August 26th, 2014
Questo manoscritto descrive un protocollo che applica un profilo completo per l'analisi di programmi trascrizionali indotti in specifici nuclei cerebrali di roditori seguendo paradigmi comportamentali. In questo articolo, questo approccio è illustrato nel contesto della profilazione dei geni indotti nel nucleo accumbens (NAc) dei topi in seguito all'esposizione acuta alla cocaina, utilizzando array microfluidici qPCR.
L'obiettivo generale del seguente esperimento è quello di studiare le dinamiche trascrizionali e i nuclei cerebrali definiti dei topi in seguito all'esperienza comportamentale. Ciò si ottiene abituando prima gli animali e registrando la loro attività locomotoria dopo l'iniezione di soluzione salina. Una volta assuefatta, l'attività locomotoria viene registrata dopo una singola dose di cocaina, i campioni dal nucleo accumbens vengono quindi raccolti e utilizzati per l'isolamento dell'RNA e la preparazione del CDNA.
Successivamente viene eseguita l'analisi QPCR per studiare l'espressione genica indotta dal comportamento. Alla fine, si ottengono risultati che mostrano le dinamiche trascrizionali dopo l'esperienza con la cocaina A dimostrare il protocollo saranno il Dr.Hatu, il responsabile del laboratorio, Dum Muer, uno studente laureato del laboratorio e Duran uno studente universitario del laboratorio per tre giorni consecutivi. Ogni topo è abituato alle procedure di manipolazione e iniezione, ha organizzato i topi in gabbie prima di iniziare l'esperimento, in modo tale che i topi non vengano trasferiti tra le gabbie in futuro e i topi non vengano mai lasciati in isolamento per un lungo periodo di tempo.
30 minuti prima dell'inizio del test, tutte le gabbie di prova devono essere trasferite nella stanza comportamentale per consentire agli animali di acclimatarsi all'ambiente. Somministrare un'iniezione intraperitoneale di 250 microlitri di soluzione fisiologica immediatamente dopo l'iniezione, posizionare il topo in una camera comportamentale per monitorare l'attività locomotoria per 15 minuti. Il mouse può essere posizionato nella camera di comportamento per 20 minuti.
Un'attività monitorata dal secondo minuto al minuto 17. Ripeti questi passaggi alla stessa ora del giorno per i due giorni successivi. Il quarto giorno, somministrare una singola iniezione di cocaina o soluzione salina, a seconda del gruppo, e posizionare immediatamente il topo nella camera per monitorare l'attività motoria locale per 20 minuti in punti temporali selezionati dopo l'esposizione alla cocaina, estrarre il cervello e metterlo in una soluzione ghiacciata di liquido cerebrospinale per uno o due minuti per raffreddare e indurire.
Dopo aver rimosso il cervelletto e aver espulso il liquido in eccesso, incollare il cervello al tavolino di un vibram con la parte rostrale rivolta verso l'alto. Riempire la camera con liquido cerebrospinale A ghiacciato e tagliare sezioni da 200 micron fino a quando il nucleo accumbens non è chiaramente identificato. Prestare molta attenzione alla forma del corpo calloso, alla posizione e alla forma della commessura anteriore e dei ventricoli durante il taglio.
Una volta identificata la regione corretta, tagliare due sezioni di 400 micron da cui verrà sezionato il nucleo accumbens sotto uno stereoscopio. Usa una lama sottile per sezionare il nucleo accumbens lontano dalle fette. Quattro rapidi passaggi della lama nell'area corretta dovrebbero isolare immediatamente il tessuto appropriato.
Posizionare il tessuto isolato in 900 microlitri di reagente di lisi e conservarlo a meno 80 gradi Celsius fino all'estrazione dell'RNA per iniziare a scongelare le provette a 37 gradi Celsius e omogeneizzare. Utilizzando un ago calibro 25, i primi colpi possono essere difficili e richiedere la spinta del tessuto contro la parete del tubo per omogeneizzarlo in piccoli pezzi. Per garantire una corretta omogeneizzazione, pipettare il lisato su una mini colonna rotante trituratore kaya e centrifugare.
