Name: Ricostruzione di 3-Dimensional Volume Istologia e la sua applicazione per studiare mouse ghiandole mammarie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 59 s
Description: Scopri la ricostruzione di volumi istologici 3D per studiare le macrostrutture cellulari delle ghiandole mammarie nei topi. Questo metodo di registrazione delle immagini evidenzia differenze significative tra topi wild-type e mutanti Igfbp7.

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Gli autori desiderano ringraziare il Biomarker Imaging Research Laboratory (BIRL) del Sunnybrook Research Institute per i loro servizi di istologia. Il sostegno a questo lavoro è stato fornito dalla Terry Fox Foundation, dalla Canadian Breast Cancer Foundation, dalla Prairie-NWT e da una sovvenzione CIHR, #MOP-97996.

1. Specimen <ol><li> Accise le ghiandole mammarie chirurgicamente da wild-type CDH1 nonché IGFBP7-null mice tre giorni dopo l&#39;instaurarsi della lattazione. </li><li> Stendere le ghiandole su vetrini per contribuire a recuperare nativo della ghiandola mammaria morfologia. </li></ol> 2. Fissazione e Tissue Processing <ol><li> Fissare le ghiandole mammarie in folle tamponata 4% PFA O / N a 4 ° C. </li><li> Conservare le ghiandole in etanolo al 70% prima del trattamento del tessuto. </li><li> Trasferire le ghiandole a piccole cassette di trasformazione del tessuto. </li><li> Elaborare i tessuti utilizzando un processore tessuto automatizzato <ol><li> Disidratare tessuti ascendente etanolo e xilene bagni di etanolo al 70% per 45 minuti, 2 volte in etanolo al 95% per 45 minuti, 3 volte in 100% di etanolo per 1 ora e 2 volte in xilene per 45 min. </li><li> Permeare i tessuti con paraffina 3 volte per 1 ora ogni sotto vuoto con pressione applicata. </li></ol></li><li> Incorporare i tessuti in paraffina per formare blocchi, Per il sezionamento. </li></ol> 3. Istologia ed Blockface Imaging <ol><li> Tagliare i blocchi di paraffina utilizzando un microtomo rotativo fino a quando la paraffina in eccesso viene rimosso. </li><li> Utilizzare una fresatrice verticale per perforare fori di 1 mm in almeno due angoli del blocco di paraffina perpendicolare alla cassetta. </li><li> Montare il blocco tessuto sul microtomo rotativo. </li><li> Impostare il sistema di imaging blockface 19 davanti al microtomo. </li><li> Immagine blockface ottica catturare prima del sezionamento. </li><li> Tagliare i nastri di quattro sezioni a 5 micron di spessore sul microtomo. <ol><li> Trasferire i nastri al bagno di acqua fredda. </li><li> Separare la seconda e la quarta sezione del nastro e montarli su vetrini da microscopio. Scegliendo la seconda e la quarta sezione fornisce un divario tra 5 micron sezioni. </li><li> Espandere ciascuna sezione in un bagno di acqua calda (48 ° C) per unwrinkle esso, poi ri-montarlo sul vetrino da microscopio. NOTA: CUtting, montaggio, unwrinkling sezioni causare alcune distorsioni della sezione, come la lacrima, piega, restringimento e l&#39;espansione. Questi manufatti complicano la registrazione delle sezioni istologici. </li><li> Macchiare le sezioni con H &amp; E con un Stainer automatico. </li><li> I vetrini coprioggetto utilizzando un montavetrini automatico. </li><li> Digitalizzare le diapositive utilizzando uno scanner diapositiva istologia digitale alla risoluzione di interesse. Per questo protocollo è l&#39;ingrandimento 20x e la risoluzione è 0.47 micron. </li><li> Down-campionare le immagini istologici per la risoluzione delle immagini blockface, 18 micron. </li></ol></li></ol> 4. Immagine registrazione <ol><li> Immagine Segmentazione e punto di selezione <ol><li> In blockface immagini misurano i valori di pixel dei fori di registrazione e usa il valore medio come una soglia fissa per segmentare i fori di registrazione negli angoli del blocco di paraffina. </li><li> Da alcune parti aggiuntive potrebbero anche essere segmentati dacon il limite fissato, utilizzare la circolarità e l&#39;area degli oggetti segmentati per trovare i buchi ed eliminare gli oggetti extra. Per fare questo, scrivere un piccolo codice