Introduzione di agenti sperimentali nel mouse

Introducing Experimental Agents into the Mouse
JoVE Science Education
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
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JoVE Science Education Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
Introducing Experimental Agents into the Mouse

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07:40 min
April 30, 2023

Overview

Molte indagini eseguite sui topi (Mus musculus) richiedono la somministrazione di un agente sperimentale all’animale. Ad esempio, può essere interessante testare l’efficacia di una terapia specifica, indurre una condizione patologica o somministrare anestesia o cure palliative. Al fine di garantire una consegna sicura ed efficiente, è importante considerare una varietà di fattori prima della somministrazione del trattamento.

Questo video, che esamina la somministrazione dell’agente nel topo, inizia evidenziando le proprietà da considerare, come viscosità, dose e appetibilità, quando si pianifica la somministrazione di un agente sperimentale. La discussione successiva si concentra sui metodi di iniezione, compresa la delineazione dei componenti strutturali della siringa e dell’ago, come interpretare il calibro dell’ago e metodi di ritenuta sicuri del topo per i siti di iniezione comuni. Vengono fornite istruzioni dettagliate per l’esecuzione di iniezioni sottocutanee (SC / SubQ), intraperitoneali (IP) e della vena della coda (IV) nei topi. Inoltre, vengono discusse le applicazioni di queste tecniche e le vie di somministrazione alternative.

Procedure

Molti esperimenti dipendono dalla somministrazione di agenti ai topi. Spesso, questi agenti vengono introdotti per testare il loro effetto su un processo biologico. Gli agenti possono anche svolgere un ruolo importante nella preparazione degli animali per la sperimentazione. In questo video, discuteremo importanti considerazioni per la somministrazione di agenti sperimentali, strumenti per la consegna degli agenti, alcune vie specifiche di somministrazione e applicazioni di queste tecniche essenziali.

Quindi quali fattori devono essere considerati quando si pianifica la somministrazione di un agente sperimentale?

Il primo è la dose appropriata. Di solito calcolato in relazione al peso dell’animale, fornire la dose corretta di un agente è fondamentale.

Anche la via di somministrazione è importante da considerare. Proprietà come l’appetibilità dell’agente, la viscosità, la quantità da somministrare, il tessuto bersaglio e il tasso di diffusione desiderato determineranno quale delle molte vie di somministrazione disponibili scegliere. In questo video ci concentreremo sull’iniezione, che è uno dei metodi più efficienti di consegna dell’agente.

Prima di discutere su come eseguire un’iniezione, prendiamo confidenza con i principali strumenti per la tecnica.

Inizieremo con la siringa. I liquidi sono tenuti all’interno della canna, che è contrassegnata per consentire misurazioni accurate del volume. Lo stantuffo si inserisce all’interno della canna e viene utilizzato per guidare il movimento del suo contenuto. Infine, la punta della siringa è il sito di attacco del mozzo dell’ago. All’estremità opposta dell’albero dell’ago troverai una punta smussata. Fai attenzione, è molto nitido!

I mozzi degli aghi sono codificati a colori per riflettere le loro dimensioni, o “calibro”, con numeri di calibro più alti che indicano aghi più piccoli. I calibri vengono scelti in base al percorso di consegna desiderato: più piccola o più sensibile è l’area, minore è l’ago richiesto.

Dopo aver selezionato l’ago e la siringa appropriati per l’esperimento, aspirare l’agente nella canna tirando indietro lo stantuffo. Le bolle d’aria iniettate insieme all’agente possono disturbare i tessuti e danneggiare l’animale sperimentale. Pertanto, invertire la siringa e far scorrere delicatamente la canna, in modo che eventuali bolle si spostino verso la punta e fuoriesceranno. Se possibile, espellere qualche agente in eccesso per assicurarsi che le bolle siano completamente rimosse.

Ora che la siringa è bloccata e caricata, sei quasi pronto per eseguire un’iniezione!

Prima di iniziare, è importante dotarsi dei dispositivi di protezione individuale appropriati, compresi i guanti. Anche la corretta manipolazione degli animali è essenziale e varia leggermente a seconda del sito di iniezione utilizzato.

