitaval, A., Debily, M. -A., Gidrol, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+microarrays+in+drug+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Discov.+Today%22%5BJournal%5D)">Cell microarrays in drug discovery.</a> Drug Discov. Today. 11, 616-622 (2006).</li>
<li>Tsui, J. H., Lee, W., Pun, S. H., Kim, J., Kim, D. -H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidics-assisted+in+vitro+drug+screening+and+carrier+production%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Drug+Delivery+Reviews%22%5BJournal%5D)">Microfluidics-assisted in vitro drug screening and carrier production.</a> Advanced Drug Delivery Reviews. , (2013).</li>
<li>Gottwald, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+chip-based+platform+for+the+in+vitro+generation+of+tissues+in+three-dimensional+organization%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">A chip-based platform for the in vitro generation of tissues in three-dimensional organization.</a> Lab on a Chip. 7, 777-785 (2007).</li>
<li>Liu, R., Lee, A. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLiu%2C+R+%22Integrated+Biochips+for+DNA+Analysis%22">Integrated Biochips for DNA Analysis</a>. , Springer. (2008).</li>
<li>Natarajan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous-flow+microfluidic+printing+of+proteins+for+array-based+applications+including+surface+plasmon+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Continuous-flow microfluidic printing of proteins for array-based applications including surface plasmon resonance imaging.</a> Analytical Biochemistry. 373, 141-146 (2008).</li>
<li>Natarajan, S., Hatch, A., Myszka, D. G., Gale, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimal+Conditions+for+Protein+Array+Deposition+Using+Continuous+Flow%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Optimal Conditions for Protein Array Deposition Using Continuous Flow.</a> Anal. Chem. 80, 8561-8567 (2008).</li>
<li>Keighley, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+need+for+high+throughput+kinetics+early+in+the+drug+discovery+process%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">The need for high throughput kinetics early in the drug discovery process.</a> , Summer 2011. Drug Discovery World Online at:
 
 <a target="_blank" href="http://www.ddw-online.com/p-149288">http://www.ddw-online.com/p-149288</a> (2011).</li>
<li>Xu, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+three-dimensional+in+vitro+ovarian+cancer+coculture+model+using+a+high-throughput+cell+patterning+platform%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+J%22%5BJournal%5D)">A three-dimensional in vitro ovarian cancer coculture model using a high-throughput cell patterning platform.</a> Biotechnol J. 6, 204-212 (2011).</li>
<li>Tuckwell, D. S., Weston, S. A., Humphries, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrins%3A+a+review+of+their+structure+and+mechanisms+of+ligand+binding%5BTitle%5D)+AND+%22Symposia+of+the+Society+for+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Integrins: a review of their structure and mechanisms of ligand binding.</a> Symposia of the Society for Experimental Biology. 47, 107(1993).</li>
<li>Roberts, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+mixed+self-assembled+monolayers+presenting+RGD+and+%28EG%29+3OH+groups+to+characterize+long-term+attachment+of+bovine+capillary+endothelial+cells+to+surfaces%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Using mixed self-assembled monolayers presenting RGD and (EG) 3OH groups to characterize long-term attachment of bovine capillary endothelial cells to surfaces.</a> Journal of the American Chemical Society. 120, 6548-6555 (1998).</li>
<li>Chandra, R. A., Douglas, E. S., Mathies, R. A., Bertozzi, C. R., Francis, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programmable+cell+adhesion+encoded+by+DNA+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22Angewandte+Chemie%22%5BJournal%5D)">Programmable cell adhesion encoded by DNA hybridization.</a> Angewandte Chemie. 118, 910-915 (2006).</li>
<li>Hsiao, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+cell+surface+modification+with+DNA+for+the+capture+of+primary+cells+and+the+investigation+of+myotube+formation+on+defined+patterns%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Direct cell surface modification with DNA for the capture of primary cells and the investigation of myotube formation on defined patterns.</a> Langmuir. 25, 6985-6991 (2009).</li>
<li>Black, C. B., Duensing, T. D., Trinkle, L. S., Dunlay, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-Based+Screening+Using+High-Throughput+Flow+Cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22ASSAY+and+Drug+Development+Technologies%22%5BJournal%5D)">Cell-Based Screening Using High-Throughput Flow Cytometry.</a> ASSAY and Drug Development Technologies. 9, 13-20 (2011).</li>
<li>Derby, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioprinting%3A+inkjet+printing+proteins+and+hybrid+cell-containing+materials+and+structures%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mater.+Chem%22%5BJournal%5D)">Bioprinting: inkjet printing proteins and hybrid cell-containing materials and structures.</a> J. Mater. Chem. 18, 5717-5721 (2008).</li>
<li>Onoe, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+Microfabrication%3A+Observing+Intercellular+Interactions+Using+Lithographically-Defined+DNA+Capture+Sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Cellular Microfabrication: Observing Intercellular Interactions Using Lithographically-Defined DNA Capture Sequences.</a> Langmuir. 28, 8120-8126 (2012).</li>
<li>Hsiao, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA-Coated+AFM+Cantilevers+for+the+Investigation+of+Cell+Adhesion+and+the+Patterning+of+Live+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Angewandte+Chemie+International+Edition%22%5BJournal%5D)">DNA-Coated AFM Cantilevers for the Investigation of Cell Adhesion and the Patterning of Live Cells.</a> Angewandte Chemie International Edition. 47, 8473-8477 (2008).</li>
</ol>

