Name: Capture spettrometria di massa Compound - un potente strumento per identificare nuovi c-di-GMP effettori Proteine (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-03-29T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 11 s
Description: Scopri la spettrometria di massa con Capture Compound per identificare proteine leganti c-di-GMP nei batteri. Questo metodo computazionale migliora la specificità di cattura e consente condizioni di lavaggio rigorose.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ringraziamo Alberto Reinders per il suo lavoro nell'ottimizzare le condizioni CCMS per P. aeruginosa. Ringraziamo anche Pablo Manfredi per l'annotazione delle proteine di P. aeruginosa. Questo lavoro è stato sostenuto dalla sovvenzione Sinergia del Fondo nazionale svizzero per la ricerca scientifica (FNS) CRSII3_127433.

1. Preparazione del lisato <ol><li> Grow P. cellule aeruginosa in LB alla OD desiderata. NOTA: Per la guida: usare ≈ 100 ml cultura / campione per le culture di fase stazionaria e ≈ 500 ml cultur / campione per le culture di fase log (OD 600nm = 0.5). </li><li> Pellet mediante centrifugazione per 20 min a 5000 x g. </li><li> Risospendere 0.5-1 g di pellet in 1 ml di tampone di lisi (MES 6,7 mm, 6,7 mM Hepes, NaCl 200 mm, 6,7 mM Kac, DDT 1 mM, pH 7,5) e aggiungere inibitore della proteasi (completo mini, senza EDTA) e come DNaseI. </li><li> Lyse le cellule 3 passaggi attraverso una cella di pressione francese, a 20.000 psi (vedi Materiali List). </li><li> Ultra-centrifuga il lisato cellulare a 100.000 xg per 1 ora a 4 ° C. </li><li> Salvare il surnatante (passare al punto 2). </li><li> Lavare il pellet con 1 ml di tampone di lisi 1x pipettando su e giù. </li><li> Ultracentrifuga a 100.000 x g per 1 ora a 4 ° C. </li><li> Flash-congelare il pellet inazoto liquido e conservare a -20 ° C fino utilizzato per la cattura di proteine ​​di membrana (vedi punto 3). </li></ol> 2. Rimozione dei nucleotidi liberi c-di-GMP e altri (frazione solubile Only) <ol><li> Lavare una colonna PD10 dissalazione (vedi Materiali List) con 10 ml di tampone di lisi freddo. </li><li> Versare il supernatante (≈ 1 ml) sul PD10 per rimuovere nucleotidi. </li><li> Eluire con 4 ml di tampone di lisi freddo (500 gradini microlitri). </li><li> Selezionare le frazioni più concentrati, come determinato dal saggio Bradford, e piscina. </li></ol> (Solo Frazione Membrane) 3. Pellet Resuspension e solubilizzazione <ol><li> Risospendere il pellet in 500 a 1.000 ml di buffer di acquisizione 1x (senza detersivo) (vedi tabella 1). NOTA: Il pellet è difficile da riportare in sospensione. Si consiglia di prima pipetta su e giù con una pipetta per risospendere il pellet circa, poi utilizzare una siringa 27 G per omogeneizzare bene la soluzione. </li><li> Aggiungere 1% (w / v) di n-dodecil-β-D-maltopyranoside (DDM). </li><li> Incubare a 4 ° C per almeno 2 ore (o O / N) su una ruota girevole. </li><li> Ultracentrifuga a 100.000 x g per 1 ora a 4 ° C. </li><li> Raccogliere il surnatante. </li></ol> 4. Protein misura della concentrazione <ol><li> Misurare la concentrazione di proteine ​​mediante saggio Bradford (mediante saggio BCA per la frazione di membrana). </li><li> Impostare la concentrazione totale di proteine ​​a 10 mg / ml. </li></ol> 5. Capture <ol><li> Miscelare 300 mg di proteina con 1 mM di PIL, GTP, ATP, CTP, e 20 microlitri di tampone 5x cattura (HEPES 100 mM, 250 mM KAC, 50 MgAc mM, 5% glicerolo, pH 7,5) (Tabella 1). Regolare il volume di reazione di 100 microlitri con H 2 O. NOTA: il volume totale comprende il volume del CDG-CC e c-di-GMP nel caso della concorrenza controllo (vedere fase 5.3 e tabella 2). NOTA: tutti gli esperimenti sono stati eseguiti in 200 &amp;# 181; l strisce PCR 12-tubo (Thermo Scientific). NOTA: per la frazione di membrana, assicurarsi di mantenere sempre la concentrazione DDM sopra della concentrazione micellare critica (0,01% w / v) fino alla fase solubilizzazione delle proteine ​​in 8 M Urea (punto 7.1). </li><li> Incubare a 4 ° C per 30 minuti su una ruota girevole. </li><li> Aggiungere 10 mM CDG-CC (concentrazione finale). NOTA: includere un controllo senza CDG-CC (indicato come &quot;controllo tallone&quot;), e un controllo integrato con 1 mM c-di-GMP (&quot;controllo della concorrenza&quot;) (vedi tabella 2). NOTA: la concentrazione di CDG-CC può essere regolato da 1 a 10 micron. </li><li> Incubare a 4 ° C per almeno 2 ore (/ N per la frazione di membrana O) su una ruota girevole, al buio. </li><li> Dopo un breve giro, cross-link per l&#39;attivazione della porzione reattiva della CDG-CC con la luce UV per 4 minuti, utilizzando un CaproBox (vedi lista materiali, λ = 310 nm, Irradiance ≥10 mW / cm², distanza dalla sorgente = 2 centimetri). NOTA: rimuovere il coperchio delle strisce prima cross-linking. </li><li> Aggiungere 25 ml 5x tampone di lavaggio (5 M NaCl, 250 mM Tris, pH 7.5) e 50 ml di ben risospesa sfere magnetiche streptavidina, omogenizzare delicatamente. </li><li> Incubare a 4 ° C per 1 ora su una ruota girevole. </li></ol> 6. lavaggio Steps NOTA: (Magnet: vedi Materiali List). Iniziare con una cattura delle sfere magnetiche nel coperchio strip PCR, con il magnete. Quindi sostituire la striscia PCR con uno nuovo contenente la soluzione di lavaggio successivo. Rimuovere il magnete e risospendere le sfere, e incubare 2 min. Spin giù e sostituire il coperchio da un coperchio fresco. <ol><li> Fasi di lavaggio (frazione solubile solo) <ol><li> Lavare 6 volte in 200 microlitri tampone di lavaggio 1x. </li><li> Lavare una volta in 200 ml HPLC H 2 O. </li><li> Lavare 6 volte in 200 ml 80% acetonitrile. </li><li> Lavare 2 volte in 200 microlitri HPLC H 2 O. </li></ol></li><li> Fasi di lavaggio (membraFrazione ne solo) <ol><li> Lavare 5 volte in 200 microlitri 1x tampone di lavaggio + 0,1% DDM. </li><li> Lavare 2 volte in 200 microlitri 1x tampone di lavaggio + 0,05% DDM. </li><li> Lavare una volta in 200 microlitri 1x tampone di lavaggio + 0,025% DDM. </li><li> Lavare una volta in 200 microlitri 1x tampone di lavaggio + 0,0125% DDM. </li><li> Lavare 3 volte in 200 ml di ABC 100 mm (di bicarbonato di ammonio, NH 4 CO 3) + 2 M Urea. </li></ol></li></ol> 7. MS Preparazione del campione <ol><li> Risospendere le perline (direttamente nel coperchio) in 20 microlitri di ABC 100 mm (ABC 100 mm + 8 M Urea per la frazione di