e trovare il rapporto di (4π x area) / (perimetro) 2 per gli oggetti segmentati. Questo rapporto per oggetti rotondi è 1. </li><li> Per ogni ghiandola mammaria, selezionare un&#39;immagine blockface come riferimento e allineare il resto delle immagini blockface al riferimento utilizzando il centro dei fori di registrazione e tecniche di registrazione basato limite. </li><li> Per le immagini blockface allineate, segmento manualmente o estrarre il tessuto dallo sfondo. Utilizzare l&#39;oggetto più consistente nella maschera per il resto del protocollo. </li><li> Per H &amp; E sezioni seguire le istruzioni riportate di seguito per la segmentazione automatica. <ol><li> Utilizzare Otsu soglia tecnica 20 alle immagini segmento dallo sfondo e creare maschere binari delle immagini istologici. </li><li> Individuare e selezionare l&#39;oggetto più consistente in ogni maschera usando l&#39;histogram degli oggetti etichettati. </li><li> Estrarre i un pixel di larghezza punti di confine sia da istologia e maschere blockface. </li><li> Utilizzare algoritmo codice catena 21, per rappresentare i punti di confine da una sequenza di lineare a tratti adatta. </li></ol></li></ol></li><li> Registrazione rigida iniziale <ol><li> Utilizzare Fourier descrittori algoritmo 22, per trovare la rigida iniziale trasformazione tra i punti di confine di istologia e le loro immagini blockface corrispondenti. Questo iniziale di trasformare comprende i fattori di conversione, rotazione e scala. </li><li> Trasformare ogni immagine istologia con l&#39;iniziale di trasformazione ottenuto dal passaggio precedente. </li></ol></li><li> Affinamento della registrazione rigido <ol><li> Rimuovere le sezioni ad alta curvatura del bordo dal profilo istologico usando un filtro palla che rotola 23. </li><li> Selezionare 500 punti dei restanti istologici punti di confine in modo casuale con distribuzione uniforme. </li><li> Trasformare il laistologia punti di confine casuali con la trasformazione iniziale ottenuto da descrittori di Fourier. </li><li> Selezionare l&#39;intero insieme di blockface punti di confine e utilizzare iterativi più vicini Points (ICP) 24 algoritmo per trovare la trasformazione rigida tra i punti blockface di confine, di destinazione e di istologia punti di confine casuali. </li><li> Trasforma le immagini istologici allineate ottenuti dalla fase precedente e la pila di immagini di istologia allineate crea il volume istologia. </li><li> Utilizzare un software di visualizzazione 3D per creare una immagine visiva del volume istologia. </li></ol></li><li> Visualizzazione della Pila di immagini a ingrandimento 5x <ol><li> Down-assaggiare le immagini istologici originali a 5x ingrandimento. </li><li> Ritagliare la regione di interesse in una delle immagini istologici. </li><li> Calcolare la posizione di tale regione in altre immagini istologici 5x utilizzando la combinazione delle trasformazioni rigide delle due fasi di registrazione. </li><li> Ritagliare la regions di interesse per la stessa regione dimensioni in tutte le altre immagini di istologia. </li><li> Infine definire l&#39;allineamento tra le regioni manualmente. Scrivere un programma che sovrappone due immagini e permette di selezionare i valori di rotazione e traslazione di una delle immagini sopra l&#39;altra e quindi salva l&#39;immagine trasformata quando l&#39;allineamento è accettata. </li><li> Guarda le pile delle regioni istologici 5x allineati utilizzando un software di visualizzazione 3D. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare

In questo studio, abbiamo sviluppato una registrazione workflow un&#39;immagine di ricostruire un volume istologia 3D da immagini seriali istologia 2D, che non richiede punti di riferimento interni scelti a caso o marcatori fiduciali impiantati all&#39;interno del tessuto, che potrebbero distorcere il tessuto. Con il metodo descritto, immagini blockface ottici stessi vengono utilizzati come immagini di riferimento prima del sezionamento. Usiamo fori esterni praticati nel blocco di paraffina per aiutare ad allineare le i...

