Name: Isolamento e Cultura della dissociato neuroni sensoriali da embrioni di gallina (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 16 s
Description: Impara a isolare e coltivare neuroni sensoriali dissociati da embrioni di gallina. Questo metodo rapido ed economico permette di studiare la biologia cellulare neuronale in un ambiente controllato.

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Vorremmo ringraziare Alison Philbrook, Belinda Barbagallo e Michael Francis per i commenti perspicaci su questo documento. La ricerca riportata in questa pubblicazione è stato sostenuto da un premio R15 AREA 1R15NS070172-01A1 assegnato a MLL.

1 Coverslip Preparazione: lavaggio acido e Bake <ol><li> Almeno 2 giorni prima della dissezione (punto 2), iniziare la seguente procedura per preparare vetrini. Eseguire la fase di lavaggio acido per rimuovere oli e coprioggetto accuratamente puliti. </li><li> Coprioggetto carico di titolare di porcellana che posiziona verticalmente coprioggetto e impedisce loro di toccarsi. Immergere porta e coprioggetto in un contenitore di vetro riempito con istologia 2 M di acido cloridrico (HCl). In alternativa, se titolare di porcellana non è disponibile, si sviluppa ~ 20 coprioggetto orizzontalmente per coprire il fondo di 100 mm vetro piastra di Petri e immergere coprioggetto in 2 M HCl. </li><li> Collocare recipiente di vetro (con coprioggetto sommerse in acido) sulla tabella rocker in cappa e permettere dolce dondolo per almeno 5 ore a temperatura ambiente. In alternativa, lavaggio acido coprioggetto durante la notte nelle stesse condizioni. </li><li> Lavare coprioggetto con H 2 O distillata (dH 2 O) trasferendo titolare porcellana caricatocon coprioggetto da 2 M HCl a un contenitore di istologia di vetro pulito riempito con dH 2 O. In alternativa, decantare 2 M HCl da vetro piatto di Petri con coprioggetto e riempire con dH 2 O. </li><li> Lavare per decantazione nuovo dH 2 O e ricarica vaso di vetro con fresca dH 2 O. Ripetere per un totale di 3 lavaggi rapidi. </li><li> Inizia regime di lavaggio più restituendo recipiente di vetro (con coprioggetto e dH 2 O) sul bilanciere. Lasciare per agitazione per 10-30 minuti a temperatura ambiente. Poi, decantare dH 2 O e aggiungere dH fresco 2 O. Ripetere per un totale di almeno dieci lavaggi. In alternativa, continuare il lavaggio durante la notte. </li><li> Mettere coprioggetto lavati in forno preriscaldato a 350 ° C. Se si utilizza supporto di porcellana, rimuovere il supporto da dH 2 O contenitore di vetro riempito e poi posto supporto con coprioggetti direttamente nel forno. Se si utilizza una capsula di Petri di vetro, decantare dH 2 O e posizionare il piatto di vetro con lamelle in furnace. </li><li> Cuocere lamelle per almeno cinque ore o durante la notte a 350 ° C. </li><li> Dopo la cottura, rimuovere coprioggetto dal supporto di porcellana con pinza sottile e riporre in sterile 100 millimetri di vetro piatto di Petri. Lascia coprioggetto che non sono stati originariamente inseriti nel supporto di porcellana nella scatola di Petri di vetro. </li></ol> 2. Chick Dissezione e isolamento dei DRG <ol><li> Rimuovere fertile, messo in scena Bianco Livorno pulcino uovo da incubatrice (tenutasi a 37-38,5 ° C con dolce dondolio). NOTA: Studi precedenti hanno utilizzato il giorno embrionale 7-10 per l&#39;isolamento di DRG 2,8,11-13,16. </li><li> Mettere l&#39;uovo selezionato in cappa a flusso laminare. Condurre tutte le procedure elencate di seguito in condizioni asettiche in cappa a flusso laminare con soluzioni e strumenti sterili. Pre-caldo tutte le soluzioni in un bagno di 37 ° C Acque. </li><li> Crack uovo e posizionare il contenuto in un 100 millimetri piastra di Petri di plastica. Utilizzare pinze standard per il trasferimento di embrioni in un altro piatto di Petri a 100 mm. </li><li&gt; Usando una pipetta Pasteur, aggiungere riscaldato 1x PBS per piastra di Petri per mantenere il tessuto umido. Decapitare embrione pizzicando collo con una pinza sottile. Trasferimento corpo ad un altro pulito 100 millimetri piastra di Petri. </li><li> Aggiungi F12HS10 caldo (F12 di Ham, HEPES 10 mM, 100 unità / ml di penicillina, 0,1 mg / 10% di siero fetale bovino ml streptomicina,) per Piatto con pipetta Pasteur per mantenere il tessuto umido. Utilizzare pinze per posizionare embrione sul suo lato dorsale (Figura 1A). </li><li> Mettere 100 millimetri in plastica piastra di Petri contenente tessuto embrionale su un microscopio da dissezione stereovisione binoculare in cappa a flusso laminare. Utilizzare una pinza sottile per fare una incisione verticale mediana dalla coda alla nuca pizzicando il derma in via di sviluppo per esporre il cuore, polmoni e altri organi. In alternativa, fare una serie di piccoli strappi per esporre gli organi interni. </li><li> Utilizzano delicatamente 2 set di sterili pinza sottile a: a) cogliere il collo e b) cogliere l&#39;aorta o di altri tessuti immediatamente superiore al cuore e tirare verso la coda,sviscerare l&#39;animale. </li><li> Applicare F12HS10 caldo con pipetta Pasteur al tessuto. Usare pinze per rimuovere eventuali cardiovascolari, organi respiratori o digestivi rimanenti per esporre le costole in via di sviluppo, la colonna vertebrale e DRG (Figure 1B-1D). </li><li> Sotto il microscopio da dissezione, utilizzare una pinza sottile per rimuovere ulteriormente gli organi e raccogliere DRG lungo entrambi i lati della colonna vertebrale lombare, inferiore alle costole. Raccogliere DRG pizzicando DRG intatti dall&#39;embrione. Afferrare e recidere le radici che arrivano dalla DRG verso il midollo spinale e afferrare il nervo in via di sviluppo che arriva dal DRG verso la periferia o viceversa. </li><li> Mettere DRG intatti in un piatto di cultura 35 millimetri pieno di F12HS10 caldo. Rimuovere qualsiasi tessuto in eccesso, come la dorsale o delle radici ventrali che possono aver aderito a DRG, dai DRG intatte in piastra da 35 mm da pizzicare con una pinza sottile. </li><li> Per ottenere DRG superiori alla regione lombare, rimuovere la metà ventrale del torace e Cervical colonna vertebrale. Ciò avviene effettuando un taglio sulla colonna vertebrale sviluppo perpendicolare all&#39;asse del midollo spinale nella regione cervicale superiore e un altro taglio nella regione lombare superiore. Quindi, fare tagli paralleli all&#39;asse del midollo spinale lungo il lato destro e sinistro della colonna vertebrale. Sollevare la parte ventrale della colonna vertebrale dall&#39;embrione, che espone i espone il midollo spinale (Figure 1E-1F). </li><li> Per consentire un facile accesso ai DRG, rimuovere il midollo spinale toracico e cervicale afferrando il midollo spinale con una pinza sottile. Utilizzare le pinze per sollevare il midollo spinale dalla colonna vertebrale. In prima approssimazione, il midollo spinale toracico è a livello di nervature e la zona cervicale è superiore alle costole. </li><li> Raccogliere toracica intatta e DRG cervicali con una pinza sottile e metterli in F12HS10 caldo con altri DRG. Rimuovere il tessuto in eccesso che possono aderire a DRG. </li><li> Risciacquare interno di una nuova pipetta Pasteur di vetro con F12HS10 per aiutareimpedire DRG di attaccarsi alle pareti della pipetta. Utilizzare la pipetta sciacquati per trasferire tutti i DRG e F12HS10 dalla piccola scatola di Petri in un tubo da 15 ml sterile e procedere immediatamente al punto 3. NOTA: Ulteriori embrioni