Gli autori sono dipendenti e gli azionisti di Wasatch Microfluidics che produce reagenti e / o strumenti utilizzati in questo manoscritto.

La tecnologia di stampa 3D microfluidica qui descritta è l&#39;unica in grado di stampa microfluidically array di celle in un liquido riempito bene, cioè una superficie sommersa. Stampando sulle superfici sommerse, microarray di cellule possono essere prodotti che mantengono il fenotipo cellulare fisiologicamente rilevanti di cellule così come la capacità di multiplex cellule sul fondo di un singolo pozzetto Figura 4. I risultati di questo studio mostrano che microfluidically stampa cellule ris...

I recenti progressi nel settore farmaceutico hanno portato ad un crescente interesse nell&#39;utilizzo di microarray cellulari nel processo di scoperta della droga per lo screening di farmaci e analisi cytotoxicological 1,2,3. Lo sviluppo di test in vitro in high-throughput e metodi di screening utilizzando microarrays di cellule faciliterebbe lo sviluppo rapido ed efficace di farmaci candidati, così come anticipo la comprensione fondamentale della cella 1,4. L&#39;approccio tradizionale allo screening con celle utilizza piattaforme e piastre convenzionali; tuttavia questo approccio è limitata a causa del costo elevato, produttività limitata, e la limitata capacità di informazioni quantitative sulla funzione delle cellule 1,5. A causa di queste limitazioni, la ricerca nel campo delle tecnologie di microarray cellulare è fiorente per la caratterizzazione molecolare biologica, ingegneria dei tessuti, e la droga lo screening 1,6. I vantaggi di microarrays cellulari includono l&#39;uso campione più piccolo, effetti minimi difenotipo cellulare eterogeneità mascheratura informazioni, e soprattutto la capacità di automatizzare saggi per più applicazioni high-throughput 1,7,8. L&#39;industria farmaceutica utilizza attualmente high-throughput cell-based test di screening con colture monostrato di cellule 2D per lo screening di stupefacenti in pozzetti microtiter 9. Cellule multiplexing in pozzetti di piastre microtiter offre la possibilità di throughput più elevato con opzioni di sperimentazione uniche. Inoltre, le attuali tecnologie di microarray cellulari permettono alle cellule di asciugare in grado di modificare radicalmente il fenotipo delle cellule in vivo 10,11. Per superare questi problemi, la MFCA è stata progettata ed è mostrato in Figura 1. Il disegno dei fluidica MFCA 3D consente la punta della testina di stampa di figura 1 per essere abbassato in un bagno e compresso contro una superficie per formare un sigillo. La punta morbido silicone della testina di stampa si comporta come unguarnizione e forma una guarnizione reversibile. La tecnologia MFCA è in modo unico adatta per interfacciarsi con superfici sommerse, che è richiesto per entrambe le colture cellulari e sistemi fetta dei tessuti, ed è difficile o impossibile con la maggior parte degli altri approcci. Pins o stampa ink-jet non funzionano, e dispositivi microfluidici 2D non sono adatti per la deposizione o l&#39;interfacciamento con grandi array di punti discreti. Inoltre, da miniaturizzazione e localizzare l&#39;esperimento - il microarray cellulare - il MFCA supera i principali problemi connessi con high-throughput a base di cellule test di screening. Il CFM utilizza le reti di canali 3D per ciclo di piccoli campioni di fluido del volume oltre riprese piatte microscopici su una superficie di 12,13. Mediante stampa con flusso, biomolecole, cellule e altri reagenti sono mantenuti in un ambiente liquido durante il processo di stampa, consentendo la stampa di biomolecole e cellule sensibili senza esposizione all&#39;aria, che ostacola le tecniche di stampa cella corrente. E &#39;anche possibile stampare direttamente da materiale grezzo come ibridoma o surnatanti forniti vi è un meccanismo di cattura sulla superficie dell&#39;array. L&#39;obiettivo di questo manoscritto è spiegare in dettaglio la stampa sommersa di due tipi di cellule su una superficie.