membrana) e trasferire in provette da 1,5 ml. </li><li> Frazione di membrana solo: incubare a 60 ° C per 5 min, agitando a 500 rpm. </li><li> Aggiungere 0,5 microlitri TCEP 200 mm (tris (2-carbossietil) fosfina) e incubare a 60 ° C per 1 ora, agitando a 500 rpm. Raffreddare a 25 ° C. </li><li> Aggiungere 0,5 ml di preparati al momento 400 mm iodoacetamide e incubare a 25 ° C per 30 minuti, agitando unT 500 rpm e al buio. </li><li> Aggiungere 0,5 ml di 0,5 M N-acetil cisteina e incubare a 25 ° C per 10 min agitando a 500 rpm. </li><li> Soltanto frazione membrana: aggiungere 1 ml Lys-C e incubare a 37 ° C, O / N. </li><li> Aggiungere 2 mg tripsina e incubare O / N a 37 ° C, agitando a 500 rpm (involucro in Parafilm per evitare l&#39;essiccazione). NOTA: i campioni possono essere conservati a -20 ° C in questa fase. NOTA: frazione di membrana solo: aggiungi ABC 100 mM per regolare la concentrazione di urea per &lt;2 M prima aggiunta di tripsina. </li><li> Brevemente centrifugare le provette e raccogliere perle con il magnete. </li><li> Trasferire il surnatante in un nuovo tubo di 1,5 ml (ripetere questo passaggio se perle sono lasciati). </li><li> Aggiungere 5 microlitri 5% TFA (acido trifluoroacetico) + 1 ml 2 M HCl (15 microlitri 5% TFA + 5 microlitri 2 M HCl per la frazione di membrana). </li><li> Colonne Condizione C18 MicroSpin (Il Gruppo Nest, MA, USA) con 150 microlitri acetonitrile (spin 20 sec a 2.400 rpm). </li><li> EquiLibrate le colonne C18 2 volte con 150 microlitri 0,1% TFA (spin 20 sec, 2.400 rpm). </li><li> Caricare il campione e spin 2 min, 2.000 giri. </li><li> Ricaricare il flow-through nella colonna e ripetere la fase di centrifuga (2 min, 2.000 rpm). </li><li> Lavare 3 volte con 150 microlitri 0,1% TFA, 5% acetonitrile (20 sec, 2.400 rpm). </li><li> Prendere una nuova provetta e eluire due volte con 150 microlitri 0,1% TFA, 50% acetonitrile (2 min, 2.000 rpm). </li><li> Asciugare i peptidi in una velocità-vac. </li><li> Risospendere in 40 microlitri 98% H 2 O, 2% acetonitrile, 0,15% di acido formico. </li><li> Sonicare 20 sec (ciclo impulso 0.5, l&#39;ampiezza del 100%, vedi Lista dei materiali) e spin down 5 sec, 12.000 rpm (da banco centrifuga). Vortex 10 sec, e spin down 5 sec, 12.000 rpm. Trasferire in un flaconcino HPLC per l&#39;analisi LC-MS / MS. </li><li> Congelare a -20 ° C. NOTA: i campioni possono essere conservati a -20 ° C in questa fase. </li></ol> 8. LC-MS / MS Analysis <ol><li> Eseguire un nano-LC (sistemi nano-LC) equipped con una colonna RP-HPLC (75 um x 37 cm) imballato con resina C18 (Magic C18 AQ 3 micron) usando un gradiente lineare dal 95% di solvente A (acido formico al 0,15%, 2% acetonitrile) e 5% di solvente B ( 98% acetonitrile, 0,15% di acido formico) al 35% di solvente B oltre 60 minuti ad una portata di 0,2 ml / min. </li><li> Analizzare i peptidi con LC-MS / MS (doppia pressione LTQ-Orbitrap Velos spettrometro di massa, collegato ad una sorgente ionica electrospray). NOTA: La modalità di acquisizione dei dati è stato impostato per ottenere una alta risoluzione MS scansione nella parte FT dello spettrometro di massa ad una risoluzione di 60.000 FWHM seguita da scansioni MS / MS nella trappola ionica lineare delle 20 ioni più intensi. Per aumentare l&#39;efficienza dei tentativi MS / MS, la carica dello stato di screening modus è stata attivata per escludere non assegnato e oneri singolarmente ioni. Collusione dissociazione indotta è stata innescata quando il precursore superato 100 conteggi ioni. La durata esclusione dinamico è stato impostato a 30 sec. Il tempo di accumulo di ioni è stato fissato a 300 msec (MS) e 50msec (MS / MS). </li></ol> 9. Database Search <ol><li> Scarica il P. aeruginosa NCBI database tramite la homepage NCBI ( <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/">http://www.ncbi.nlm.nih.gov/</a> ). </li><li> Convertire gli spettri MS raw in file generici mascotte (MGF) utilizzando lo strumento di conversione MassMatrix ( <a href="http://www.massmatrix.net/mm-cgi/downloads.py">http://www.massmatrix.net/mm-cgi/downloads.py</a> ). </li><li> Cerca questo file mgf utilizzando MASCOTTE versione 2.3 contro il P. aeruginosa NCBI database contenente in avanti e le voci di proteine ​​reverse-esca. </li><li> Eseguire un in silico tripsina digestione dopo lisina ed arginina (meno seguito da prolina) tollerando due spaccature nella peptidi completamente triptici perse. </li><li> Impostare i parametri di ricerca database per consentire metionine ossidato (15,99491 Da) come modifiche variabile e carboxyamidomethylation (57,021464 Da) di residui di cisteina come modifica fisso. Per mascotte ci scrutaing scansioni ad alta risoluzione, impostare la tolleranza di massa precursore di 15 ppm e impostare la tolleranza di massa frammento di 0.6 Da. Infine, impostare la proteina FDR al 1%. </li><li> Importare le ricerche mascotte di P. Esperimenti aeruginosa CCMS in Scaffold (Proteomesoftware, versione 3), impostare i parametri per ottenere una proteina FDR vicino a 1%, ed estrarre il totale conta spettrali. </li><li> Per i risultati rappresentativi presentati in questo documento, abbiamo usato un test T accoppiato per confrontare l&#39;esperimento con il controllo della concorrenza, e solo considerato colpi con un valore di p inferiore a 0,1, e un rapporto di conteggio spettrale sopra 2 (sperimentare conteggi spettrali / controllo della concorrenza spettrale conta). </li><li> I dati possono essere esportati in qualsiasi software di foglio di calcolo per ulteriori analisi. </li></ol> 10. La quantificazione senza etichetta <ol><li> Importare i file raw in software progenesi LC-MS (Nonlinear Dynamics, versione 4.0). </li><li> Eseguire l&#39;allineamento LC-MS e la rilevazione in funzione Setti predefinitongs. </li><li> Esportare i dati in formato mgf da progenesi LC-MS. </li><li> Cerca gli spettri MS / MS con la mascotte contro il NCBI P. banca dati contenente aeruginosa in avanti e le voci di proteine ​​reverse-esca. </li><li> Importare i risultati di ricerca di database in progenesi LC-MS e mappare i peptidi identificazioni alle funzioni MS1. </li><li> Per la valutazione dei dati (calcolo dei livelli di significatività, rapporti fold-change) è stato utilizzato lo script ProteinSQAnalysis di SafeQuant (soglia: valore q inferiore a 0,1, il rapporto di conteggio spettrale sopra 2). </li></ol>