IGFBP7 (insulina come la proteina legante il fattore di crescita 7) è un membro della famiglia delle proteine ​​IGF-binding, e ha dimostrato di legarsi al recettore IGF1 4. Down-regolazione di IGFBP7 è noto essere correlata con la prognosi nel cancro al seno 5, mentre la reintroduzione del IGFBP7 in modelli di tumore dello xenotrapianto inibisce notevolmente la crescita dei tumori 6 attraverso l&#39;induzione di apoptosi e senescenza cellulare 7. Al fine di studiare gli effetti di IGFPB7, un mouse IGFBP7-null è stato creato 5 (dati non pubblicati). Mentre questi topi non sviluppano tumori, mostrano cambiamenti nella istologia delle ovaie, muscoli e nel fegato, nonché difetti di sviluppo della ghiandola mammaria patterning (dati non pubblicati). Il fenotipo difettoso è stato indicato come i topi nulli hanno dimensioni dei cuccioli più piccoli e sono in grado di sostenere più cucciolate di grandi dimensioni (dati non pubblicati). Volumi di istologia 3D hanno il potenziale di fornire informat utiliion per le analisi quantitative e comparative e la valutazione di risultati patologici in immagini mediche volumetriche. Confocale tridimensionale, microscopia a due fotoni può fornire cellule di alta risoluzione informazioni morfologica della ghiandola alla misura locale 14, ma ha un limitato campo di vista e profondità. Ricostruzione del volume Istologia fornisce ulteriori informazioni su una maggiore estensione spaziale. Utilizzando approcci tradizionali certa distorsione è anticipata durante la preparazione di sezioni istologiche, come il restringimento, espansione, lacrime e pieghe. Queste distorsioni rendono difficile registrare immagini istologiche seriali in una pila 3D per ricostruire un volume 3D. Poiché il numero di sezioni consecutive con difetti aumenta le somiglianze tra sezioni intatte ridotta e conseguentemente rende il processo di registrazione più complicato. Diversi metodi sono stati proposti per registrare sezioni istologiche e per creare un istologia vo continualume. Alcune tecniche dipendono da variazioni di intensità 8, e altri sono basati sulla forma delle sezioni 9. Per alcuni esemplari le strutture anatomiche possono essere utilizzate come punti di riferimento 10,11 insieme basato limite-metodi di registrazione 12,13. Ma queste strutture interne potrebbero non essere rilevabile durante l&#39;intero volume e per alcuni esemplari presenti strutture anatomiche affidabili possono essere identificati. Alcuni gruppi hanno utilizzato un approccio di registrazione pair-wise e registrato le immagini istologia consecutive una all&#39;altra utilizzando profili o strutture anatomiche 16-18. Registrazione sezioni istologiche seriali l&#39;un l&#39;altro senza l&#39;uso di immagini di riferimento può propagare errore di registrazione e cambiare la forma reale del volume istologia. Approccio registrazione Pair-saggio si basa sulla coerenza della forma delle sezioni istologici e le strutture interne per tutta la pila di immagini; quindi richiede denso campionamento del campione, chepotrebbe non sempre è possibile, ad esempio, per i campioni clinici. In questo gasdotto usiamo immagini blockface come un insieme di immagini di riferimento per il volume istologia ricostruzione 19. Blockface immagini sono prese dei blocchi di tessuto paraffina dopo il montaggio sul microtomo e prima di ogni sezione viene tagliata. Così, danni a individuo sezioni seriali taglio non interferisca con la registrazione di sezioni seriali 8,11,15. Catturiamo le immagini blockface in modo diverso dagli altri gruppi. Le immagini dei volti blocco ottico vengono raggiunti con un telecentrico per eliminare o minimizzare la canna e prospettiva distorsione, che di solito si verifica quando si utilizzano lenti regolari in ottica. Questo è uno dei vantaggi del metodo proposto rispetto agli altri metodi pubblicati, che eseguono l&#39;imaging blockface utilizzando lenti regolare. Le immagini sono riprese con una leggera angolazione obliqua di utilizzare la riflessione della superficie del blocco per migliorare il contrasto tra il TISSsuperficie ue e paraffina e di eliminare l&#39;ombra del tessuto in profondità sotto la superficie paraffina. Un filtro fotografico è anche usato per polarizzare la luce proveniente dalla superficie del blocco e il tessuto per bilanciare il contrasto 19. Per correggere lo spostamento del blocco sul microtomo rotativo da due a tre fori sono realizzati negli angoli del blocco, che sono facilmente rilevabili nelle immagini blockface. I centroidi di questi fori sono usati insieme con la registrazione rigida a base di riferimento-per allineare le immagini blockface.

