Name: Isolamento e colture primarie di cellule di topo aortica endoteliali (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 20 s
Description: Impara a isolare e coltivare cellule endoteliali primarie dall'aorta di topo con un metodo semplice e senza attrezzature speciali. Questa tecnica garantisce alta vitalità cellulare e rendimento superiore per studiare la fisiopatologia endoteliale.

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Questo studio è supportato dall'American Heart Association Scientist Development Grant 13SDG16930098 e dal National Science Foundation of China Youth Award 81300240 (PI: Wang). Ringraziamo Roberto Mendez della Wayne State University per l'assistenza nella preparazione del manoscritto.

1. Isolamento di Aorta di topi Tutte le procedure qui descritte sono state approvate dal Comitato di Cura e uso istituzionale degli animali della Wayne State University. <ol><li> Mettere il mouse nella camera di induzione della macchina per anestesia. Impostare il flusso isoflurano al 4% in congiunzione con il 25% di aria fresca e il 75% O 2. Anestetizzare il mouse per inalazione di isoflurano (4% per l&#39;induzione, ± 1,0% per la manutenzione) in combinazione con il 25% di aria fresca e il 75% O 2 con camera di induzione seguita da un&#39;ogiva dedicata. NOTA: anestesia con isoflurano può essere consegnato nel 75% di ossigeno / 25% di aria o ossigeno al 100%. </li><li> Controllare il mouse ogni 5 minuti fino a quando il livello appropriato di anestesia viene raggiunta (mancanza di recesso a pizzico tep). </li><li> Prendere il mouse fuori dalla camera di induzione e continuare isoflurano inalazione se l&#39;ogiva dedicato che è collegato alla macchina per anestesia. Accendere ilisoflurano flusso al 1% per mantenere l&#39;anestesia. </li><li> Mentre è sotto anestesia, mettere il mouse su un tampone chirurgico, posizionata sul dorso. Utilizzare nastro di laboratorio per fissare gli arti. </li><li> Utilizzare una lampada riscaldante per mantenere caldo il mouse. Mantenere la lampada in una distanza appropriata dal mouse in modo che il mouse non surriscaldamento. </li><li> Spruzzare il petto con il 70% di etanolo. </li><li> Usare le forbici dissezione per aprire l&#39;addome dalla linea mediana, ed esporre l&#39;aorta addominale. Aprire la cavità toracica ed esporre il cuore ei polmoni. </li><li> Tagliare l&#39;aorta addominale a metà con le forbici dissezione per rilasciare il sangue. </li><li> Riempire una siringa da 1 ml (con il 25 ago G) con 1 ml di PBS contenente 1.000 U / mL di eparina. Iniettare PBS contenente 1,000 U / mL di eparina al ventricolo sinistro e l&#39;aorta profumato. Premere il cuore e il polmone con una pinza a grandi arterie al lato destro dei topi per esporre l&#39;aorta toracica. </li><li> Rimuovere rapidamente l&#39;aorta toracica utilizzando micro-diforcipe ssection e metterlo in ghiaccio freddo 1x PBS (sterile), poi trasportare il contenitore in una cappa di flusso d&#39;aria laminare. </li><li> Inserire una siringa da 1 ml munito 25 ago G in un&#39;estremità dell&#39;aorta, e lavare delicatamente l&#39;aorta con PBS freddo per rimuovere il sangue. </li><li> Utilizzare pinze micro-dissezione per rimuovere la maggior quantità di tessuto adiposo allegato e piccoli vasi laterali possibile. </li><li> Trasferire immediatamente l&#39;aorta a endoteliali terreno di coltura. </li><li> Tagliare l&#39;aorta in anelli di 1 mm con una lama di bisturi sterile. Harvest circa 8 - 10 anelli per aorta. </li><li> Aprire ogni anello aortico utilizzando un paio di forbici micro-dissezione. </li></ol> 2. Seed i segmenti aortici su matrice <ol><li> Quando non in uso, mantenere la matrice