Pipettare il lisato in una nuova provetta per microcentrifuga ed estrarre l'RNA secondo le istruzioni del produttore. Dopo la purificazione dell'RNA, viene eseguita la trascrizione inversa in CDNA e l'amplificazione preem specifica del bersaglio dei campioni con primer diretti contro il gruppo di geni scelti per l'analisi. Queste procedure sono descritte nella versione testuale del protocollo.
I chip microfluidici commerciali per l'analisi QPCR completa sono disponibili in 48 x 48. Formato, che consente l'analisi di 48 campioni con 48 set di sonde, o in un formato 96 per 96 in cui 96 campioni vengono analizzati con 96 sonde. Nella maggior parte dei casi, la scelta del chip dipende principalmente dal numero di campioni analizzati.
Per prima cosa, prepara la miscela del campione in base al chip scelto per l'esperimento. Prestare attenzione durante il pipettaggio del reagente di caricamento del campione con colorante legante 20 XDNA. Agitare le soluzioni di miscela del campione per almeno 20 secondi e centrifugare per almeno 30 secondi.
Le reazioni preparate possono essere conservate per brevi periodi a quattro gradi Celsius fino a quando il chip non è pronto per il caricamento. Successivamente, preparare la miscela di analisi, agitare accuratamente la miscela del campione e centrifugare per centrifugare tutti i componenti. Come mostrato in precedenza, il chip IFC ad array dinamico è dotato di ingressi per campioni e saggi, nonché di ingressi specifici per il fluido della linea di controllo utilizzato per pressurizzare le camere microfluidiche.
Innanzitutto, iniettare il fluido della linea di controllo in ciascun accumulatore sul chip. Quindi, adescare il chip inserendolo nel controller IFC ed eseguendo lo script appropriato. Al termine dello script, rimuovere il chip innescato dal controller IFC e pipettare cinque microlitri di ciascun test.
Mescolare sulla patatina. Aggiungere cinque microlitri di ogni miscela di campioni nei loro ingressi e restituire il chip al controller IFC utilizzando il software del controller IFC. Eseguire lo script per caricare i campioni e i saggi nel chip.
Al termine dello script di miscelazione del carico, rimuovere il chip caricato dal controller IFC. Quindi, caricare il chip sul termociclatore e creare una nuova corsa del truciolo che includa un'analisi della curva di fusione. L'utilizzo del software del termociclatore garantisce che le camere di reazione vengano riconosciute correttamente e consenta il completamento della reazione.
Un aumento dell'attività locomotoria era evidente dopo una singola iniezione acuta di cocaina. In questa sezione coronale, spesse linee bianche segnavano la posizione dei tagli effettuati per definire i confini del nucleo accumbens. Durante la dissezione, le curve di amplificazione dei primer diretti contro CFO e phos B dimostrano che le coppie di primer amplificano il loro trascritto target con un'efficienza di circa il 100%.
In ogni ciclo, i risultati mostrano che l'espressione indotta dalla cocaina di CFO e phos B nel nucleo accumbens era più alta una e due ore dopo l'esposizione. Seguendo questa procedura, è possibile eseguire altri metodi, come il sequenziamento di nuova generazione, al fine di identificare un nuovo trascritto non caratterizzato.
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Questo manoscritto descrive un protocollo per analizzare i programmi trascrizionali in specifici nuclei cerebrali di roditori dopo paradigmi comportamentali. L'approccio è illustrato attraverso la profilazione dei geni indotti nel nucleo accumbens (NAc) dei topi dopo un'esposizione acuta alla cocaina.
This protocol enables biopharma R&D teams to quantitatively assess transcriptional dynamics in defined brain regions following behavioral or pharmacological perturbations, supporting target validation in neuropsychiatric drug discovery. By providing reproducible, quantitative gene expression readouts from limited tissue samples, it enhances predictive confidence in early-stage mechanistic studies and informs go/no-go decisions for CNS-targeted therapeutics. The approach is particularly valuable for de-risking hypotheses related to addiction, reward pathways, and behavioral phenotypes prior to investment in lead optimization.
The method fits within the early discovery continuum, supporting hypothesis-driven target validation and assay development prior to lead identification efforts in CNS drug discovery programs.