<table><tbody><tr><td>16% PFA</td><td>VWR International</td><td>15710</td><td>16% Soluzione di paraformaldeide</td></tr><tr><td>Piccole cassette per il trattamento dei tessuti VWR</td><td>International</td><td>CA95029-956</td><td></td></tr><tr><td>Leica ASP300 Processatore automatizzato di tessuti</td><td>Leica</td><td>14047643515</td><td></td></tr><tr><td>100% Etanolo</td><td>Fisher Scientific</td><td>S25307B</td><td></td></tr><tr><td>Xilene</td><td>VWR International&nbsp;</td><td>CA95057-822</td><td></td></tr><tr><td>Paraffina</td><td>Thermo Fisher</td><td>39501006</td><td>Mezzo di inclusione tissutale Paraplast</td></tr><tr><td>Centro di inclusione Leica EG 1160</td><td></td> Microtomo rotativo Leica <td></td><td></td></tr><tr><td>Leica</td><td></td> Fresatrice Leica <td></td><td></td></tr><tr><td>Vetrini</td><td>per microscopio Argo</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>VWR International&nbsp;</td><td>CA48312-015</td><td></td></tr><tr><td>H& E macchia</td><td>VWR International</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Coloratore</td><td></td><td></td><td></td>automatico</tr><tr><td>Vetrini&nbsp;</td><td>VWR International&nbsp;</td><td>48404-452</td><td></td></tr><tr><td>MEDITE RCM 7000 vetrino coprioggetti</td><td>MEDITE</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Leica SCN400 scanner per vetrini</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MATLAB</td><td>MathWorks Inc</td><td>MATLAB 2007b</td><td>Software di sviluppo</td></tr><tr><td>MeVisLab</td><td>MeVis Medical Solutions AG</td> Software di <td>visualizzazione 3D</td> <td>MeVisLab 2.1</td></tr></tbody></table>

ricostruzione di 3-dimensional volume istologia e la sua applicazione per studiare mouse ghiandole mammarie

Reconstruction of 3-Dimensional Histology Volume and its Application to Study Mouse Mammary Glands

Ricostruzione del volume Istologia facilita lo studio della forma 3D e variazione di volume di un organo a livello di macrostrutture costituiti di cellule. Può anche essere usato per studiare e validare nuove tecniche e algoritmi di imaging medico volumetrico e terapie. Creazione di atlanti 3D ad alta risoluzione di diversi organi 1,2,3 è un&#39;altra applicazione di ricostruzione del volume istologia. Ciò fornisce una risorsa per indagare strutture tissutali e la relazione spaziale tra le varie funzioni cellulari. Vi presentiamo un metodo di registrazione di immagini per la ricostruzione del volume istologia, che utilizza una serie di immagini blockface ottiche. Il volume istologia ricostruito rappresenta una forma affidabile del campione trasformati senza propagate errore di registrazione post-processing. I ematossilina eosina (H &amp; E) sezioni colorate di due ghiandole mammarie topo sono stati registrati per le loro immagini blockface corrispondenti utilizzando punti di confine estratti dal ndrges del campione nelle immagini di istologia e blockface. La precisione della registrazione è stata valutata visivamente. L&#39;allineamento delle macrostrutture delle ghiandole mammarie stata anche valutata visivamente ad alta risoluzione. Questo studio delinea le diverse fasi di questa immagine registrazione conduttura, che vanno dalla escissione della ghiandola mammaria fino alla ricostruzione 3D del volume istologia. Mentre le immagini di istologia 2D rivelano le differenze strutturali tra coppie di sezioni, il volume istologia 3D offre la possibilità di visualizzare le differenze di forma e di volume delle ghiandole mammarie.