fattore-ridotto la crescita in -20 ° C per evitare la solidificazione. Mettere la matrice fattore-ridotto la crescita in 4 ° C almeno per una notte per consentire un disgelo completo. </li><li> Preraffreddare a 6 pozzetti punte piastra e pipette a -20 ° C per almeno10 minuti. Mettere il 6 pozzetti su ghiaccio e cappotto un pozzetto della piastra con 1 mL di matrice senza introdurre bolle d&#39;aria. Porre la piastra in un incubatore a 37 ° per 20 minuti per consentire la matrice solidificazione. </li><li> Impiantare i pezzi aortica sulla matrice solidificata utilizzando sterili pinze micro-dissezione. Mettere i pezzi lume-side-down sulla matrice senza toccare l&#39;endotelio. Posizionare 3 - 4 segmenti aortici vicini tra loro sulla matrice. </li><li> Aggiungere appena abbastanza terreno di crescita delle cellule endoteliali per mantenere i segmenti bagnato (~ 200 mL). </li><li> Incubare la piastra a 37 ° C sotto 5% di CO 2 per 4 a 6 ore. Alla fine della giornata, aggiungere sufficiente medio per coprire i segmenti aortici. </li><li> Osservare il segmento aortico germinazione periodicamente al microscopio a contrasto di fase. Controllare il livello medio e la crescita cellulare ogni giorno. Aggiungere mezzo, se necessario, per mantenere i segmenti aortici coperti. </li><li> Al 4 ° giorno, rimuovere delicatamente il supporto e rimuovere il segmento aortico FROM la matrice utilizzando un ago sterile senza interrompere le crescenti cellule endoteliali. </li><li> Aggiungere 2 ml di nuovo terreno di coltura delle cellule endoteliali e permettono alle cellule endoteliali continuano a proliferare sulla matrice per 2 - 3 giorni. </li></ol> 3. Passaging iniziale delle cellule di topo aortica endoteliali <ol><li> Coat un pallone nuovo T12.5 con gelatina (0,1%), incubare a 37 ° C per 30 min. </li><li> Lavare le piastre di matrice accuratamente con sterile 37 ° C PBS. </li><li> Aggiungere 2 ml di proteinasi neutro (50 U / mL) per le piastre di matrice e incubare a temperatura sulla piattaforma oscillante con agitazione occasionale stanza. Controllare le cellule al microscopio a contrasto di fase per assicurarsi che la maggior parte delle cellule sono staccato. </li><li> Aggiungere 2 ml di D-Val di inattivare la proteinasi neutro. </li><li> Raccogliere accuratamente il surnatante in una provetta 15 centrifuga. Lavare la piastra con 2 mL D-Val e raccogliere il surnatante. </li><li> Centrifugare la sospensione cellulare a 900 xg per 5 min a rooTemperatura di m. </li><li> Risospendere il pellet cellulare in 4 ml di terreno di coltura delle cellule endoteliali e la piastra nel pallone T12.5 rivestito con gelatina. Incubare le cellule a 37 ° C, 5% CO 2 per 2 h. </li><li> Sostituire il medium. Incubare le cellule a 37 ° C, 5% CO 2 fino a quando sono 85% - 90% confluenti. </li></ol> 4. Passaging delle cellule di topo aortica endoteliali <ol><li> Coat due nuovi flaconi T12.5 con gelatina (0,1%), incubare a 37 ° C per 30 min. Preriscaldamento Tripsina-EDTA (0,25% tripsina, 0.02 EDTA in PBS) e sterile PBS a 37 ° C per circa 15 min. </li><li> Lavare le cellule con cura con sterile 37 ° C PBS. </li><li> Aggiungere 0,5 ml di tripsina-EDTA (0,25% tripsina, 0.02 EDTA in PBS) e incubare a 37 ° C per 1 min ~ o finché la maggioranza delle cellule girarsi. </li><li> Aggiungere 2 ml di terreno di coltura delle cellule endoteliali per fermare la digestione. Pipetta la sospensione cellulare su e giù nei pallone più volte. Se necessario, utilizzare una cellaraschietto per raccogliere le cellule. </li><li> Raccogliere la sospensione cellulare in una provetta da centrifuga 15. Centrifugare la sospensione cellulare a 900 xg per 5 min a temperatura