Per le iniezioni sottocutanee, che sono spesso mirate sotto il derma del collo dell’animale, i topi sono trattenuti da “scruffing”. Per prima cosa, tieni l’animale per la coda e lascia che afferri il coperchio della gabbia. Quindi, afferra saldamente la collottola, sollevando una tenda di pelle sulle spalle dell’animale.

L’ago deve essere inserito alla base della pelle tendata e l’agente deve essere dispensato da una pressione ferma e costante sullo stantuffo. Il liquido iniettato verrà lentamente assorbito nel flusso sanguigno.

Le iniezioni intraperitoneali nella cavità corporea vengono assorbite ad una velocità simile all’ingestione. Per accedere all’addome, gira l’animale trasandato e infila saldamente la coda sotto il mignolo.

Quindi, dividi mentalmente l’addome dell’animale in 4 quadranti e inserisci l’ago nel quadrante in basso a sinistra o a destra. Applicare una pressione ferma e costante sullo stantuffo per erogare fino a diverse centinaia di microlitri di agente. In alternativa, le iniezioni endovenose consentono una somministrazione sistemica più efficiente di agente sperimentale.

Le iniezioni endovenose sono più comunemente eseguite nelle vene della coda. In primo luogo, i topi vengono riscaldati sotto una lampada di calore per alcuni minuti, il che provoca il rigonfiamento delle vene e facilita l’inserimento dell’ago. Per mantenere il mouse fermo durante l’iniezione, posizionarlo in un limitatore di plastica, facendo scivolare la coda attraverso uno speciale foro nella parte posteriore.

Identificare la nave corretta è indispensabile per il successo delle iniezioni endovenose. Assicurati di trovare una delle due vene caudali su entrambi i lati della coda; non l’arteria sul lato inferiore della coda.

Tenendo il lato smussato dell’ago, inserirlo nella vena. Se l’ago è posizionato correttamente, l’iniezione farà sì che la vena cambi da blu scuro a bianco pallido di colore mentre l’agente si muove attraverso il vaso.

Dopo ogni iniezione, gettare l’ago in un contenitore di taglienti biohazardous senza ricapitolare. Non riutilizzare mai l’ago, poiché le punte possono diventare smussate e causare lesioni al topo.

Ora che hai familiarità con i metodi di iniezione comuni, diamo un’occhiata ad alcune applicazioni pratiche della somministrazione sperimentale di agenti.

In molti esperimenti, i topi sono infettati da un agente patogeno specifico per studiare la progressione della malattia e le interazioni ospite-patogeno. Ad esempio, le iniezioni sottocutanee di batteri resistenti agli antibiotici causano lesioni la cui dimensione è una lettura per la virulenza dell’agente patogeno. In alternativa, le iniezioni nella pedana possono essere utilizzate per l’imaging dal vivo del reclutamento delle cellule immunitarie nel sito di infezione.

I modelli murini sono utili anche per lo studio della progressione del cancro e delle terapie. Per generare questi modelli, le iniezioni possono essere utilizzate per indurre in modo rapido ed efficiente crescite maligne nei topi, sia attraverso la somministrazione di composti cancerogeni che l’impianto di cellule tumorali nei tessuti ospiti.

Tuttavia, l’iniezione non è sempre richiesta per la consegna dell’agente. L’inoculazione intranasale, ad esempio, può essere utilizzata per somministrare un agente di interesse per i polmoni per imitare e studiare la progressione della malattia respiratoria. Un’altra via, il gavage, consente la somministrazione diretta dell’agente allo stomaco per garantire un dosaggio preciso e accurato non ottenibile attraverso il trattamento a base di cibo o acqua.

Hai appena visto la panoramica di JoVE sull’introduzione di agenti sperimentali nel mouse. In questo video abbiamo esaminato i fattori da considerare quando si sceglie un agente sperimentale, strumenti e strategie per le iniezioni di topo e alcune applicazioni di queste tecniche critiche. Grazie per l’attenzione!

Transcript

Many experiments depend upon the administration of agents to mice. Frequently, these agents are introduced to test their effect on a biological process. Agents can also play an important role in preparing animals for experimentation. In this video, we will discuss important considerations for administering experimental agents, tools for agent delivery, some specific routes of administration, and applications of these essential techniques.

So what factors must be considered when planning the administration of an experimental agent?