possono essere sezionati per aumentare il numero di DRG. DRG devono essere tenuti in F12HS10 a 37 ° C fino al momento per il passo 3. </li></ol> 3 Dissociazione, Arricchimento, e Coltura DRG neuroni - Parte 1 <ol><li> Luogo tubo conico con DRG intatti in centrifuga e delicatamente girare (200 xg) per 2-3 minuti. Verificare che DRG hanno affondato al fondo della provetta. In caso contrario, far girare nuovamente. </li><li> Utilizzando una pipetta, rimuovere delicatamente F12HS10, lasciando DRG pellet indisturbati. Aggiungere 2 ml di 1x calcio e magnesio libero (CMF) PBS, staccare il pellet di DRG. Spin di nuovo e rimuovere CMF PBS lasciando intatto il pellet DRG. Ripetere questa operazione di lavaggio per un totale di tre lavaggi per rimuovere siero fetale bovino in F12HS10, che potrebbero interferire con la digestione tripsina in fase successiva. </li><li> Aggiungere 2 ml di tripsina riscaldato a tubo da 15 ml contenente 2 ml di PBS CMF e DRG. Collocare il tubo nel 37 ° C bagnomaria per 10-15 minuti a digerire DRG in cellule dissociate. </li><li> Durante l&#39;incubazione, far F12H + supplemento contenente i media (F12 di Ham, 10 mM HEPES 100 unità / ml di penicillina, 0,1 mg / ml di streptomicina, 10 ng / ml NT3, 10 ng / ml NGF, 200 mm L-glutammina e N2) e caldo a 37 ° C bagnomaria. Tipicamente, 10 ml di media totale è sufficiente per 4-5 35 millimetri piatti di neuroni sensoriali primari. Anche cominciare scongelamento laminina-1 per coprioggetto rivestimento (punto 4). </li><li> DRG delicatamente triturare in soluzione di tripsina con p1000 pipetta ed ispezionare visivamente l&#39;assenza di DRG intatti. Continuare triturazione fino DRG intatti non sono più visti da occhi e / o consentire più a lungo di incubazione tripsina a 37 ° C fino a bagnomaria DRG intatti sono dissociate. Per proteggere i neuroni DRG da danni, evitare bolle d&#39;aria durante la triturazione e limitare tripsina digestione a &lt;30 min. </li><li> Centrifuge provetta contenente DRG dissociate e tripsina a 200 xg per 3-5 minuti per formare pellet. Spin più a lungo se necessario fino a quando si forma pellet. </li><li> Attenzione aspirare tripsina senza interrompere pellet. Aggiungere 2 ml di F12HS10 a pellet. Triturare delicatamente DRG con una punta p1000 pipetta. </li><li> Trasferire tutti i contenuti di tubo da 15 ml in 100 mm piatto di cultura. Sciacquare il tubo con 8 ml F12HS10 e trasferirlo al piatto cultura, 2 ml alla volta per un totale di 10 ml. Questo passaggio risciacquo aiuta raccogliere cellule che possono essere rimaste aderito alle pareti del tubo. </li><li> Mettere 100 mm piatto cultura (10 ml F12HS10 e dissociato cellule DRG) in un umidificata 37 ° C incubatore per 3 ore. NOTA: CO 2 non è richiesto in incubatrice perché HEPES tampona il pH dei media, in assenza di CO 2. Durante l&#39;incubazione, le cellule gliali si legano alla superficie del tessuto della cultura plastica e neuroni tendono ad aderire liberamente a letto gliale. </li></ol> 4 Acid Washed rivestimentoe vetrini al forno con laminina-1 <ol><li> Scongelare aliquote sterili di laminina-1 congelato sul ghiaccio. </li><li> In condizioni sterili, aggiungere 1 ml di PBS sterile 1x a 50 ml un&#39;aliquota di laminina-1. </li><li> Utilizzare uno spettrofotometro per ottenere un valore di assorbanza di laminina-1 a 280 nm. Utilizzare questo valore nella seguente equazione per determinare la concentrazione di laminina-1. </li></ol> ABS 280 = (concentrazione mg / ml) * (coefficiente di estinzione di proteina) Il coefficiente di estinzione per laminina-1 è 0.86. <ol start="4"><li> In condizioni sterili, diluire laminina-1 con PBS 1X per ottenere le concentrazioni di 1 mg / ml e 20 mg / ml. Utilizzare questi due concentrazioni di laminina-1 applicati per ottenere una differenza di dieci volte della laminina-1 legata alla coprioggetto (30 ng / cm 2 e 300 ng / cm 2, rispettivamente) dopo incubazione 7,8,10. </li><li> In una cappa a flusso laminare, utilizzare una pinza sottile per posizionare una lavata con acido e al forno coverslip nel fondo di una piastra da 35 mm coltura. Ripetere se necessario per ottenere il numero di piatti necessari. </li><li> Sottoporre i coprioggetti a luce UV per 20-30 minuti al fine di garantire ulteriormente la sterilizzazione. Tenere il coperchio piatto durante questa fase. </li><li> Aggiungere 400 ml di laminina-1 preparato per ogni vetrino coprioggetto. Utilizzare la punta della pipetta per diffondere laminina-1 per garantire la piena copertura dei coprioggetto. Tensione superficiale consentirà laminina-1 per rimanere sul coprioggetto e si diffonde sul fondo del piatto di cultura, che è richiesto. </li><li> Mettere il coperchio sul piatto e lasciare laminina-1 a incubare per 2-3 ore a temperatura ambiente (3 ore è ottimale). </li><li> Dopo laminina-1 di incubazione, lavare coprioggetto utilizzando la tecnica asettica con PBS sterile in cappa a flusso laminare. Rimuovere soluzione sul coprioggetto e aggiungere 400 ml di PBS. Attendere 5-10 min. Ripetere per un totale di 3 risciacqui. </li><li> Lascia PBS sul coprioggetto dopo l&#39;ultimo risciacquo. Non rompere la tensione superficiale durante il risciacquo e non consentono coprioggetto si asciughino. Lecoperchio ave fino pronto al piatto neuroni dissociato sul coverlip. </li></ol> 5. Dissociazione, Arricchimento, e Coltura DRG neuroni - Parte 2 <ol><li> Dopo l&#39;incubazione, utilizzare una pipetta 10 ml sterile per sciacquare delicatamente la parte inferiore del piatto 100 millimetri contenente cellule DRG dissociate. Tenere piatto a ~ 45 °, tirare ~ 7 ml di F12HS10 con aiuti pipetta, poi delicatamente espellere 7 ml su circa un terzo del piatto. Ripetere 5x, rimuovendo delicatamente i neuroni. </li><li> Ruotare piatto e ripetere il risciacquo procedura, per altri sei risciacqui, su un altro terzo del piatto. Ripetere la procedura per il restante terzo di nuovo di piatto. In questo modo, sciacquare delicatamente l&#39;intero fondo del piatto con F12HS10 per rimuovere i neuroni. </li><li> Utilizzando stessa pipetta, trasferire F12HS10 contenente neuroni da mm piatto 100 a 15 tubo conico. Centrifugare per 5-10 min a 200 g per far sedimentare le cellule. </li><li> Rimuovere F12HS10, lasciando pellet indisturbati. Risospendere il pellet con 2 ml di F12H + supplementi riscaldato. </li><li&gt; Utilizzare un emocitometro per determinare la densità delle cellule. </li><li> Diluire le cellule, se necessario con integratori F12H + per determinare la concentrazione plating desiderato (120.000 cellule / ml per vetrini rivestiti con / ml laminina-1 e 40.000 cellule 1 mcg / ml per coprioggetto rivestiti con 20 mcg / ml laminina-1 8,16). </li><li> Rimuovere PBS da coprioggetto laminina rivestite e collocare immediatamente 400 ml di cellule su vetrini. Trasferire accuratamente piatto per un umidificata, 37 ° C coltura cellulare incubatore. Lasciare incubare per almeno 1 ora e fino a 3 ore per consentire i neuroni di aderire alla laminina-1. </li><li> In condizioni sterili, inondare delicatamente 35 millimetri piatti contenenti neuroni con 1,6 ml di F12H + supplementi. NOTA: In questo momento, la tensione superficiale sul coprioggetto può essere rotto. I neuroni sono adeguatamente rispettate laminina-1 sul coprioggetto. </li><li> Cellule Torna a incubatore e incubare una notte. Eseguire esperimenti, quali immunocitochimica il giorno successivo. </li></ol> 6.mmunocytochemistry <ol><li> Prima di immunocitochimica, soluzione fissativa caldo (4% paraformaldeide, il 30% di saccarosio 2X PBS) a 37 ° C bagnomaria. NOTA: Prima di fissare le cellule, trattare con i vari reagenti, come netrina-1, Mn 2 +, sonic hedgehog, semaphorin, e ephrin 16,29-31. </li><li> Rimuovere lentamente 1 ml di 2 ml di F12H + supplementi da piatto di cultura. Delicatamente aggiungere 1 ml di soluzione fissativa riscaldato. Lasciare incubare a temperatura ambiente per 10-15 minuti. </li><li> Rimuovere con cautela la soluzione fissativa e aggiungere 2 ml di PBS. Applicare la soluzione verso il bordo del piatto, evitando possibili sloggiare delle cellule fisso a seguito di applicazione di PBS. Incubare a temperatura ambiente per 5 min. </li><li> Ripetere lavaggio PBS per un totale di 5 lavaggi. Non permettere che le cellule si asciughino durante qualsiasi fase di immunocitochimica. </li><li> Rimuovere PBS. Applicare 1 ml di soluzione bloccante (0,1% Triton-X, 1X PBS, siero di capra normale 5%). Incubare per 1 ora a temperatura ambiente. In alternativa, a macchia molecole di superficie, Non utilizzare Triton-X nel bloccare soluzione 8. </li><li> Diluire gli anticorpi primari nella soluzione bloccante per la raccomandazione del produttore. Utilizzare 1: 500 per anticorpi contro NCAM e attivato β1 integrine 16. Rimuovere la soluzione bloccante, aggiungere 1 ml di soluzione di anticorpo primario e incubare per 1 ora a temperatura ambiente o per una notte a 4 ° C. </li><li> Rimuovere la soluzione anticorpo primario e aggiungere 2 ml di PBS 1X. Incubare per 5-10 minuti a temperatura ambiente. Ripetere per un totale di 4 lavaggi PBS. Lava può essere esteso, se necessario. </li><li> Diluire l&#39;anticorpo secondario 1: 1.000 nel bloccare soluzione. Rimuovere PBS, aggiungere 1 ml di soluzione di anticorpo secondario e incubare per 1 ora a temperatura ambiente. NOTA: Gli anticorpi secondari sono sensibili alla luce. Mantenere soluzioni e cellule nel buio più possibile da questo punto in avanti. </li><li> Rimuovere la soluzione anticorpo secondario e risciacquare 5x con 1x PBS, come fatto in precedenza. </li><li> Applicare ~ 60-80 ml di FluoromountG su un vetrino da microscopio. Utilizzando una pinza sottile, sollevare delicatamente il vetrino coprioggetto da piatto e basso coprioggetto in Fluoromount G su vetrino da microscopio. Evitare le bolle d&#39;aria. </li><li> Conservare scorre orizzontalmente a 4 ° C al buio. Dopo 12-24 ore, Fluormount G si polimerizza e coprioggetto sarà saldamente attaccato al vetrino da microscopio. Celle di immagine dopo questa fase di polimerizzazione è completa. </li></ol>

<ol><li>Millet, L. J., Gillette, M. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Over+a+century+of+neuron+culture%3A+from+the+hanging+drop+to+microfluidic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22The+Yale+journal+of+biology+and+medicine%22%5BJournal%5D)">Over a century of neuron culture: from the hanging drop to microfluidic devices.</a> The Yale journal of biology and medicine. 85, 501-521 (2012).</li>
<li>Guan, W., Puthenveedu, M. A., Condic, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensory+neuron+subtypes+have+unique+substratum+preference+and+receptor+expression+before+target+innervation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Sensory neuron subtypes have unique substratum preference and receptor expression before target innervation.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 23, 1781-1791 (2003).</li>
<li>Kapitein, L. C., Hoogenraad, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Which+way+to+go%3F+Cytoskeletal+organization+and+polarized+transport+in+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+cellular+neurosciences%22%5BJournal%5D)">Which way to go? Cytoskeletal organization and polarized transport in neurons.</a> Molecular and cellular neurosciences. 46, 9-20 (2011).</li>
<li>Kapitein, L. C., Yau, K. W., Hoogenraad, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microtubule+dynamics+in+dendritic+spines%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Microtubule dynamics in dendritic spines.</a> Methods in cell biology. 97, 111-132 (2010).</li>
<li>Snow, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pioneering+studies+on+the+mechanisms+of+axonal+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+neurobiology%22%5BJournal%5D)">Pioneering studies on the mechanisms of axonal regeneration.</a> Developmental neurobiology. 71, 785-789 (2011).</li>
<li>Melli, G., Hoke, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dorsal+Root+Ganglia+Sensory+Neuronal+Cultures%3A+a+tool+for+drug+discovery+for+peripheral+neuropathies%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+opinion+on+drug+discovery%22%5BJournal%5D)">Dorsal Root Ganglia Sensory Neuronal Cultures: a tool for drug discovery for peripheral neuropathies.</a> Expert opinion on drug discovery. 4, 1035-1045 (2009).</li>
<li>Condic, M. L., Letourneau, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ligand-induced+changes+in+integrin+expression+regulate+neuronal+adhesion+and+neurite+outgrowth%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Ligand-induced changes in integrin expression regulate neuronal adhesion and neurite outgrowth.</a> Nature. 389, 852-856 (1997).</li>
<li>Lemons, M. L., Condic, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+integrin+activation+and+intracellular+cAMP+cause+Rho+GTPase+dependent+growth+cone+collapse+on+laminin-1%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+neurology%22%5BJournal%5D)">Combined integrin activation and intracellular cAMP cause Rho GTPase dependent growth cone collapse on laminin-1.</a> Experimental neurology. 202, 324-335 (2006).</li>
<li>Beller, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+sensory+neuron+growth+cone+and+filopodial+responses+to+structurally+diverse+aggrecan+variants%2C+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+neurology%22%5BJournal%5D)">Comparison of sensory neuron growth cone and filopodial responses to structurally diverse aggrecan variants, in vitro.</a> Experimental neurology. 247, 143-157 (2013).</li>
<li>Condic, M. L., Snow, D. M., Letourneau, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+neurons+adapt+to+the+inhibitory+proteoglycan+aggrecan+by+increasing+integrin+expression%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Embryonic neurons adapt to the inhibitory proteoglycan aggrecan by increasing integrin expression.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 19, 10036-10043 (1999).</li>
<li>Lemons, M. L., Barua, S., Abanto, M. L., Halfter, W., Condic, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptation+of+sensory+neurons+to+hyalectin+and+decorin+proteoglycans%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Adaptation of sensory neurons to hyalectin and decorin proteoglycans.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 25, 4964-4973 (2005).</li>
<li>Guan, W., Condic, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+Netrin-1%2C+Neogenin+and+cUNC-5H3+expression+during+chick+dorsal+root+ganglia+development%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Expr+Patterns%22%5BJournal%5D)">Characterization of Netrin-1, Neogenin and cUNC-5H3 expression during chick dorsal root ganglia development.</a> Gene Expr Patterns. 3, 369-373 (2003).</li>