ambiente. </li><li> Risospendere il pellet cellulare in 4 ml di terreno di coltura delle cellule endoteliali e la piastra in 2 flaconi T12.5 rivestiti con gelatina. Incubare le cellule a 37 ° C, 5% CO 2 per 2 h. </li><li> Sostituire il medium. Incubare le cellule a 37 ° C, 5% CO 2 fino a quando sono 85% - 90% confluenti. </li><li> Utilizzare il mouse cellule endoteliali aortiche dopo 2 - 3 passaggi. </li></ol> 5. Caratterizzazione delle cellule di topo aortica endoteliali <ol><li> Re-plate cellule. <ol><li> Coat una piastra da 6 pozzetti con gelatina (0,1%), incubare a 37 ° C per 30 min. Sciacquare la piastra con PBS. </li><li> Pre-riscaldare la tripsina-EDTA e sterile PBS a 37 ° C per circa 15 min. </li><li> Lavare le cellule con PBS sterile per 3 volte. Aggiungere 0,5 ml di tripsina / EDTA alle cellule, incubare per ~ 1 min a 37 ° C or finché la maggior parte delle cellule girarsi. </li><li> Aggiungere 2 ml di terreno di coltura delle cellule endoteliali per fermare la digestione. Pipetta la sospensione cellulare su e giù nei pallone più volte. Se necessario, utilizzare un raschietto cellulare per raccogliere le cellule. </li><li> Raccogliere la sospensione cellulare in una provetta da centrifuga 15. Centrifugare la sospensione cellulare a 900 xg per 5 min a temperatura ambiente. </li><li> Eliminare il surnatante, risospendere le cellule in terreno di coltura delle cellule endoteliali. Seme le cellule in 6 pozzetti rivestiti con gelatina alla densità di 3 x 10 5 / pozzetto. </li><li> Incubare le cellule per una notte a 37 ° C, 5% CO 2 per permettere alle cellule di attaccarsi alla superficie cultura. </li></ol></li><li> Dil-ac-LDL uptaken e Ulex -lectin vincolante. <ol><li> Conservare il 1,1&#39;-diottadecil-3,3,3 &#39;, 3&#39;-tetramethylindo carbocyanine perclorato marcato LDL acetilato (Dil-ac-LDL) a -20 ° C. Prima della colorazione, scongelare Dil-ac-LDL sul ghiaccio. Il Solu magazzino Dil-ac-LDLzione è 1 mg / mL. Conservare il europaeus agglutinin coniugati con fluoresceina Ulex (Ulex -Lectin, 1 mg / ml) a 4 ° C. La soluzione madre Ulex -Lectin è di 1 mg / mL. Conservare Hoechst 33342 a 4 ° C. La soluzione madre 33342 Hoechst è di 100 mg / ml. </li><li> Aggiungere 10 ml di Dil-ac-LDL soluzione stock di 1 ml di terreno di coltura per effettuare una concentrazione finale di 10 mg / mL. </li><li> Prima della colorazione, rimuovere il vecchio medie e lavare le cellule in ciascun pozzetto con nuovo mezzo. </li><li> Rimuovere il nuovo mezzo e aggiungere il supporto colorazione Dil-ac-LDL. </li><li> Incubare le cellule a 37 ° C, 5% CO 2 per 1 h. </li><li> Lavare le cellule con sterili 1x PBS 3 volte. </li><li> Aggiungere 1 ml di formalina al 10% per riparare le cellule. Mettere la piastra in temperatura ambiente per circa 30 min. </li><li> Lavare le cellule con sterili 1x PBS 3 volte. Evitare la luce. </li><li> Aggiungere 1 ml sterile 1x PBS contenente 10 ml di Ulex -Lectin. </li><li> Incubare le cellule a camera tempere al buio per 1 h. </li><li> Rimuovere il Ulex-lectina lavando le cellule con sterili 1x PBS 3 volte. </li><li> Aggiungere Hoechst 33342 alla concentrazione finale di 1 mg / ml, incubare 10 minuti al buio. </li><li> Mostra la fluorescenza di Dil-ac-LDL (rosso, eccitazione lunghezza d&#39;onda di 576 nm), Ulex -Lectin (verde, eccitazione lunghezza d&#39;onda di 519 nm) e Hoechst (blu, eccitazione lunghezza d&#39;onda di 361 nm) con un microscopio a fluorescenza invertito. </li></ol></li><li> colorazione fluorescente per CD31, VEGFR2, eNOS, VE-caderina e Calponin. <ol><li> Conservare FITC-coniugato anticorpo anti-topo CD31, anticorpi eNOS, VE-caderina anticorpi, FITC-coniugato anti-IgG di coniglio a 4 ° C al buio. Conservare