<ol><li>Nesper, J., Reinders, A., Glatter, T., Schmidt, A., Jenal, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+capture+compound+for+the+identification+and+analysis+of+cyclic+di-GMP+binding+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22J+Proteomics%22%5BJournal%5D)">A novel capture compound for the identification and analysis of cyclic di-GMP binding proteins.</a> J Proteomics. 75, 4874-4878 (2012).</li>
<li>Hengge, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+c-di-GMP+signalling+in+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Principles of c-di-GMP signalling in bacteria.</a> Nature reviews. Microbiology. 7, 263-273 (2009).</li>
<li>Sondermann, H., Shikuma, N. J., Yildiz, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((You%27ve+come+a+long+way%3A+c-di-GMP+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">You've come a long way: c-di-GMP signaling.</a> Curr. Opin. Microbiol. 15, 140-146 (2012).</li>
<li>Schirmer, T., Jenal, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+mechanistic+determinants+of+c-di-GMP+signalling%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Structural and mechanistic determinants of c-di-GMP signalling.</a> Nature reviews. Microbiology. 7, 724-735 (2009).</li>
<li>Furukawa, S., Kuchma, S., O'Toole, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Keeping+their+options+open%3A+acute+versus+persistent+infections%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Keeping their options open: acute versus persistent infections.</a> J. Bacteriol. 188, 1211-1217 (2006).</li>
<li>Christen, M., Christen, B., Folcher, M., Schauerte, A., Jenal, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+a+cyclic+di-GMP-specific+phosphodiesterase+and+its+allosteric+control+by+GTP%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of a cyclic di-GMP-specific phosphodiesterase and its allosteric control by GTP.</a> J. Biol. Chem. 280, 30829-30837 (2005).</li>
<li>Ryan, R. P., Fouhy, Y., Lucey, J. F., Dow, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclic+di-GMP+signaling+in+bacteria%3A+recent+advances+and+new+puzzles%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Cyclic di-GMP signaling in bacteria: recent advances and new puzzles.</a> J. Bacteriol. 188, 8327-8334 (2006).</li>
<li>Habazettl, J., Allan, M. G., Jenal, U., Grzesiek, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Solution+structure+of+the+PilZ+domain+protein+PA4608+complex+with+cyclic+di-GMP+identifies+charge+clustering+as+molecular+readout%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Solution structure of the PilZ domain protein PA4608 complex with cyclic di-GMP identifies charge clustering as molecular readout.</a> J. Biol. Chem. 286, 14304-14314 (2011).</li>
<li>Fazli, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+CRP%2FFNR+family+protein+Bcam1349+is+a+c-di-GMP+effector+that+regulates+biofilm+formation+in+the+respiratory+pathogen+Burkholderia+cenocepacia%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Microbiology%22%5BJournal%5D)">The CRP/FNR family protein Bcam1349 is a c-di-GMP effector that regulates biofilm formation in the respiratory pathogen Burkholderia cenocepacia.</a> Molecular Microbiology. 82, 327-341 (2011).</li>
<li>Hickman, J. W., Harwood, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+FleQ+from+Pseudomonas+aeruginosa+as+a+c-di-GMP-responsive+transcription+factor%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Identification of FleQ from Pseudomonas aeruginosa as a c-di-GMP-responsive transcription factor.</a> Molecular Microbiology. 69, 376-389 (2008).</li>
<li>Sudarsan, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Riboswitches+in+eubacteria+sense+the+second+messenger+cyclic+di-GMP%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Riboswitches in eubacteria sense the second messenger cyclic di-GMP.</a> Science. 321, 411-413 (2008).</li>
<li>Lenz, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Profiling+of+methyltransferases+and+other+S-adenosyl-L-homocysteine-binding+Proteins+by+Capture+Compound+Mass+Spectrometry+%28CCMS%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Profiling of methyltransferases and other S-adenosyl-L-homocysteine-binding Proteins by Capture Compound Mass Spectrometry (CCMS).</a> J Vis Exp. , (2010).</li>
<li>Köster, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Capture+compound+mass+spectrometry%3A+a+technology+for+the+investigation+of+small+molecule+protein+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Assay+Drug+Dev+Technol%22%5BJournal%5D)">Capture compound mass spectrometry: a technology for the investigation of small molecule protein interactions.</a> Assay Drug Dev Technol. 5, 381-390 (2007).</li>
<li>Düvel, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+chemical+proteomics+approach+to+identify+c-di-GMP+binding+proteins+in+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Microbiological+Methods%22%5BJournal%5D)">A chemical proteomics approach to identify c-di-GMP binding proteins in Pseudomonas aeruginosa.</a> Journal of Microbiological Methods. 88, 229-236 (2012).</li>
<li>Christen, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allosteric+control+of+cyclic+di-GMP+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Allosteric control of cyclic di-GMP signaling.</a> J. Biol. Chem. 281, 32015-32024 (2006).</li>
<li>Balasubramanian, D., Mathee, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+transcriptome+analyses+of+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22Human+genomics%22%5BJournal%5D)">Comparative transcriptome analyses of Pseudomonas aeruginosa.</a> Human genomics. 3, 349-361 (2009).</li>
<li>Smyth, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linear+models+and+empirical+bayes+methods+for+assessing+differential+expression+in+microarray+experiments%5BTitle%5D)+AND+%22Stat+Appl+Genet+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Linear models and empirical bayes methods for assessing differential expression in microarray experiments.</a> Stat Appl Genet Mol Biol. 3 (3), (2004).</li>
<li>Baraquet, C., Harwood, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclic+diguanosine+monophosphate+represses+bacterial+flagella+synthesis+by+interacting+with+the+Walker+A+motif+of+the+enhancer-binding+protein+FleQ%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Cyclic diguanosine monophosphate represses bacterial flagella synthesis by interacting with the Walker A motif of the enhancer-binding protein FleQ.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110, 18478-18483 (2013).</li>
<li>Nesper, J., Reinders, A., Glatter, T., Schmidt, A., Jenal, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+capture+compound+for+the+identification+and+analysis+of+cyclic+di-GMP+binding+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22J+Proteomics%22%5BJournal%5D)">A novel capture compound for the identification and analysis of cyclic di-GMP binding proteins.</a> J Proteomics. 75, 4874-4878 (2012).</li>
<li>Roelofs, K. G., Wang, J., Sintim, H. O., Lee, V. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+radial+capillary+action+of+ligand+assay+for+high-throughput+detection+of+protein-metabolite+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Differential radial capillary action of ligand assay for high-throughput detection of protein-metabolite interactions.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 15528-15533 (2011).</li>
<li>DeSantis, K., Reed, A., Rahhal, R., Reinking, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+differential+scanning+fluorimetry+as+a+high-throughput+assay+to+identify+nuclear+receptor+ligands%5BTitle%5D)+AND+%22Nuclear+receptor+signaling%22%5BJournal%5D)">Use of differential scanning fluorimetry as a high-throughput assay to identify nuclear receptor ligands.</a> Nuclear receptor signaling. 10, e002(2012).</li>
<li>Seidel, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscale+thermophoresis+quantifies+biomolecular+interactions+under+previously+challenging+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Microscale thermophoresis quantifies biomolecular interactions under previously challenging conditions.</a> Methods. 59, 301-315 (2013).</li>
<li>Merighi, M., Lee, V. T., Hyodo, M., Hayakawa, Y., Lory, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+second+messenger+bis-%283%E2%80%98-5%E2%80%99%29-cyclic-GMP+and+its+PilZ+domain-containing+receptor+Alg44+are+required+for+alginate+biosynthesis+in+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Microbiology%22%5BJournal%5D)">The second messenger bis-(3‘-5’)-cyclic-GMP and its PilZ domain-containing receptor Alg44 are required for alginate biosynthesis in Pseudomonas aeruginosa.</a> Molecular Microbiology. 65, 876-895 (2007).</li>
<li>Qi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Binding+of+cyclic+diguanylate+in+the+non-catalytic+EAL+domain+of+FimX+induces+a+long-range+conformational+change%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Binding of cyclic diguanylate in the non-catalytic EAL domain of FimX induces a long-range conformational change.</a> J. Biol. Chem. 286, 2910-2917 (2011).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Particolare attenzione dovrebbe essere presa in diverse fasi del protocollo. La concentrazione proteica è un parametro critico con una concentrazione di 10 mg / ml di essere difficile da raggiungere quando le cellule vengono coltivate in condizioni di crescita specifici (ad esempio biofilm o piccole varianti colonia). Così, la risospensione pellet deve essere eseguita in un basso volume di tampone di lisi. Le concentrazioni di proteine ​​possono essere diminuiti di 8 mg / ml. Rispetto al metodo pubblicato da Ne...