Un inconveniente di tradizionali tecniche di microscopia è che la comprensione di un organo a livello microscopico è limitata ad un campo di vista alla volta. Anche &quot;totale informative&quot; slides, che forniscono intere sezioni di scorrimento, non riescono a fornire informazioni tridimensionali. Con lo sviluppo di tutta la diapositiva, tecnologie di scansione dinamica, la nostra capacità di vedere una sezione nella sua interezza è aumentata, tuttavia estrapolando richiede strutture 3D ricostruzione del volume isto...

Presentiamo un approccio di registrazione delle immagini per la ricostruzione del volume istologico tridimensionale (3D), che facilita lo studio dei cambiamenti di un organo a livello di macrostrutture costituite da cellule. Utilizzando questo approccio, abbiamo studiato i cambiamenti 3D tra ghiandole mammarie wild-type e Igfbp7-null.

Ricostruzione di 3-Dimensional Volume Istologia e la sua applicazione per studiare mouse ghiandole mammarie

Histology volume reconstruction facilitates the study of 3D shape and volume change of an organ at the level of macrostructures made up of cells. It can ...

L'obiettivo generale del seguente video è presentare un approccio di registrazione delle immagini per l'istologia tridimensionale e la ricostruzione volumetrica allo studio delle modifiche nella macrostruttura cellulare della mammella. A tale scopo, le ghiandole mammarie vengono asportate da topi tre giorni dopo l'inizio della lattazione, sia di tipo selvatico sia privi del fattore di crescita simile all'insulina binding protein sette, topi null per IGF BP sette. Le ghiandole vengono quindi processate e incluse in blocchi di paraffina per la sezionatura.Successivamente vengono acquisite immagini ottiche della superficie del blocco di tessuto e il blocco viene sezionato. Vengono catturate immagini dei sezioni e, mediante un software personalizzato, ciascun sezione viene allineata all'immagine corrispondente della superficie del blocco per ricostruire il volume istologico della ghiandola mammaria. I dati ottenuti evidenziano le differenze di dimensione tra ghiandole mutanti e di tipo selvatico.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la microscopia confocale tridimensionale a doppio passaggio, è che fornisce informazioni su un'estensione spaziale molto maggiore. Questo metodo può inoltre essere utilizzato per indagare e validare nuove tecniche e algoritmi nell'imaging medico volumetrico e nelle terapie, oltre a consentire l'analisi tridimensionale ad alta risoluzione di diversi organi. Il volume di istologia ricostruito rappresenta una rappresentazione affidabile del campione in esame, senza errori di registrazione propagati.L'idea per questo metodo è nata quando abbiamo notato che i topi nulli per IGF P seven hanno dimensioni di nidiata più ridotte e non sono in grado di sostenere più nidiate di grandi dimensioni, quindi abbiamo deciso di analizzare la struttura delle loro ghiandole mammarie. Una volta che il tessuto è stato incluso in paraffina, utilizzare un microtomo rotatorio per sagomare il blocco fino alla rimozione dell'eccesso di paraffina. Successivamente, utilizzando una fresatrice verticale, praticare fori di un millimetro in almeno due angoli del blocco di paraffina perpendicolarmente alla cassetta, quindi montare il blocco di tessuto sul microtomo rotatorio.Successivamente, per configurare il sistema di imaging della superficie del blocco davanti al microtomo, posizionare una fotocamera con un obiettivo tele a un leggero angolo rispetto alla superficie del blocco di tessuto. La fotocamera deve essere collegata a un computer