<li>Guan, W., Wang, G., Scott, S. A., Condic, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shh+influences+cell+number+and+the+distribution+of+neuronal+subtypes+in+dorsal+root+ganglia%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Shh influences cell number and the distribution of neuronal subtypes in dorsal root ganglia.</a> Developmental biology. 314, 317-328 (2008).</li>
<li>Kolpak, A., Zhang, J., Bao, Z. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sonic+hedgehog+has+a+dual+effect+on+the+growth+of+retinal+ganglion+axons+depending+on+its+concentration%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Sonic hedgehog has a dual effect on the growth of retinal ganglion axons depending on its concentration.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 25, 3432-3441 (2005).</li>
<li>Kolpak, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Negative+guidance+factor-induced+macropinocytosis+in+the+growth+cone+plays+a+critical+role+in+repulsive+axon+turning%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Negative guidance factor-induced macropinocytosis in the growth cone plays a critical role in repulsive axon turning.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 29, 10488-10498 (2009).</li>
<li>Lemons, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrins+and+cAMP+mediate+netrin-induced+growth+cone+collapse%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+research%22%5BJournal%5D)">Integrins and cAMP mediate netrin-induced growth cone collapse.</a> Brain research. 1537, 46-58 (2013).</li>
<li>Snow, D. M., Atkinson, P. B., Hassinger, T. D., Letourneau, P. C., Kater, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chondroitin+sulfate+proteoglycan+elevates+cytoplasmic+calcium+in+DRG+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Chondroitin sulfate proteoglycan elevates cytoplasmic calcium in DRG neurons.</a> Developmental biology. 166, 87-100 (1994).</li>
<li>Snow, D. M., Brown, E. M., Letourneau, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+cone+behavior+in+the+presence+of+soluble+chondroitin+sulfate+proteoglycan+%28CSPG%29%2C+compared+to+behavior+on+CSPG+bound+to+laminin+or+fibronectin%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Dev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Growth cone behavior in the presence of soluble chondroitin sulfate proteoglycan (CSPG), compared to behavior on CSPG bound to laminin or fibronectin.</a> Int J Dev Neurosci. 14, 331-349 (1996).</li>
<li>Snow, D. M., Lemmon, V., Carrino, D. A., Caplan, A. I., Silver, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sulfated+proteoglycans+in+astroglial+barriers+inhibit+neurite+outgrowth+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+neurology%22%5BJournal%5D)">Sulfated proteoglycans in astroglial barriers inhibit neurite outgrowth in vitro.</a> Experimental neurology. 109, 111-130 (1990).</li>
<li>Snow, D. M., Letourneau, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurite+outgrowth+on+a+step+gradient+of+chondroitin+sulfate+proteoglycan+%28CS-PG%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+neurobiology%22%5BJournal%5D)">Neurite outgrowth on a step gradient of chondroitin sulfate proteoglycan (CS-PG).</a> Journal of neurobiology. 23, 322-336 (1992).</li>
<li>Snow, D. M., Mullins, N., Hynds, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nervous+system-derived+chondroitin+sulfate+proteoglycans+regulate+growth+cone+morphology+and+inhibit+neurite+outgrowth%3A+A+light%2C+epifluorescence%2C+and+electron+microscopy+study%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc+Res+Tech%22%5BJournal%5D)">Nervous system-derived chondroitin sulfate proteoglycans regulate growth cone morphology and inhibit neurite outgrowth: A light, epifluorescence, and electron microscopy study.</a> Microsc Res Tech. 54, 273-286 (2001).</li>
<li>Barres, B. A., Silverstein, B. E., Corey, D. P., Chun, L. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunological%2C+morphological%2C+and+electrophysiological+variation+among+retinal+ganglion+cells+purified+by+panning%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Immunological, morphological, and electrophysiological variation among retinal ganglion cells purified by panning.</a> Neuron. 1, 791-803 (1988).</li>
<li>Firnhaber, C., Hammarlund, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuron-specific+feeding+RNAi+in+C.+elegans+and+its+use+in+a+screen+for+essential+genes+required+for+GABA+neuron+function%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+genetics%22%5BJournal%5D)">Neuron-specific feeding RNAi in C. elegans and its use in a screen for essential genes required for GABA neuron function.</a> PLoS genetics. 9, e1003921(2013).</li>
<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+normal+stages+in+the+development+of+the+chick+embryo.+1951%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+dynamics+%3A+an+official+publication+of+the+American+Association+of+Anatomists%22%5BJournal%5D)">A series of normal stages in the development of the chick embryo. 1951.</a> Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists. 195, 231-272 (1992).</li>
<li>Hollyday, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chick+wing+innervation.+I.+Time+course+of+innervation+and+early+differentiation+of+the+peripheral+nerve+pattern%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+comparative+neurology%22%5BJournal%5D)">Chick wing innervation. I. Time course of innervation and early differentiation of the peripheral nerve pattern.</a> The Journal of comparative neurology. 357, 242-253 (1995).</li>
<li>Hollyday, M., Morgan-Carr, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chick+wing+innervation.+II.+Morphology+of+motor+and+sensory+axons+and+their+growth+cones+during+early+development%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+comparative+neurology%22%5BJournal%5D)">Chick wing innervation. II. Morphology of motor and sensory axons and their growth cones during early development.</a> The Journal of comparative neurology. 357, 254-271 (1995).</li>
<li>Honig, M. G., Kueter, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+expression+of+cell+adhesion+molecules+on+the+growth+cones+of+chick+cutaneous+and+muscle+sensory+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">The expression of cell adhesion molecules on the growth cones of chick cutaneous and muscle sensory neurons.</a> Developmental biology. 167, 563-583 (1995).</li>
<li>Tosney, K. W., Landmesser, L. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+the+major+pathways+for+neurite+outgrowth+in+the+chick+hindlimb%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Development of the major pathways for neurite outgrowth in the chick hindlimb.</a> Developmental biology. 109, 193-214 (1985).</li>
<li>Dontchev, V. D., Letourneau, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+growth+factor+and+semaphorin+3A+signaling+pathways+interact+in+regulating+sensory+neuronal+growth+cone+motility%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Nerve growth factor and semaphorin 3A signaling pathways interact in regulating sensory neuronal growth cone motility.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 22, 6659-6669 (2002).</li>
<li>Munoz, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ephrin-A5+inhibits+growth+of+embryonic+sensory+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Ephrin-A5 inhibits growth of embryonic sensory neurons.</a> Developmental biology. 283, 397-408 (2005).</li>