<table><tbody><tr><td>Microspotter a flusso continuo</td><td>Wasatch Microfluidics</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Celle NIH/3T3</td><td>ATCC</td><td>CRL-1658</td><td></td></tr><tr><td>Dubbleco's Modified Eagle Medium</td><td>Invitrogen</td><td>11965-092</td><td>Terreni di base per cellule</td></tr><tr><td>tampone HEPES</td><td>Invitrogen</td><td>15630-080</td><td>Additivo per terreni cellulari (pH di controllo)</td></tr><tr><td>Piruvato di sodio</td><td>Invitrogen</td><td>11360-070</td><td>Additivo per terreni cellulari</td></tr><tr><td>Penicillina-streptomicina&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>Additivo per terreni cellulari</td></tr><tr><td>Trypan blue</td><td>Invitrogen</td><td>15250-061</td><td>Cellule coloranti per il conteggio</td></tr><tr><td>Emocitometro</td><td>Fisher</td><td>267110</td><td>Camera cellulare per contare le cellule</td></tr><tr><td>Nikon Eclipse TS100</td><td>Nikon</td><td></td><td>Utilizzato per controllare le celle</td></tr><tr><td>Nikon Eclipse TE2000-U</td><td>Nikon</td><td></td><td>Utilizzato per la raccolta di immagini</td></tr><tr><td>Soluzione salina tamponata con fosfato (con calcio e magnesio)</td><td>Invitrogen</td><td>14040-133</td><td>Risciacquo delle cellule prima del passaggio e prima della colorazione con PI</td></tr><tr><td>TrypLE Express&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>A12177-01</td><td>Utilizzato per rimuovere le cellule dalla superficie</td></tr></tbody></table>

la stampa sommerso di celle su una superficie modificata utilizzando un flusso di microspotter continua

The Submerged Printing of Cells onto a Modified Surface Using a Continuous Flow Microspotter

La stampa di cellule per applicazioni di microarray presenta sfide significative, tra cui il problema di mantenere un fenotipo cellulare fisiologicamente rilevante dopo la stampa, una scarsa organizzazione e distribuzione delle cellule desiderate e l'incapacità di fornire farmaci e/o nutrienti ad aree mirate nell'array. La nostra tecnologia di stampa microfluidica 3D è in grado di sigillare e stampare array di celle su superfici sommerse in modo automatizzato e multiplexato. Il design della fluidica 3D MFCA (Microfluidic Cell Array) consente di abbassare la punta della testina di stampa in un pozzetto o in un piatto riempito di liquido e di comprimerla contro una superficie per formare una guarnizione. La punta in silicone morbido della testina di stampa si comporta come una guarnizione ed è in grado di formare una tenuta reversibile applicando pressione o allontanandosi. Altre tecnologie di stampa a celle, come le stampanti a spillo o a getto d'inchiostro, non sono in grado di stampare in applicazioni sommerse. La stampa su superficie sommersa è essenziale per mantenere i fenotipi delle cellule e per monitorare queste cellule su una superficie senza disturbare le caratteristiche della superficie del materiale. Stampando su superfici sommerse, vengono prodotti microarray cellulari che consentono lo screening dei farmaci e la valutazione della citotossicità in una moltitudine di aree, tra cui cancro, diabete, infiammazione, infezioni e malattie cardiovascolari.

Le cellule NIH/3T3 linea cellulare di fibroblasti sono stati stampati o seminate su una superficie immersa. Le cellule sono state coltivate ad una densità di 5 x 10 4 cellule per ml. Le cellule sono state seminate utilizzando tecniche di coltura cellulare tradizionali. Le cellule sono state stampate usando una grande formato, dodici flusso testina cella in cui i canali sono più grandi (~ 500 micron) che l&#39;CFM usato per proteine ​​e altre biomolecole. Le cellule sono state stampate o seminate su una superf...

Questa tecnologia di stampa microfluidica 3D stampa array di cellule su superfici sommerse. Descriviamo come gli array di cellule vengono erogati microfluidicamente in celle a flusso 3D su superfici sommerse. Stampando su superfici sommerse, sono stati prodotti microarray cellulari che consentono lo screening dei farmaci e la valutazione della citotossicità in una moltitudine di aree.