posizionato davanti al microtomo. Quindi, posizionare una sorgente luminosa davanti al blocco in modo che la fotocamera catturi il riflesso della luce proveniente dal blocco.Regolare l'angolazione della telecamera finché il tessuto sulla superficie del blocco non risulti facilmente distinguibile dalla paraffina circostante. Acquisire un'immagine ottica della superficie del blocco. Successivamente, utilizzando il microtomo, tagliare nastri di quattro sezioni, spesse cinque micron.Trasferire i nastri in un bagno di acqua fredda, separare le sezioni del nastro, quindi prelevare la seconda e la quarta sezione dall'acqua fredda e posizionarle su un vetrino. Trasferirle in un bagno di acqua calda per rimuovere le grinze. La scelta della seconda e della quarta sezione garantisce un intervallo di cinque micron tra le sezioni.Dopo averli stirati, riposizionare le sezioni sui vetrini microscopici prelevandoli con una spatola. Come in precedenza, si noti che il taglio, il montaggio e la stiratura delle sezioni possono causare alcune distorsioni, come strappi, pieghe, restringimenti ed espansioni. Questi artefatti complicano la registrazione delle sezioni istologiche.Colorare i preparati con ematossilina ed eosina (h e d) utilizzando uno strainer automatico. Quindi coprire i vetrini con un coprioggetti automatico e digitalizzare i vetrini mediante uno scanner digitale di istologia a una risoluzione di interesse. Per questo protocollo, l'ingrandimento è 20 x e la risoluzione è 0,47 micrometri.Questa sezione del video fornisce una panoramica del processo di registrazione delle immagini, che viene eseguito utilizzando un software personalizzato sviluppato nel nostro laboratorio in combinazione con MATLAB c plus plus. Utilizzando ITK, iniziare sottocampionando le immagini di istologia fino alla risoluzione delle immagini della superficie del blocco. Questo ridurrà le immagini di istologia di un fattore di 0,026.Successivamente, per la segmentazione delle immagini e la selezione dei punti, aprire alcune immagini della superficie del blocco in MATLAB e utilizzare lo strumento di selezione dati per misurare i valori dei pixel dei fori di registrazione. Utilizzare il valore medio dei pixel come soglia fissa per segmentare i fori di registrazione. Per rimuovere i segmenti aggiuntivi, utilizzare la circolarità e l'area degli oggetti segmentati per mantenere i fori ed eliminare i segmenti extra.Successivamente, per ciascuna ghiandola mammaria, selezionare un'immagine della superficie del blocco come riferimento. Allineare i centri dei fori di registrazione delle restanti immagini della superficie del blocco ai centri dei fori di registrazione dell'immagine di riferimento. Quindi, utilizzando le trasformazioni ottenute per i fori di registrazione, allineare manualmente le immagini della superficie del blocco; per le immagini allineate, delimitare o estrarre il tessuto dallo sfondo per le sezioni h e d.Utilizzare la tecnica di sogliatura OSU per segmentare le immagini dallo sfondo e creare maschere binarie delle immagini di istologia. Successivamente, utilizzando l'istogramma degli oggetti etichettati, identificare e selezionare l'oggetto di dimensione maggiore in ciascuna maschera. Estrarre i punti del contorno larghi un pixel sia dalle maschere di istologia che da quelle della superficie del blocco.Successivamente, utilizzare un algoritmo basato sui descrittori di Fourier per trovare la trasformazione rigida iniziale tra i punti del contorno delle immagini istologiche e le corrispondenti immagini della superficie del blocco. Questa trasformazione iniziale comprende i fattori di