<li>Roche, F. K., Marsick, B. M., Letourneau, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+synthesis+in+distal+axons+is+not+required+for+growth+cone+responses+to+guidance+cues%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Protein synthesis in distal axons is not required for growth cone responses to guidance cues.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 29, 638-652 (2009).</li>
<li>Condic, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+neuronal+regeneration+induced+by+transgenic+integrin+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Adult neuronal regeneration induced by transgenic integrin expression.</a> Journal of Neuroscience. 21, 4782-4788 (2001).</li>
<li>Hory-Lee, F., Russell, M., Lindsay, R. M., Frank, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurotrophin+3+supports+the+survival+of+developing+muscle+sensory+neurons+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Neurotrophin 3 supports the survival of developing muscle sensory neurons in culture.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90, 2613-2617 (1993).</li>
<li>Toyofuku, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FARP2+triggers+signals+for+Sema3A-mediated+axonal+repulsion%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+neuroscience%22%5BJournal%5D)">FARP2 triggers signals for Sema3A-mediated axonal repulsion.</a> Nature neuroscience. 8, 1712-1719 (2005).</li>
<li>Steinmetz, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+enhancement+of+the+intrinsic+growth+capacity+of+sensory+neurons+combined+with+the+degradation+of+inhibitory+proteoglycans+allows+functional+regeneration+of+sensory+axons+through+the+dorsal+root+entry+zone+in+the+mammalian+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Chronic enhancement of the intrinsic growth capacity of sensory neurons combined with the degradation of inhibitory proteoglycans allows functional regeneration of sensory axons through the dorsal root entry zone in the mammalian spinal cord.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 25, 8066-8076 (2005).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Qui vi presentiamo protocolli dettagliati per l&#39;isolamento e la coltura dissociati neuroni sensoriali provenienti da un embrione di pulcino. Questa procedura genera una popolazione arricchita di neuroni robusta crescita in vitro 7,8,10,16. Numerose tecniche cellulari e molecolari possono essere applicati a questi neuroni in coltura, compreso immunocitochimica, descritto qui. Questo protocollo è stato recentemente utilizzato per valutare quantitativamente l&#39;intensità delle integrine attivate i...

I neuroni sono cellule complesse che portano le informazioni essenziali per una varietà di funzioni, tra cui la sensazione, visione, movimento del motore, l&#39;apprendimento e la memoria. Unico da altri tipi di cellule, i neuroni si estendono i processi braccio-come, chiamate assoni, per formare autostrade neurali essenziali per la comunicazione. Durante lo sviluppo specializzata vani situati alle estremità degli assoni in crescita, chiamati coni di crescita, navigare attraverso un concerto di segnali extracellulari per condurre l&#39;assone alla sua destinazione appropriata. I meccanismi molecolari complessi che sono alla base della crescita del cono di navigazione non sono pienamente compresi. Per comprendere meglio questi meccanismi, i ricercatori hanno utilizzato modelli di coltura cellulare per studiare i neuroni in vitro un ambiente definito e semplificato. Studiare i neuroni in coltura 1 ha portato a significativi progressi nella nostra comprensione della biologia delle cellule neuronali tra cui: la differenziazione neuronale 2, la dinamica del citoscheletro, endocitosi e traffico, dendriteregolazione 3,4, la rigenerazione assonale 5, e delle condizioni cliniche, come neuropatie 6. Inoltre, i neuroni in coltura sono altamente suscettibili di una vasta gamma di tecniche di ricerca tra cui immunocitochimica, cellulare superficie co-immunoprecipitazione, Western blot, trasfezione, RNAi, e l&#39;imaging dal vivo come l&#39;analisi Timelapse del cono di crescita motilità. Così, coltura neuroni primari è un approccio potente per chiarire numerosi aspetti della biologia cellulare dei neuroni. Il modello di coltura cellulare fornisce investigatori con un controllo dettagliato sulle condizioni ambientali e variabili. Ad esempio, il substrato su cui sono placcati neuroni (e crescono su) può essere facilmente manipolato. Qui, forniamo istruzioni dettagliate per la generazione di due substrati distinti, uno con una bassa concentrazione laminina-1 e l&#39;altro con saturazione concentrazioni di laminina-1. Sorprendentemente, concentrazioni diverse di una stessa molecola può avere effetti drammaticisullo stato interno dei neuroni e la loro composizione superficie cellulare. Ad esempio, i livelli intracellulari di cAMP e superficiali livelli di integrine sono significativamente differenti nei neuroni placcato su questi due substrati 7,8. Ulteriori studi hanno dimostrato che altre molecole, comprese fibronectina e proteoglicani condroitin solfato, impatto l&#39;espressione di molecole di superficie cellulare e motilità neuronale 7-11. Inoltre, molecole solubili quali neurotrofine e neurotropins concernono anche la composizione della membrana cellulare e motilità neuronale 12-16 e può essere facilmente e accuratamente manipolata in un modello di coltura cellulare. Qui, descriviamo i metodi per isolare e cultura dissociate neuroni sensoriali provenienti da embrioni di pollo. Questa procedura è stata utilizzata per fare progressi significativi nella neurobiologia, tra cui l&#39;estensione assonale 5,7,8,10,11,16-21 ed è stato modificato da una procedura volta a isolare le cellule gangliari 22. Ci sonodiversi vantaggi di questo approccio. In primo luogo, molte caratteristiche del pulcino ganglio della radice dorsale (DRG) sviluppo sono ben caratterizzati compreso il periodo di tempo per la nascita, l&#39;estensione assonale, e profili di espressione proteica 2,23-28, fornendo così una base istruttivo su cui costruire informativo in esperimenti in vitro. In secondo luogo, dissociate colture neuronali consentono al ricercatore di studiare più direttamente i neuroni rispetto ad approcci alternativi utilizzando espianti intatti DRG (che contengono i neuroni e le cellule non neuronali) e / o colture miste contenenti sia i neuroni dissociati e le cellule non neuronali. In terzo luogo, la procedura qui descritta è semplice, poco costoso e suscettibile di studenti. Pertanto, questa tecnica può essere utilizzata per la ricerca e per scopi didattici. Inoltre, le variazioni minori di questo protocollo dovrebbe permettere di purificazione veloce, ad alto rendimento di neuroni da fonti diverse DRG. Ad esempio, questa procedura può essere modificata per fornire neuronally enrculture iched da altri tessuti come il prosencefalo embrionale o del midollo spinale. Protocolli Immunocitochimica sono stati ottimizzati per queste colture neuronali dissociate e sono descritte in dettaglio qui. È prevista la procedura di doppia immunocitochimica contro la molecola di adesione neurale cellulare (NCAM) e integrine β1. I dati generati da questi metodi di immunocitochimica sono stati utilizzati per esaminare il patterning spaziale e l&#39;intensità di diverse molecole nei neuroni in coltura 8,16.