c-di-GMP è una chiave secondo messaggero utilizzato dalla maggior parte dei batteri per controllare vari aspetti della loro crescita e il comportamento. Per esempio, c-di-GMP regola la progressione del ciclo cellulare, la motilità e l&#39;espressione di esopolisaccaridi e adesine superficiali 2-4. Attraverso il coordinamento di tali processi c-di-GMP promuove la formazione di biofilm, un processo che è associata con infezioni croniche di una gamma di batteri patogeni 5. c-di-GMP è sintetizzato da enzimi chiamati ciclasi diguanylate (DGCS) che ospitano un dominio catalitico GGDEF 4. Alcuni DGCS possiedono un sito inibitorio che regola le attività ciclasi su c-di-GMP vincolante. Il degrado di c-di-GMP è catalizzata da due classi distinte di fosfodiesterasi (PDE) che ospitano sia un EAL catalitico o HD-GYP dominio 6,7. La maggior parte delle proteine ​​effettrici noti che legano direttamente c-di-GMP appartengono a una delle tre classi di proteine: cataliticoGGDEF o EAL domini alleato inattivi e domini Pilz, piccoli interruttori molecolari che subiscono cambiamenti conformazionali su c-di-GMP vincolante 8. DGCS, PDE e Pilz proteine ​​sono ben caratterizzati e loro domini possono essere previsti in silico relativamente sicuro. Un particolare interesse è ora focalizzata sulla identificazione di nuove classi di effettori c-di-GMP. Alcuni effettori c-di-GMP con diversi motivi di legame sono stati descritti recentemente come la CRP / FNR Bcam1349 famiglia di proteine ​​in Burkholderia cenocepacia o FleQ regolatore trascrizionale in P. aeruginosa 9,10. Inoltre, riboswitches GMP-specifici c-di-stati recentemente identificati e indicati per controllare l&#39;espressione genica in modo c-di-GMP-dipendente 11. I motivi c-di-GMP vincolanti di diversi effettori solo sono mal conservati fare previsioni bioinformatici di tali proteine ​​difficile. Per risolvere questo problema, abbiamo sviluppato un metodo biochimico, che si basa sull&#39;utilizzo di una spe c-di-GMPfica Compound Capture combinata con spettrometria di massa 1,12,13. Abbiamo recentemente abbiamo progettato un nuovo trivalente c-di-GMP Compound Capture (CDG-CC, Figura 1) 1. Questo scaffold chimica è composto da: 1) un residuo c-di-GMP utilizzata come esca per catturare proteine ​​leganti c-di-GMP, 2) un gruppo reattivo UV-fotoattivabile utilizzato per attraversare link CDG-CC alle proteine ​​legate e 3) un biotina per isolare le proteine ​​catturate utilizzando sfere magnetiche rivestite di streptavidina. CDG-CC può essere usato per catturare direttamente e specificamente effettori c-di-GMP dalla miscela complessa di macromolecole come lisati cellulari. Compound Capture basano e approcci proteomica basati chimici sono stati precedentemente segnalati per essere applicabile ad una vasta gamma di organismi, ad esempio Caulobacter crescentus, Salmonella enterica sierotipo typhimurium e P. aeruginosa 1,14. In questo documento metodologico,forniamo una descrizione in profondità della procedura CCMS utilizzando estratti di P. aeruginosa come esempio. Questo studio stabilisce CCMS come uno strumento potente e versatile per identificare biochimicamente nuovi componenti che praticano la piccola molecola di segnalazione.