traslazione, rotazione e scala. Trasformare ogni immagine istologica mediante la trasformazione iniziale ottenuta nel passaggio precedente.Per affinare la registrazione rigida, rimuovere le sezioni dei bordi ad alta curvatura dal contorno istologico utilizzando un filtro di tipo "rolling ball". Successivamente, selezionare casualmente 500 punti distribuiti uniformemente tra i punti rimanenti del contorno istologico. Trasformare i punti del contorno istologico mediante la trasformazione iniziale ottenuta dai descrittori di Fourier.Utilizzare i punti del contorno della sezione e l'algoritmo dei punti più vicini iterativi per trovare la trasformazione rigida tra i punti del contorno della sezione e l'istologia. Punti del contorno casuali. Quindi trasformare le immagini istologiche ottenute dal passaggio precedente per creare un'immagine visiva del volume istologico nel software di visualizzazione 3D.Nel laboratorio Me vis, scegliere i moduli, selezionare varie opzioni e aggiungere il modulo per la composizione 3D da file 2D. Quindi scegliere immagine dal menu e aggiungere il modulo di conversione delle proprietà dell'immagine. Infine, aggiungere un modulo di visualizzazione 3D dai moduli per visualizzatori 3D.Fare doppio clic su componi 3D da file 2D per caricare le immagini e fare clic su crea 3D. Regolare la dimensione del voxel facendo doppio clic su conversione proprietà immagine e impostare la dimensione del voxel a 0.018 0.018 0.01. Visualizzare il volume facendo doppio clic su visualizza 3D.Infine, visualizzare la serie di immagini a un ingrandimento di cinque volte seguendo i passaggi descritti nel documento allegato. Per caratterizzare meglio la carenza del topo nullo per I-G-F-B-P sette, è stata eseguita la ricostruzione tridimensionale delle ghiandole mammarie come descritto in questo documento. Queste figure mostrano i volumi di istologia ricostruiti delle ghiandole mammarie di tipo selvatico e nulle.Si noti che la ghiandola mutante a destra è più corta e più stretta rispetto al tipo selvatico a sinistra, ma ha una profondità pressoché identica: 1,06 millimetri per la ghiandola di tipo selvatico e 1,02 millimetri per la ghiandola nulla. Inoltre, si osservi che le ghiandole di tipo selvatico a sinistra presentano poco tessuto stromale, indicato dalla colorazione rosa dell'eosina, mentre le ghiandole nulle a destra appaiono prevalentemente costituite da tessuto stromale. Qui, la colorazione con ematossilina, che identifica le cellule nucleate, mostra che la ghiandola nulla mantiene la sua densità, mentre la ghiandola di tipo selvatico sembra contenere principalmente strutture ghiandolari.Per indagare ulteriormente, qui sono state allineate immagini ad alta risoluzione dell'area del linfonodo. Si osservano grandi strutture che sarebbero state riempite di latte. Al contrario, la ghiandola priva di I-G-F-B-P sette presenta poche strutture ben sviluppate.Inoltre, queste strutture sono affollate da cellule simili a fibroblasti. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come creare una ricostruzione tridimensionale di un organo attraverso il ripristino di sezioni seriali di scansioni. Bene. Ora, nel tentativo di eseguire questa procedura, è importante ricordare di assegnare nomi coerenti ai vetrini e alle scansioni, poiché il loro numero sarà elevato, e l'organizzazione sequenziale è la chiave del successo nell'applicazione di questa procedura.Altri metodi, come l'immunohistochemia per marcatori specifici di cellule e malattie, possono essere eseguiti per rispondere a ulteriori domande, ad esempio: come la vascolarizzazione penetra in un tumore?