<table><tbody><tr><td>Piastre sterili per piccole colture (35 mm)</td><td>Corning</td><td>430165</td><td></td></tr><tr><td>Piastre sterili per colture grandi (100 mm)</td><td>Falcon</td><td>353003</td><td></td></tr><tr><td>Piastre sterili per Petri grandi (100 mm)</td><td>VWR</td><td>89000-302</td><td></td></tr><tr><td>Piastra per Petri in vetro (100 mm)</td><td>VWR</td><td>D108962</td><td></td></tr><tr><td>Fine Pinze</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-10</td><td></td></tr><tr><td>Pinze standard</td> Strumenti per le <td>scienze fini</td><td>1100-12</td><td></td></tr><tr><td>Vetrini coprioggetti (22 x 22 mm)</td><td>Fisher</td><td>12 518 105K</td><td>0,13-0,17 mm lo spessore è ottimale per la microscopia</td></tr><tr><td>Porta vetrino coprioggetti</td><td>in porcellana Thomas scientific</td><td>8542E40</td><td></td></tr><tr><td>Siero fetale bovino</td><td>Gibco</td><td>17502-048</td><td>utilizzare 50 ml di aliquote per 500 ml di terreno F12</td></tr><tr><td>di prosciutto HCl</td><td>VWR</td><td>VW3204-1</td><td>utilizzare a 2 M, può essere utilizzato due volte prima di scartare</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S9888</td><td>utilizzare 5 M di soluzione NaCl per laminina-1 soluzione madre</td></tr><tr><td>Laminin-1</td><td>Invitrogen</td><td>23017-015</td><td>Aggiungere 72 &; l di 5 M NaCl sterile e aliquote in 50 &micro; l</td></tr><tr><td>15 ml Tubo conico</td><td>per il trattamento delle cellule</td><td>229411</td><td></td></tr><tr><td>PBS CMF 10x</td><td>Gibco</td><td>14200</td><td>usato a 1x, diluire con acqua filtrata sterile Millipore</td></tr><tr><td>PBS 10x</td><td>Gibco</td><td>14080</td><td>usato a 1x, diluire con acqua filtrata sterile Millipore</td></tr><tr><td>Ham's F12</td><td>Lonza</td><td>12-615F</td><td></td></tr><tr><td>Fetale Siero Bovino Albumina (BSA)</td><td>Gibco</td><td>10438</td><td>utilizzare in F12HS20 al 10%</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma</td><td>H3375</td><td>rendere sterile la soluzione 1 M in acqua distillata, diluire in terreno F12 per ottenere la concentrazione finale di 10 mM</td></tr><tr><td>Penicillina/streptomiocina</td><td>Sigma</td><td>P0781</td><td>utilizzare 5 ml in 500 ml di terreno F12</td></tr><tr><td>NT3</td><td>Millipore</td><td>GF031</td><td>Aggiungere 1 ml di acqua sterile di Millipore, aliquotare in condizioni sterili, conservare a -20 gradi C, utilizzare alla concentrazione finale di 10 ng/ml in mezzi F12H, mantenere in -20 gradi C congelatore senza sbrinamento</td></tr><tr><td>NGF</td><td>RnD systems</td><td>256-GF</td><td>Aggiungere 1 ml di 1x PBS sterile con 0,1% BSA, aliquotare in condizioni sterili, conservare a -20 &deg; C, utilizzato alla concentrazione finale di 10 ng/ml in F12H media</td></tr><tr><td>L-Glutammina</td><td>Sigma</td><td>G7513</td><td>aliquota in condizioni sterili, conservare a -20 &deg; C, utilizzare alla concentrazione finale di 200 mM in terreno F12H</td></tr><tr><td>Tripsina</td><td>Sigma</td><td>T4049</td><td>aliquota in condizioni sterili, conservare a -20 &deg; C</td></tr><tr><td>Albumina sierica bovina (BSA)</td><td>Gibco</td><td>15260</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Altri elementi necessari: strumenti di dissezione generale, comprese pipette di vetro Pasteur, uova di gallina livornese bianca fertile, incubatrice per uova di controllo (umidificata, 37 &deg; C), camera di incubazione cellulare (umidificata, 37 &deg; C), cappa a flusso laminare, visione binoculare stereoscopica scope</td></tr><tr><td colspan="4">Tabella dei reagenti di immunocitochimica</td></tr><tr><td>Saccarosio</td><td>Sigma</td><td>S9378</td><td>utilizzato in soluzione fissativa (4% paraformaldeide, 30% saccarosio, 2x PBS)</td></tr><tr><td>Triton-X 100</td><td>Sigma</td><td>T-8787</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldeide</td><td>Sigma</td><td>P6148</td><td>utilizzato in soluzione fissativa (4% paraformaldehye, 30% saccarosio, 2x PBS)</td></tr><tr><td>Fluoromount G</td><td>Southern Biotech</td><td>0100-01</td><td></td></tr><tr><td>Siero di capra normale</td><td>Life technologies</td><td>PCN500</td><td></td></tr><tr><td>Vetrini per microscopio</td><td>VWR</td><td>16004-430</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Primary Antibody Table</td></tr><tr><td>Antibody against NCAM</td><td>Millipore</td><td>AB5032</td><td>policlonal</td></tr><tr><td>Antibody against attivato e beta; 1 ingegrin</td><td>Millipore</td><td>MAB19294</td><td>monoclonal</td></tr><tr><td colspan="4">Secondary Antibody Table</td></tr><tr><td>Goat anti-mouse IgG Alexa 488</td><td>Life technologies</td><td>A11001</td><td></td></tr><tr><td>Goat anti-rabbit IgG Alexa 548</td><td>Life technologies</td><td>A11036</td><td></td></tr></tbody></table>

isolamento e cultura della dissociato neuroni sensoriali da embrioni di gallina

Isolation and Culture of Dissociated Sensory Neurons From Chick Embryos

I neuroni sono cellule poliedriche che portano le informazioni essenziali per una varietà di funzioni, tra cui la sensazione, movimento del motore, l&#39;apprendimento e la memoria. Studiare i neuroni in vivo può essere difficile a causa della loro complessità, i loro ambienti diversi e dinamici, e limitazioni tecniche. Per queste ragioni, studiando i neuroni in vitro può rivelarsi utile per svelare i complessi misteri di neuroni. Il carattere ben definito di modelli di coltura cellulare fornisce un controllo dettagliato sulle condizioni ambientali e variabili. Qui si descrive come isolare, dissociare, e la cultura neuroni primari di embrioni di pollo. Questa tecnica è rapido, poco costoso, e genera robusta crescita neuroni sensoriali. La procedura produce costantemente le culture che sono altamente arricchito per i neuroni e ha pochissime cellule non neuronali (meno del 5%). Neuroni primari non aderiscono bene al vetro non trattato o di un tessuto culturale di plastica, quindi le procedure dettagliate per la creazione di due distinct, ben definito substrati-laminina contenente per la placcatura neuronale sono descritti. Neuroni in coltura sono altamente suscettibili di molteplici tecniche cellulari e molecolari, tra cui co-immunoprecipitazione, immaginare cellule vive, RNAi, e immunocitochimica. Procedure per doppia immunocitochimica su questi neuroni in coltura sono state ottimizzate e qui descritto.