<table><tbody><tr><td>caproBox</td><td>caprotec bioanalytics</td><td>1-5010-001 (220 V)</td><td>Lampade UV accoppiate a un blocco di raffreddamento a 96 piastre, per la fotoattivazione</td></tr><tr><td>caproMag</td><td>caprotec bioanalytics</td><td>incluso nello Starter Kit CCMS</td><td>Per una facile manipolazione di particelle magnetiche senza pipettaggio</td></tr><tr><td>c-di-GMP caproKit</td><td>caprotec bioanalytics</td><td>su richiesta</td><td>Il kit contiene il composto di cattura c-di-GMP, c-di-GMP (per il controllo della competizione), perle magnetiche rivestite di streptavidina, tampone di cattura e tampone di lavaggio</td></tr><tr><td>Colonne di desalinizzazione PD-10 monouso</td><td>GE Healthcare</td><td>17-0851-01&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Strisce PCR a 12 provette</td><td>Thermo Scientific</td><td>AB-1114</td><td></td></tr><tr><td>UIS250v sonicatore con VialTweeter</td><td>Hielscher tecnologia a ultrasuoni</td><td>UIS250v e VialTweeter</td><td></td></tr><tr><td>Cella a pressione francese in miniatura</td><td>Thermo Electron Corporation</td><td>FA-003</td><td></td></tr></tbody></table>

capture spettrometria di massa compound - un potente strumento per identificare nuovi c-di-gmp effettori proteine