l&#39;anticorpo VEGFR2 a -20 ° C. </li><li> Lavare le cellule con sterili 1x PBS 3 volte. </li><li> Aggiungere 1 ml di formalina al 10% per riparare le cellule. Mettere la piastra in temperatura ambiente per circa 30 min. </li><li> Lavare le cellule con sterili 1x PBS 3 volte. </li><li> Per macchiare CD31, aggiungere 1 ml di 1x steriliPBS contenente 10 ml di anticorpi CD31-FITC. Per macchiare o VEGFR2, eNOS, VE-caderina o calponin, aggiungere 1 ml di sterile 1x PBS contenente 4 ml di VEGFR2, eNOS, VE-caderina o calponin anticorpo primario, rispettivamente. </li><li> Incubare le cellule in ghiaccio per 1 ora al buio. </li><li> Rimuovere gli anticorpi lavando le cellule con PBS sterile 3 volte. </li><li> Per la colorazione di VEGFR2, eNOS, VE-caderina o calponin, aggiungere 1 ml di sterile 1x PBS contenente 10 ml di FITC-coniugato IgG anti-coniglio. Incubare le cellule in ghiaccio per 1 ora al buio. Rimuovere la IgG lavando le cellule con PBS sterile 3 volte. </li><li> Aggiungere Hoechst 33342 alla concentrazione finale di 1 mg / ml, incubare 10 minuti al buio. </li><li> Vista la fluorescenza di CD31, VEGFR2, eNOS, VE-caderina, calponin (verde, di eccitazione lunghezza d&#39;onda di 518-535 nm) e Hoechst (blu, l&#39;eccitazione lunghezza d&#39;onda di 361 nm) con un microscopio a fluorescenza invertito. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Simionescu, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Implications+of+early+structural-functional+changes+in+the+endothelium+for+vascular+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+thrombosis%2C+and+vascular+biology%22%5BJournal%5D)">Implications of early structural-functional changes in the endothelium for vascular disease.</a> Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 27, 266-274 (2007).</li>
<li>Cid, M. C., Segarra, M., Garcia-Martinez, A., Hernandez-Rodriguez, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+cells%2C+antineutrophil+cytoplasmic+antibodies%2C+and+cytokines+in+the+pathogenesis+of+systemic+vasculitis%5BTitle%5D)+AND+%22Current+rheumatology+reports%22%5BJournal%5D)">Endothelial cells, antineutrophil cytoplasmic antibodies, and cytokines in the pathogenesis of systemic vasculitis.</a> Current rheumatology reports. 6, 184-194 (2004).</li>
<li>Wang, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C-Reactive+protein-induced+endothelial+microparticle+generation+in+HUVECs+is+related+to+BH4-dependent+NO+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+vascular+research%22%5BJournal%5D)">C-Reactive protein-induced endothelial microparticle generation in HUVECs is related to BH4-dependent NO formation.</a> Journal of vascular research. 44, 241-248 (2007).</li>
<li>Wang, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+circulating+CD31%2B%2FCD42-+microparticles+are+associated+with+impaired+systemic+artery+elasticity+in+healthy+subjects%5BTitle%5D)+AND+%22American+journal+of+hypertension%22%5BJournal%5D)">Increased circulating CD31+/CD42- microparticles are associated with impaired systemic artery elasticity in healthy subjects.</a> American journal of hypertension. 20, 957-964 (2007).</li>
<li>Mackay, L. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterisation+of+human+pulmonary+microvascular+endothelial+cells+from+patients+with+severe+emphysema%5BTitle%5D)+AND+%22Respiratory+research%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterisation of human pulmonary microvascular endothelial cells from patients with severe emphysema.</a> Respiratory research. 14, 23(2013).</li>