Il protocollo qui descritto consente agli investigatori di cultura una popolazione arricchita di dissociate neuroni sensoriali embrionali con pochissime cellule (ad esempio, &lt;5%) non neuronali 7,8,10,16. Numerosi DRG possono essere ottenuti dal lombosacrale, toracica e cervicale. A seconda delle esigenze del ricercatore, DRG di queste regioni anatomiche distinte possono essere facilmente isolate. Ad esempio, la figura 1 mostra le immagini del embrione di pollo attraverso varie fas...

Modelli di coltura cellulare forniscono un controllo dettagliato sulle condizioni ambientali e quindi forniscono una potente piattaforma per chiarire numerosi aspetti della biologia delle cellule neuronali. Descriviamo un metodo rapido, economico e affidabile per isolare, dissociare, e la cultura neuroni sensoriali da embrioni di pollo. Sono forniti anche i dettagli di preparazione substrati e immunocitochimica.

Isolamento e Cultura della dissociato neuroni sensoriali da embrioni di gallina

Neurons are multifaceted cells that carry information essential for a variety of functions including sensation, motor movement, learning, and memory. ...

L'obiettivo generale di questa procedura è quello di coltivare una popolazione arricchita di neuroni sensoriali primari dissociati da embrioni di pollo. Ciò si ottiene raccogliendo i gangli della radice dorsale intatti dal giorno embrionale, da sette a 10 embrioni di pollo in un tubo conico, e successivamente rompendoli nella sua sospensione cellulare dissociata. Come seconda fase dissociata, le cellule DRG vengono piastrate su un piatto di coltura per l'incubazione.Successivamente, il piatto di coltura viene risciacquato delicatamente per rimuovere preferenzialmente i neuroni. La fase finale include la placcatura dei neuroni sensoriali dissociati sui substrati ben definiti, come i vetrini coprioggetti lavati e cotti con acido precodificati con alte o basse concentrazioni di laminina. Una immunocitochimica viene utilizzata per dimostrare la presenza di NCA e integrine beta uno attivate nei corpi cellulari, neuriti e coni di crescita dei neuroni sensoriali di pollo embrionale in coltura dissociata.Questo metodo è un potente strumento per chiarire numerosi aspetti della neurobiologia, tra cui i meccanismi di guida degli assoni, i coni di crescita, la dinamica del citoscheletro, nonché la composizione e la regolazione della superficie cellulare. Questa tecnica consente ai ricercatori di ottenere rapidamente le colture altamente arricchite con neuroni sensoriali dissociati, che contengono pochissime cellule gliali. Questo è distinto dalle colture di gangling delle radici dorsali intatte che contengono sia neuroni che cellule non neuronali.Inoltre, variazioni minori di questo protocollo dovrebbero consentire un'elevata resa di colture neuronali provenienti da fonti diverse dai gangli della radice dorsale, compreso il proencefalo embrionale. In una cappa a flusso laminare rompere un uovo di pollo di livorno bianco fertile e metterne il contenuto in una capsula di Petri da 100 millimetri. Successivamente trasferire l'embrione in un'altra piastra di Petri da 100 millimetri.Aggiungere un XPBS riscaldato alla capsula di Petri per mantenere il tessuto bagnato. L'embrione viene decapitato e il corpo viene trasferito in un'altra capsula di Petri pulita. Al tessuto viene aggiunto F 12 HS 10 riscaldato.Posizionare la capsula di Petri con tessuto embrionale al microscopio da dissezione in una cappa a flusso laminare. Successivamente, fai un'incisione verticale della linea mediana dalla coda al collo pizzicando il derma in via di sviluppo per esporre il cuore, il polmone e altri organi. Con la pinza sottile, afferrare delicatamente il collo e l'aorta o altro tessuto immediatamente superiore al cuore e tirare verso la coda in modo da eviscerare l'animale.Successivamente, applicare F 12 HS 10 caldo sul tessuto per pulire ulteriormente la preparazione e mantenere il tessuto umido e ripetere le applicazioni di F 12 HS 10 durante la dissezione, se necessario. Quindi rimuovere eventuali organi cardiovascolari, respiratori o digestivi rimanenti per esporre le costole in via di sviluppo, la colonna vertebrale e i DRG per raccogliere i DRG lungo entrambi i lati della colonna vertebrale lombare, inferiori alle costole, estrarre i DRG dall'embrione. Questo viene fatto pizzicando e recidendo le radici che vanno dal Dr.G verso il midollo spinale e afferrando il nervo in via di sviluppo dal DRG verso la periferia o viceversa.Successivamente, posizionare i DRG intatti in un piatto di coltura da 35 millimetri riempito con F 12 HS 10 caldo. Rimuovere il tessuto in eccesso, come le radici dorsali o ventrali, che possono aderire ai DRG. Per ottenere DRG superiori alla regione lombare, rimuovere la metà ventrale della colonna vertebrale toracica e cervicale.Questo viene fatto praticando un taglio nella colonna vertebrale in via di sviluppo perpendicolare all'asse del midollo spinale nella regione lombare superiore e un altro taglio nella regione cervicale superiore. Quindi praticare dei tagli lungo i lati destro e sinistro della colonna vertebrale. Collettivamente, questi tagli staccheranno la metà ventrale della colonna vertebrale dall'embrione e la colonna verrà quindi rimossa dall'embrione per consentire un facile accesso ai DRG.Rimuovere il midollo spinale toracico e cervicale afferrando il midollo spinale con una pinza sottile. Successivamente, raccogliere i DRG toracici e cervicali intatti come fatto in precedenza e metterli in F 12 HS 10 caldo con altri DRG. Rimuovere il tessuto in eccesso che potrebbe aderire ai DRG.Quindi sciacquare l'interno di una nuova pipetta per pasta di vetro con F 12 HS 10 Per evitare che i DRG si attacchino alla parete della pipetta. Utilizzare la pipetta risciacquata per trasferire tutti i DRG e F 12 HS 10 dalla piccola capsula di Petri a una provetta conica sterile da 15 millilitri, è possibile sezionare ulteriori embrioni per aumentare il numero di DRG in questa