Capture Compound Mass Spectrometry - A Powerful Tool to Identify Novel c-di-GMP Effector Proteins

Sono stati compiuti notevoli progressi nel corso degli ultimi dieci anni verso l&#39;identificazione e la caratterizzazione di enzimi coinvolti nella sintesi (ciclasi diguanylate) e di degradazione (fosfodiesterasi) del secondo messaggero c-di-GMP. Al contrario, sono disponibili poche informazioni sui meccanismi molecolari e componenti cellulari attraverso cui questa molecola di segnalazione regolamenta una vasta gamma di processi cellulari. La maggior parte delle proteine ​​effettrici noti appartengono alla famiglia Pilz o sono degenerati ciclasi diguanylate o fosfodiesterasi che hanno rinunciato a catalisi e hanno adottato la funzione effettrici. Così, per definire meglio la rete c-di-GMP cellulare in una vasta gamma di batteri metodi sperimentali sono necessari per identificare e convalidare nuovi effettori che affidabile e in silico previsioni FAIL. Abbiamo recentemente sviluppato un nuovo Capture spettrometria di massa Compound (CCMS) tecnologia basata come un potente strumento perbiochimicamente identificare e caratterizzare le proteine ​​di legame c-di-GMP. Questa tecnica è stata precedentemente riportato di essere applicabile ad una vasta gamma di organismi 1. Qui diamo una descrizione dettagliata del protocollo che utilizziamo per sondare tali componenti di segnalazione. Come esempio, si usa Pseudomonas aeruginosa, un patogeno opportunista in cui c-di-GMP gioca un ruolo critico nella virulenza e biofilm controllo. CCMS ha identificato il 74% (38/51) dei componenti note o previste della rete c-di-GMP. Questo studio spiega la procedura CCMS in dettaglio, e stabilisce come uno strumento potente e versatile per identificare nuovi componenti coinvolti in piccola molecola di segnalazione.

Per identificare nuovi c-di-GMP effettori in P. aeruginosa abbiamo usato sistematicamente CCMS per analizzare le frazioni solubili e di membrana di P. aeruginosa ceppo PAO1 da una cultura fase di log (OD 600 = 0,5). Qui riassumiamo e discutere i risultati rappresentativi di questa pesca. Sono stati utilizzati quattro repliche biologiche indipendenti. Per ogni esperimento sono stati utilizzati due differenti concentrazioni CDG-CC (5 micron e 10 micron). Per rilevare se la specificità, esperim...

L'onnipresente secondo messaggero c-di-GMP controlla la crescita e il comportamento di molti batteri. Abbiamo sviluppato una nuova tecnologia basata sulla spettrometria di massa Capture Compound per identificare e caratterizzare biochimicamente le proteine leganti c-di-GMP praticamente in qualsiasi specie batterica.

Capture spettrometria di massa Compound - un potente strumento per identificare nuovi c-di-GMP effettori Proteine

Considerable progress has been made during the last decade towards the identification and characterization of enzymes involved in the synthesis ...