La stampa Sommerso di celle su una superficie modificata utilizzando un flusso di Microspotter continua

The printing of cells for microarray applications possesses significant challenges including the problem of maintaining physiologically relevant cell ...

L'obiettivo generale di questa procedura è stampare fibroblasti T3T3 su una superficie rivestita con siero. Questo viene ottenuto preassorbendo innanzitutto il siero su una superficie per colture cellulari. Il secondo passaggio consiste nella stampa di una sospensione di fibroblasti sulla superficie mediante un microspotter a flusso continuo, seguita dall'incubazione delle cellule a 37 gradi Celsius per due ore.Successivamente, le cellule stampate e le cellule seminate mediante coltura cellulare standard vengono colorate con ioduro di propidio e visualizzate al microscopio invertito per confronto. Infine, la microscopia a fluorescenza viene utilizzata per valutare la vitalità, la densità e la morfologia cellulare in punti temporali rilevanti. Il vantaggio principale di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la stampa a punti, è che la testina di stampa forma una guarnizione sulla superficie, consentendo alle cellule di essere stampate mentre sono immerse nel mezzo cellulare.Sebbene la stampa subacquea di cellule sia utile per lo screening di nuovi candidati farmaceutici in termini di sicurezza ed efficacia, tale tecnica risulta in generale vantaggiosa anche per altre applicazioni. Ad esempio, possiamo analizzare nuovi candidati farmaceutici su fette di tessuto, oppure utilizzarla come modello per sistemi organici, come nel caso di un modello di perfusione epatica.Generalmente, le persone nuove a questo metodo incontreranno difficoltà perché durante la preparazione della stampante e la stampa cellulare, l'aria non deve entrare nei tubi, altrimenti potrebbe causare la morte cellulare. Per iniziare, scongelare le cellule NIH 3T3 per due o tre minuti in un bagno a ricircolo a 37 gradi Celsius. Ri-sospendere le cellule in cinque millilitri di terreno completo e centrifugare a 1500 G per tre minuti.Rimuovere il soprannatante cellulare senza disturbare il pellet cellulare. Successivamente, risospendere le cellule in cinque millilitri di mezzo e trasferire 10 microlitri della sospensione cellulare in una provetta microcentrifuga da 0,5 millilitri. Poi, aggiungere 10 microlitri di triptan blu alla sospensione cellulare e mescolare con la punta della pipetta; pipettare 10 microlitri delle cellule colorate in una camera per emocitometro.Prima di contare le cellule a un ingrandimento di 10 x, contare le cellule vitali, che appaiono come piccole sfere bianche, in quattro dei nove quadrati grandi. Contare soltanto le cellule vitali che non presentano una colorazione blu scuro dovuta al colorante trippen blue. Calcolare il numero medio di cellule per quadrato grande, ottenendo così il numero di cellule moltiplicato per 10.000 cellule per millilitro nella sospensione cellulare originale.Quindi seminare le cellule a una densità di 100.000 cellule per millilitro, con un totale di cinque millilitri in ciascun flacone T25. Coltivare le cellule fino a raggiungere una confluenza compresa tra il 70 e l'80% prima di iniziare gli esperimenti. Per preparare la superficie di stampa, utilizzare un pennarello per delimitare un rettangolo delle dimensioni della testina di stampa sul fondo di una piastra in polistirene trattata per colture cellulari 12.Con una pipetta per piastre a pozzetti, aggiungere 50 microlitri di siero fetale bovino nell'area rettangolare e distribuirli su tutta la regione. Con la punta, lasciare la piastra a pozzetti in un'appaio di sicurezza biologica sterile durante la notte per permettere al campione di siero di asciugarsi completamente. Per iniziare la stampa sommersa, risciacquare la testina di stampa con acqua distillata.Quindi riempire una piastra di Petri da 60 millimetri con acqua distillata e agganciare la testina di stampa sulla superficie, facendo scorrere acqua distillata attraverso ciascuna delle linee per due minuti a 150 microlitri al minuto utilizzando una pompa pneumatica. Successivamente, eliminare l'acqua dalla piastra di Petri e riempirla con acqua pulita. In seguito, muovere la testina di stampa su e giù nell'acqua per tre volte.Posizionare al centro la testina di stampa sopra il punto rivestito con siero nella piastra da 12 pozzetti pre-preparata. Quindi eseguire la preparazione della testina di stampa con mezzo completo Prewarm a 300 microlitri per canale.Se si eseguono più stampe, aggiungere un risciacquo con candeggiante oltre al risciacquo con acqua tra una stampa e l'altra. Procedere quindi a stampare le cellule sospese a una concentrazione di 50.000 cellule per millilitro sulla superficie, a un flusso di 60 microlitri al minuto. 