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Questo metodo viene illustrato come analizzare e valutare lo sviluppo della ghiandola mammaria e la funzione da topi. Escisse ghiandole mammarie sono valutati per il grado di sviluppo utilizzando montare tutto mentre emissione del latte viene valutata utilizzando un ossitocina a base di test contrazione delle cellule mioepiteliali.

Valutazione dello Sviluppo ghiandola mammaria e funzione in modelli murini

Utilizzando scansioni MRI (umane), software di imaging 3D e analisi immunoistologica, documentiamo i cambiamenti nei ventricoli laterali del cervello. La mappatura 3D longitudinale delle variazioni di volume del ventricolo laterale e la caratterizzazione dei cambiamenti cellulari periventricolari che si verificano nel cervello umano a causa dell'invecchiamento o della malattia vengono quindi modellati nei topi.

Modellazione 3D del laterale ventricoli e istologica Caratterizzazione del Tissue periventricolare di esseri umani e il mouse

Lo sviluppo della ghiandola mammaria nel roditore è stato tipicamente valutato utilizzando valutazioni descrittive o misurando gli attributi fisici di base. La densità di derivazione è un indicatore dello sviluppo mammario che è difficile da quantificare in modo oggettivo. Questo protocollo descrive un metodo affidabile per la valutazione quantitativa delle caratteristiche di ramificazione delle ghiandole mammarie.

Quantificazione della densità di raggruppamento nelle ghiandole del mammella di ratto intere con il metodo di analisi di Sholl

Abbiamo sviluppato un metodo per eliminare, elaborare, tagliare e colorare con successo, per la valutazione istopatologica, il tessuto mammario che era stato originariamente fissato su diapositive come supporti interi. Questo metodo può promuovere la raccolta e la valutazione dei supporti integrali delle ghiandole mammarie negli studi di orientamento test riproduttivo e di sviluppo.

Sezione delle ghiandole mammarie per tutti gli attacchi per identificazione delle lesioni

Qui, presentiamo un protocollo per l'isolamento del mouse intero, intatto ghiandole mammarie per studiare l'espressione di matrice extracellulare (ECM) e morfologia duttale. Mouse #4 ghiandole addominali sono state estratte da topi femmine nullipare 8-10 settimane vecchio, fissato in formalina neutra tamponata, sezionato e macchiato usando immunohistochemistry per proteine ECM.

Isolamento delle ghiandole mammarie Mouse intatto, intero per l'analisi di espressione di matrice extracellulare e la morfologia della ghiandola

Descriviamo tecniche per l'induzione della differenziazione di due linee epiteliali mammarie, HC11 ed EpH4. Mentre entrambi richiedono siero di vitello fetale, insulina e prolattina per produrre proteine del latte, le cellule EpH4 possono differenziarsi completamente in mammosfere in coltura tridimensionale. Questi modelli complementari sono utili per gli studi di trasduzione del segnale di differenziazione e neostrulasia.

Differenziazione delle cellule epiteliali del seno del topo HC11 e EpH4

Questo protocollo descrive una nuova finestra di imaging mammario con un coperchio sostituibile (R.MIW). La microscopia intravitale dopo l'impianto del R.MIW consente l'imaging longitudinale e di più giorni della ghiandola mammaria sana e malata con una risoluzione cellulare durante le diverse fasi dello sviluppo.

Microscopia intravitale longitudinale utilizzando una finestra di imaging mammario con coperchio sostituibile

Il metodo di imaging intravitale qui descritto utilizza la seconda generazione armonica di collagene e la fluorescenza endogena dal cofattore metabolico NAD(P)H per segmentare in modo non invasivo un microambiente tumorale non etichettato in compartimenti tumorali, stromali e vascolari per l'analisi approfondita delle immagini intravitali 4D.

Un approccio di segmentazione senza etichette per l'imaging intravitale del microambiente del tumore mammario

Viene descritto un metodo di iniezione intraduttale di reagenti per una soluzione ablativa a base di etanolo all'albero duttale mammario di topo per l'imaging in vivo e la prevenzione del cancro al seno. L'iniezione direttamente nell'apertura del capezzolo consente di colpire le cellule epiteliali mammarie con un danno tissutale collaterale minimo.

Somministrazione intraduttale e visualizzazione a raggi X della soluzione ablativa a base di etanolo per la prevenzione e il trattamento locale del cancro al seno in modelli murini

Il presente protocollo descrive una tecnica semplice per l'imaging intravitale della ghiandola mammaria del topo in allattamento mediante microscopia confocale e multifotonica a scansione laser.

Microscopia subcellulare intravitale della ghiandola mammaria

Scopri la ricostruzione di volumi istologici 3D per studiare le macrostrutture cellulari delle ghiandole mammarie nei topi. Questo metodo di registrazione delle immagini evidenzia differenze significative tra topi wild-type e mutanti Igfbp7.

Ricostruzione di 3-Dimensional Volume Istologia e la sua applicazione per studiare mouse ghiandole mammarie

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