procedura. Posizionare la provetta conica con i DRG intatti nella centrifuga e centrifugare delicatamente a 200 volte G per due o tre minuti.Verificare che i DRG siano affondati sul fondo del tubo. Quindi rimuovere delicatamente F 12 HS 10, lasciando indisturbato il pellet DRG. Quindi, aggiungi due millilitri di un X-C-M-F-P-B-S per rimuovere il pellet di DRG.Centrifugare di nuovo e rimuovere il C-M-F-P-B-S trattenendo i DRG. Ripetere questa fase di lavaggio per un totale di tre lavaggi. Dopo che i lavaggi sono stati completati e il C-M-F-P-B-S è stato rimosso, aggiungere due millilitri di tripsina riscaldata al tubo da 15 millilitri e rimuovere delicatamente i DRG.Quindi posizionare la provetta in un bagno d'acqua a 37 gradi Celsius per 10-15 minuti per digerire i DRG in cellule dissociate. Tamponare delicatamente i DRG in soluzione di tripsina e ispezionare visivamente per verificare l'assenza di DRG intatti. Continuare la terapia fino a quando i DRG intatti non sono più visibili ad occhio nudo e, attendere un'incubazione più lunga della tripsina nel bagno d'acqua a 37 gradi Celsius fino a quando i DRG intatti non si dissociano.Centrifugare quindi i DRG dissociati e la tripsina a 200 volte G per tre-cinque minuti in modo da formare un pellet. Girare più a lungo se necessario fino a formare il pellet. Quindi aspirare con cura la tripsina senza rompere il pellet.Aggiungere due millilitri di F 12 hs 10 al pellet e triare delicatamente i DRG. Successivamente trasferire tutto il contenuto dalla provetta conica a un piatto di coltura da 100 millimetri. Sciacquare la provetta con otto millilitri di F 12 HS 10 e trasferirla nel piatto di coltura due millilitri alla volta per un totale di 10 millilitri.Successivamente, metti il piatto di coltura in un'incubatrice umidificata a 37 gradi Celsius per tre ore. Ora aggiungi 400 microlitri di laminina preparata, uno per ogni vetrino coprioggetto lavato e cotto con acido e stendilo con una punta di pipetta per garantire una copertura completa. La tensione superficiale consentirà alla laminina uno di rimanere sul vetrino coprioggetto e di non diffondersi sul fondo della piastra di coltura.Metti un coperchio sul piatto e lascia incubare Lamin one per due o tre ore a temperatura ambiente. Successivamente, sciacquare tre volte i vetrini coprioggetti rivestiti di lamina con PBS sterile in una cappa a flusso laminare. Lasciare il PBS sui vetrini coprioggetti dopo l'ultimo risciacquo.Non perdere la tensione superficiale durante le fasi di risciacquo. Dopo l'incubazione, utilizzare una pipetta sterile da 10 millilitri per sciacquare delicatamente il fondo della capsula contenente le cellule DRG dissociate. Tieni il piatto a un angolo di 45 gradi.Prelevare circa sette millilitri di F 12 HS 10. Quindi espellerlo delicatamente su un terzo del piatto per rimuovere i neuroni. Ripeti l'operazione altre cinque volte.Quindi, ruotare il piatto di circa 120 gradi e ripetere la procedura di risciacquo per altri sei risciacqui. Ripetere quindi nuovamente la procedura per il restante terzo del piatto. Ora utilizzando la stessa pipetta, trasferire F 12 HS 10 contenente neuroni dalla piastra a un tubo conico.Centrifugare per cinque-10 minuti a 200 G in pellet. Le celle successivamente rimuovono F 12 HS 10, lasciando indisturbato il pellet. Quindi risospendere il pellet con due millilitri di F 12 H riscaldato più integratori.Successivamente, determinare la densità cellulare con un emocitometro, diluire le cellule secondo necessità con F 12 H più integratori per ottenere la concentrazione di placcatura desiderata. Quindi rimuovere immediatamente il PBS dal coperchio rivestito di laminina Scivola. Metti 400 microlitri di cellule su di essi.Trasferire con cura la piastra in un incubatore per colture cellulari a 37 gradi Celsius e lasciarla incubare per due o tre ore in condizioni sterili. Inondare delicatamente i piatti da 35 millimetri contenenti neuroni con 1,6 millilitri di F 12 H più integratori. Successivamente rimettere le cellule nell'incubatrice e incubarle per una notte.Questa figura mostra neuroni sensoriali primari dissociati in coltura immunomarcati per NCA e integrine beta uno attivate. I neuroni embrionali del pollo crescono robustamente su alte concentrazioni di corpi cellulari neuronali di laminina. I neuriti e i coni di crescita sono immunopositivi per l'NCA e l'integrana beta uno attivata.L'immagine unita delle due colorazioni rivela che la maggior parte delle cellule sono positive sia per l'integrina N cam che per l'integrina beta uno attivata. Come previsto per i neuroni sensoriali embrionali di pollo, meno del 5% delle cellule raccolte con questa tecnica sono non neuronali. In questa immagine, c'è una cellula con una morfologia simile a quella gliale che è NCA M negativa e beta una integrina positiva.Coerente con una cellula non neuronale. Un ingrandimento più elevato di un neurone sensoriale in coltura mostra chiaramente i neuriti che si estendono dal corpo cellulare, e questo riquadro mostra un ingrandimento maggiore del cono di crescita sulla punta di un neurite. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordare di dissociare attentamente e completamente i gangli della radice dorsale intatti e di placcare i neuroni e la densità appropriata sui substrati definiti, come i foglietti coperti lavati e cotti con acido codificati con concentrazioni note di laminato uno Dopo la procedura di coltura.I metodi di imaging dal vivo, come la microscopia time-lapse, possono essere eseguiti per valutare il coone di crescita, il phylo di motilità, la dinamica POAL e altri comportamenti dei coni di crescita su substrati definiti e in risposta a molecole applicate ai terreni di coltura. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una solida comprensione di come produrre una coltura a crescita robusta che sia altamente arricchita per i neuroni dissociati primari dai gangli della radice dorsale embrionale di pollo.

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