The first is the appropriate dose. Usually calculated in relation to the animal’s weight, providing the correct dose of an agent is critical.

The route of administration is also important to consider. Properties such as the agent’s palatability, viscosity, the amount to be administered, the target tissue, and the desired rate of dissemination will determine which of the many available administration routes you should choose. In this video we will focus on injection, which is one of the most efficient methods of agent delivery.

Before discussing how to perform an injection, let’s get familiar with the principal tools for the technique.

We’ll begin with the syringe. Liquids are held within the barrel, which is marked to allow accurate volume measurements. The plunger fits within the barrel and is used to drive movement of its contents. Finally, the syringe tip is the site of attachment of the needle hub. At the opposite end of the needle shaft you’ll find a beveled tip. Be careful, it’s very sharp!

Needle hubs are color coded to reflect their size, or “gauge”, with higher gauge numbers indicating smaller needles. Gauges are chosen based on the desired route of delivery: the smaller or more sensitive the area, the smaller the needle required.

After selecting the appropriate needle and syringe for your experiment, draw the agent into the barrel by pulling back on the plunger. Air bubbles injected along with the agent can disrupt tissues and harm the experimental animal. Therefore, invert the syringe and gently flick the barrel, so that any bubbles will move towards the tip and escape. If possible, expel some excess agent to make sure the bubbles are completely removed.

Now that your syringe is locked and loaded, you’re almost ready to perform an injection!

Before you start, it’s important to equip yourself with the appropriate personal protective equipment, including gloves. Proper animal handling is also essential, and varies slightly depending on the injection site used.

For subcutaneous injections, which are often targeted below the dermis of the animal’s neck, mice are restrained by “scruffing.” First, hold the animal by the tail and allow it grip the cage lid. Then, firmly grasp the scruff, raising a tent of skin across the animal’s shoulders.

The needle should be inserted at the base of the tented skin, and the agent dispensed with a firm, consistent pressure to the plunger. The injected liquid will be slowly absorbed into the bloodstream.

Intraperitoneal injections into the body cavity are absorbed at a rate similar to ingestion. To access the abdomen, turn the scruffed animal over, and tuck the tail securely under your pinky.

Then, mentally divide the animal’s abdomen into 4 quadrants and insert the needle into the lower left or right quadrant. Apply firm, consistent pressure to the plunger to deliver up to several hundred microliters of agent. Alternatively, intravenous injections allow a more efficient, systemic delivery of experimental agent.

IV injections are most commonly performed in the tail veins. First, mice are warmed under a heat lamp for a few minutes, which causes the veins to swell and makes needle insertion easier. To keep the mouse steady during the injection, place it into a plastic restrainer, slipping the tail through a special hole in the back.

Identifying the correct vessel is imperative for successful intravenous injections. Be sure to find one of the two caudal veins on either side of the tail; not the artery on the underside of the tail.

Holding the needle bevel side up, insert it into the vein. If the needle is correctly placed, injection will cause the vein to change from dark blue to pale white in color as the agent moves through the vessel.

After each injection, discard the needle into a biohazardous sharps container without recapping. Never reuse the needle, as tips can become blunted and cause injury to the mouse.

Now that you’re familiar with common injection methods, let’s look at some practical applications of experimental agent delivery.

In many experiments, mice are infected with a specific pathogen to study disease progression as well host-pathogen interactions. For example, subcutaneous injections of antibiotic resistant bacteria cause lesions whose size is a readout for the pathogen’s virulence. Alternatively, injections into the footpad can be used for live imaging of immune cell recruitment to the site of infection.

Mouse models are also useful for the study of cancer progression and therapeutics. To generate these models, injections can be used to rapidly and efficiently induce malignant growths in mice, both through the delivery of carcinogenic compounds and the implantation of cancer cells into host tissues.

However, injection is not always required for agent delivery. Intranasal inoculation, for instance, can be used to administer an agent of interest to the lungs to mimic and study respiratory disease progression. Another route, gavage, allows the direct administration of agent to the stomach to ensure a precise and accurate dosing not achievable through food- or water-based treatment.

You’ve just watched JoVE’s overview of introducing experimental agents into the mouse. In this video we reviewed factors to consider when choosing an experimental agent, tools and strategies for mouse injections, and some applications of these critical techniques. Thanks for watching!