100 microlitri per canale.Dopo la stampa cellulare, posizionare la testina di stampa a sinistra agganciata contro la superficie e il collettore in un incubatore per colture cellulari. Impostare al 5% di anidride carbonica e 37 gradi Celsius per due ore. Al termine dell'incubazione di due ore, rimuovere la testina di stampa e posizionare il coperchio sulla piastra di coltura.Il momento in cui si rimuove la testina di stampa è considerato il punto temporale di ora zero. A scopo di confronto, viene eseguita anche una coltura cellulare standard. Aggiungere un millilitro di mezzo preriscaldato in una delle piastre da 12 pozzetti con siero, quindi prelevare un millilitro della sospensione cellulare rimanente e trasferirlo con pipetta in un singolo pozzetto della piastra da 12 pozzetti.Questo produrrà una coltura contenente 50.000 cellule nella piastra. Posizionare la piastra con la coltura cellulare in un incubatore a 37 gradi Celsius per due ore. Al termine dell'incubazione di due ore, iniziare il conteggio del tempo per garantire la coerenza tra i campioni stampati e quelli seminati.Questo viene considerato il punto temporale corrispondente all'ora zero. Dopo 0, 2, 24 e 48 ore, preparare le cellule ottenute con ciascuno dei due metodi per l'analisi mediante colorazione con ioduro di propidio, che viene incorporato solo nel nucleo delle cellule morte. Per prima cosa, risciacquare delicatamente le cellule tre volte con un millilitro di soluzione salina fosfato tamponata con calcio e magnesio per rimuovere eventuali detriti.Successivamente, aggiungere un millilitro di mezzo di coltura preriscaldato in ogni contenitore di coltura e quindi un microlitro di ioduro di propidio. Incubare la soluzione stock delle cellule marcate con ioduro di propidio a 37 gradi Celsius per 10 minuti prima di osservare le cellule mediante microscopio invertito con ingrandimenti 10 x e 40 x. Infine, smaltire le cellule in un apposito contenitore per rifiuti biologici.La linea cellulare di fibroblasti, le cellule NIH 3T3, sono state stampate o seminate su una superficie sommersa. Dopo la stampa e la semina, le cellule sono state visualizzate per valutare la densità e la morfologia in punti temporali rilevanti. Le immagini hanno mostrato che le cellule presentano fenotipi quasi identici in ciascun punto temporale e a ciascun ingrandimento.In base a questi dati, si è determinato che la stampa efficace era minima. La vitalità cellulare è stata valutata mediante colorazione con ioduro di propidio, che ha rivelato come la vitalità delle cellule stampate non fosse significativamente diversa rispetto a quella delle cellule non stampate per ciascun punto temporale. La differenza principale tra i due metodi di fissaggio delle cellule alla superficie è la densità delle cellule.La densità delle cellule stampate diminuisce di oltre il 50% al punto temporale di due ore, sia nelle cellule seminate che in quelle stampate. Sono necessari ulteriori studi per determinare la causa di questa riduzione. Tuttavia, i rapporti complessivi di densità stampata risultano significativamente più elevati rispetto a quelli delle cellule seminate.La densità cellulare stampata nella camera di flusso era approssimativamente 10 volte maggiore rispetto a quella delle cellule seminate in ogni punto temporale, considerando che le cellule venivano stampate alla stessa densità di semina, ma in un'area più ridotta. All'ultimo punto temporale, le cellule raggiungono la stessa densità, fenomeno probabilmente dovuto alla motilità cellulare e ai limiti di consumo delle risorse. Da quando è stata sviluppata, questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nei settori della scoperta di farmaci per studiare gli effetti della tossicità e dell'efficacia dei farmaci sulle cellule, contribuendo in ambiti ad alto impatto come il cancro, le malattie cardiache e altri campi di grande rilevanza.Utilizzando la stampa cellulare in immersione in combinazione con altre tecnologie come l'adesione, l'adesione cellulare programmabile, possiamo estendere l'applicabilità della tecnica alle cellule in sospensione per schermature ampliate nella scoperta e nello sviluppo di farmaci. Dopo aver visionato questo video, si dovrebbe avere una solida comprensione di come stampare cellule mediante la nostra tecnica di stampa in immersione.

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