L'obiettivo generale dell'esperimento di spettrometria di massa del composto di cattura è quello di catturare e identificare le proteine leganti le GMP cicliche. Ciò si ottiene frazionando una coltura cellulare mediante pressa francese e rimuovendo il moncone ciclico libero gmp. Utilizzando una colonna PD 10 come secondo passaggio, il composto di cattura viene aggiunto e attivato dalla luce UV per reticolare in modo covalente le proteine leganti GMP dello stampo ciclico legate al composto di cattura in assenza o presenza di un eccesso di GMP dello stampo ciclico libero.Successivamente, il composto di cattura è legato a perle magnetiche rivestite di streptavidina per lavare intensamente le proteine catturate. Infine, le proteine catturate vengono digerite e preparate per la spettrometria di massa per identificare i peptidi generati I risultati vengono quindi analizzati in silico. Il vantaggio principale della CCMS rispetto ai nostri metodi esistenti, come la coprecipitazione, è che il composto di cattura migliora la cattura specifica dei partner diretti e consente condizioni di lavaggio difficili grazie al collegamento covalente dei costi.Ora questo metodo può fornire informazioni sulla segnalazione ciclica batterica di GMP. Può anche essere applicato ad altri sistemi come la segnalazione nucleotidica in generale e praticamente qualsiasi molecola alimentata dal composto di cattura. Prima di iniziare questa procedura, preparare e lisare le celle di aerogeno p attraverso una ultracentrifuga di celle a pressione francesi e il lisato cellulare a 100.000 volte G per un'ora a quattro gradi Celsius.Dopo aver conservato il surnatante, lavare il pellet con un millilitro di un tampone di lisi x pipettandolo su e giù dopo l'ultracentrifugazione nelle stesse condizioni di prima. Congelare il pellet in azoto liquido, quindi conservare il campione congelato a meno 20 gradi Celsius fino a quando non viene utilizzato per la cattura delle proteine di membrana. Successivamente lavaggio una colonna di desalinizzazione PD 10 con 10 millilitri di tampone di lisi a freddo.Versare il surnatante sul PD 10 per rimuovere i nucleotidi, quindi eluire con quattro millilitri di tampone di lisi a freddo con incrementi di 500 microlitri. Utilizzare il test di Bradford per determinare le frazioni più concentrate. Quindi raggruppare le frazioni selezionate in un tubo Resus da 1,5 millilitri.Sospendere il pellet precedentemente immagazzinato in 500-1000 microlitri di un tampone di cattura senza detergente. Aggiungere al campione una soluzione all'1% in peso per volume di fine dose di Beta D multi purin. Quindi, incubare il campione a quattro gradi Celsius per almeno due ore su una ruota rotante.Al termine, ultracentrifugare il campione a 100.000 volte G per un'ora a quattro gradi Celsius. Dopo l'ultracentrifugazione, trasferire il surnatante in una nuova provetta da 1,5 millilitri. A questo punto, mescola 300 microgrammi di proteine con un millimolare di G-D-P-G-T-P-A-T-P-C-T-P e 20 microlitri di tampone di cattura cinque x.Regolare il volume di reazione a 100 microlitri con acqua. Dopo aver incubato il campione a quattro gradi Celsius su una ruota rotante, aggiungere 10 micromolari di composto di cattura GMP per stampi ciclici. Quindi incubare il campione a quattro gradi Celsius per almeno due ore per la frazione solubile o durante la notte per la frazione di membrana su una ruota rotante al buio.Dopo una breve centrifuga e la rimozione del coperchio, reticolazione mediante attivazione della parte reattiva del composto di cattura GMP dello stampo ciclico con luce UV per quattro minuti utilizzando una scatola di file di tappi. Successivamente, aggiungere 25 microlitri di cinque tamponi di lavaggio e 50 microlitri di streptococco AVID ben risospeso in perline magnetiche. Omogeneizzare delicatamente il campione.Quindi incubare il campione a quattro gradi Celsius per un'ora su una ruota rotante. Dopo aver catturato le perle nel coperchio con un magnete, lavare le frazioni solubili sei volte in 200 microlitri di un tampone di lavaggio X dopo il lavaggio, una volta ogni 200 microlitri di acqua di grado HPLC, lavare sei volte in 200 microlitri di nitrile di aceto all'80% e due volte in 200 microlitri di acqua di grado HPLC per la frazione di membrana, lavare cinque volte in 200 microlitri di un tampone di lavaggio X e diminuire le concentrazioni di fine beta D multi purico a parte. Successivamente, risospendere le perle in 20 microlitri di bicarbonato di ammonio 100 millimolare per la frazione solubile e 100 millimolari di bicarbonato di ammonio più otto molari di urea.Per la frazione di membrana, trasferire ciascuna sospensione in tubi da 1,5 millilitri. Dopo aver incubato la frazione di membrana, aggiungere 0,5 microlitri di tris da 200 millimolari. Due carbossietilfosfina in entrambe le frazioni e incubare a 60 gradi Celsius per un'ora con agitazione a 500 giri/min.Una volta che i campioni si sono raffreddati a 25 gradi Celsius, aggiungere 0,5 microlitri di I-oto acetammide da 400 millimolari appena preparato dopo l'incubazione al buio. Aggiungere 0,5 microlitri di 0,5 molari e acetilcisteina a ciascuna frazione. Quindi incubare i campioni a 25 gradi Celsius per 10 minuti con agitazione a 500 giri/min.A questo punto, aggiungere un microlitro di LY C alla frazione di membrana dopo l'incubazione notturna a 37 gradi Celsius. Aggiungere due microgrammi di tripsina a ciascun campione e avvolgerli in paraforma per evitare che si secchino. Dopo l'incubazione e la centrifuga dei campioni, trasferire il surnatante in una nuova provetta da 1,5 millilitri con l'aiuto del magnete per evitare di raccogliere le perle.Quindi, aggiungere cinque microlitri di acido tricloroacetico al 5% e un microlitro di acido cloridrico a due molari alla frazione solubile, aggiungere 15 microlitri di acido tricloroacetico al 5% e cinque microlitri di acido cloridrico a due molari alla condizione della frazione di membrana. C 18 micro colonne di centrifuga con 150 microlitri di aceto nitrile centrifugando 20 secondi a 2.400 giri/min. Una volta che le colonne sono state equilibrate due volte con 150 microlitri di acido tri fluoroacetico allo 0,1%, caricare il campione e centrifugare per due minuti.A 2000 giri/min, ricaricare il flusso sulle colonne. Dopo aver ripetuto la centrifuga e aver lavato le colonne con acido tri acetico 0,1 e nitrile acetico, prelevare un nuovo tubo ed eluire due volte con 150 microlitri di acido tri fluoroacetico 0,1% e nitrile aceto 50%. Una volta che i peptidi sono stati essiccati in uno speed vac Resus, risolubilizzarli in 40 microlitri di acqua al 98%, 2% di acetil nitrile e acido formico allo 0,15%.Una volta che i campioni sono stati sonicati per 20 secondi, farli girare verso il basso per cinque secondi a 12.000 giri/min Dopo il vortice e la rotazione, trasferire i campioni in fiale HPLC per l'analisi lc MS MS. La hit list iniziale di una coltura in fase log di aerogeno P comprende 768 proteine della frazione solubile e 433 proteine della frazione di membrana Dopo aver rimosso le proteine catturate in modo non specifico, l'elenco è stato ridotto a 76 proteine solubili di frattura e 133 proteine della frazione di membrana. Ciò includeva 13 proteine solubili e 21 proteine di membrana dell'aerogeno P che sono note o previste per legare il colorante ciclico. GMP.Le altre 63 proteine solubili e le 112 proteine di membrana sono nuove die cicliche putative. Proteine leganti le GMP, che non contengono uno dei domini di legame GMP ciclici noti. CCMS con estratti cellulari raccolti da diverse condizioni di crescita e con vari stampi ciclici intracellulari.Sono state utilizzate anche concentrazioni GMP. Complessivamente, è stato catturato il 74% dei componenti di segnalazione GMP noti o previsti per l'aerogeno p, PO one e ciclico. Dato che almeno nove di questi geni hanno dimostrato di essere trascritti in condizioni specifiche e che alcuni potrebbero non legare affatto il die ciclico, GMP, questo grado di copertura potrebbe essere vicino alla saturazione.Questo, unito all'osservazione che la maggior parte di questi componenti sono stati catturati con un'elevata specificità, sostiene fortemente che questa tecnica è efficace e potente. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordare che la selezione di candidati potenti sarà ottenuta confrontando la specificità di cattura di effettori DGP psichici noti. Quindi, seguendo questa procedura, è possibile eseguire metodi come Drac, ubi, cross linking, scansione differenziale, micrometria fluorimetrica o telemetria isotermica al fine di convalidare un legame specifico dei candidati al ciclismo che GMP.

capture-compound-mass-spectrometry-powerful-tool-to-identify-novel-c

Research

Ricerca

JoVE Journal

Biology

Biologia

Spettrometria di massa ha dimostrato di essere uno strumento prezioso per l'analisi dei complessi proteici di grandi dimensioni. Questo metodo consente intuizioni l'architettura composizione, stechiometria e in generale di multi-subunità assemblee. Qui, descriviamo, passo per passo, come effettuare una analisi strutturale spettrometria di massa, e caratterizzare le strutture macromolecolari.

Analizzando complessi proteici mediante spettrometria di massa di grandi dimensioni strutturali

Composti cattura sono trifunzionale piccole molecole per ridurre la complessità del proteoma funzionale reversibile da piccola molecola-proteina seguiti da foto-reticolazione e purificazione. Qui si usa un composto di cattura...

Profilatura di metiltransferasi e altri S-Adenosil- L-Omocisteina-binding proteine ​​mediante spettrometria di massa Compound Capture (CCMS)

Standard di isotopi stabili e cattura da anticorpi anti-peptide (SISCAPA) affinità arricchimento coppie di peptidi con diluizione degli isotopi stabili e spettrometria di massa (MRM-MS) per fornire la misura quantitativa di peptidi come surrogati per le loro rispettive proteine. Qui descriviamo il protocollo utilizzando particelle magnetiche in un formato parzialmente automatizzato.

Quantificazione delle proteine ​​Utilizzando Arricchimento Peptide immunoaffinità Accoppiato con spettrometria di massa

Vi presentiamo una variante del RAPIDO (immunoprecipitazione quantitativi combinazione con smontabile), approccio che è stato introdotto in precedenza per distinguere tra vero e falso interazioni proteina-proteina. Il nostro approccio è basato...

Un protocollo per l&#39;identificazione di interazioni proteina-proteina Sulla base di<sup&gt; 15</sup&gt; N marcatura metabolica, immunoprecipitazione, Spettrometria di massa quantitativa e di affinità di modulazione

Un metodo lunghezza dei frammenti di reazione di restrizione polimorfismo a catena della polimerasi migliore per la genotipizzazione specie pesci palla da cromatografia liquida / spettrometria di massa è descritta. Una colonna monolite di silice in fase inversa è impiegato per separare ampliconi digerito. Questo metodo può chiarire le masse monoisotopico di oligonucleotidi, che è utile per identificare composizione di base.

Migliorata la Polymerase Chain Reaction-restrizione frammento lunghezza polimorfismo genotipizzazione di Pufferfish Tossico per cromatografia liquida / spettrometria di massa

Combinato precursore etichettatura isotopica e tagging isobarica (CPilot) è una strategia proteomica quantitativa che migliora le capacità di multiplazione campione di tag isobariche. Questo protocollo descrive l'applicazione di CPilot ai tessuti dal modello murino della malattia e wild-type controlli di Alzheimer.

Maggiore Campione Multiplexing dei tessuti utilizzando combinata Precursore isotopica etichettatura e isobarica Tagging (CPilot)

L'architettura dei complessi della proteina è essenziale per la loro funzione. Combinando varie tecniche di spettrometrihe di massa ha dimostrato potente per studiare il loro assemblaggio. Forniamo i protocolli per reticolazione chimica e spettrometria di massa nativa e mostrare come queste tecniche complementari consentono a delucidare l'architettura delle assemblee multi-unità secondaria della proteina.

Che unisce la reticolazione chimica e spettrometria di massa dei complessi della proteina intatta per studiare l'architettura delle assemblee multi-unità secondaria della proteina

Presentiamo un metodo per la purificazione, il rilevamento e l'identificazione di peptidi diGly che provengono da proteine ubiquitinate da campioni biologici complessi. Il metodo presentato è riproducibile, robusto e supera i metodi pubblicati rispetto al livello di profondità dell'analisi dell'ubiquitinome.

Rilevamento di siti di Ubiquitinazione proteica mediante arricchimento dei peptidi e spettrometria di massa

Questo flusso di lavoro descrive contemporaneamente le prestazioni dell'arricchimento in termini di tempo ed efficiente in termini di costi di più modifiche post-traslazionali proteiche (PPM) per l'analisi proteomica globale quantitativa. Il protocollo utilizza l'arricchimento PTM a livello di peptide con più anticorpi coniugati, seguito dall'analisi della spettrometria di massa di acquisizione indipendente dai dati per ottenere informazioni biologiche sul crosstalk PTM.

Arricchimento simultaneo dell'affinità di due modifiche post-traduzionali per la quantificazione e la localizzazione del sito

L'etichettatura isotopica precursore combinata e il tagging isobarico (cPILOT) è una strategia avanzata di multiplexing del campione in grado di aumentare il numero di campioni che possono essere analizzati contemporaneamente ai tag isobarici disponibili. L'incorporazione di una piattaforma robotica ha notevolmente aumentato la produttività sperimentale, la riproducibilità e l'accuratezza quantitativa.

Multiplexing di campioni automatizzato utilizzando l'etichettatura isotopica precursore combinata e il tagging isobarico (cPILOT)

Scopri la spettrometria di massa con Capture Compound per identificare proteine leganti c-di-GMP nei batteri. Questo metodo computazionale migliora la specificità di cattura e consente condizioni di lavaggio rigorose.

Capture spettrometria di massa Compound - un potente strumento per identificare nuovi c-di-GMP effettori Proteine

Esplora altri video