<li>Marelli-Berg, F. M., Peek, E., Lidington, E. A., Stauss, H. J., Lechler, R. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+endothelial+cells+from+murine+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+immunological+methods%22%5BJournal%5D)">Isolation of endothelial cells from murine tissue.</a> Journal of immunological methods. 244, 205-215 (2000).</li>
<li>Bowden, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+alpha4+integrin+and+VCAM-1+in+CD18-independent+neutrophil+migration+across+mouse+cardiac+endothelium%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+research%22%5BJournal%5D)">Role of alpha4 integrin and VCAM-1 in CD18-independent neutrophil migration across mouse cardiac endothelium.</a> Circulation research. 90, 562-569 (2002).</li>
<li>Lu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Palmitate+induces+apoptosis+in+mouse+aortic+endothelial+cells+and+endothelial+dysfunction+in+mice+fed+high-calorie+and+high-cholesterol+diets%5BTitle%5D)+AND+%22Life+sciences%22%5BJournal%5D)">Palmitate induces apoptosis in mouse aortic endothelial cells and endothelial dysfunction in mice fed high-calorie and high-cholesterol diets.</a> Life sciences. 92, 1165-1173 (2013).</li>
<li>Atkins, G. B., Jain, M. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+differentiation%3A+molecular+mechanisms+of+specification+and+heterogeneity%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+thrombosis%2C+and+vascular+biology%22%5BJournal%5D)">Endothelial differentiation: molecular mechanisms of specification and heterogeneity.</a> Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 31, 1476-1484 (2011).</li>
<li>Aitsebaomo, J., Portbury, A. L., Schisler, J. C., Patterson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brothers+and+sisters%3A+molecular+insights+into+arterial-venous+heterogeneity%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+research%22%5BJournal%5D)">Brothers and sisters: molecular insights into arterial-venous heterogeneity.</a> Circulation research. 108, 929-939 (2008).</li>
<li>Shimamoto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drugs+and+foods+on+contraction+of+endothelial+cells+as+a+key+mechanism+in+atherogenesis+and+treatment+of+atherosclerosis+with+endothelial-cell+relaxants+%28cyclic+AMP+phosphodiesterase+inhibitors%29%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+experimental+medicine+and+biology%22%5BJournal%5D)">Drugs and foods on contraction of endothelial cells as a key mechanism in atherogenesis and treatment of atherosclerosis with endothelial-cell relaxants (cyclic AMP phosphodiesterase inhibitors).</a> Advances in experimental medicine and biology. 60, 77-105 (1975).</li>
<li>Chiu, J. J., Chien, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+disturbed+flow+on+vascular+endothelium%3A+pathophysiological+basis+and+clinical+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+reviews%22%5BJournal%5D)">Effects of disturbed flow on vascular endothelium: pathophysiological basis and clinical perspectives.</a> Physiological reviews. 91, 327-387 (2011).</li>
<li>Gimbrone, M. A. Jr, Topper, J. N., Nagel, T., Anderson, K. R., Garcia-Cardena, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+dysfunction%2C+hemodynamic+forces%2C+and+atherogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+the+New+York+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Endothelial dysfunction, hemodynamic forces, and atherogenesis.</a> Annals of the New York Academy of Sciences. 902, 239-240 (2000).</li>
<li>Rostgaard, J., Qvortrup, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+microscopic+demonstrations+of+filamentous+molecular+sieve+plugs+in+capillary+fenestrae%5BTitle%5D)+AND+%22Microvascular+research%22%5BJournal%5D)">Electron microscopic demonstrations of filamentous molecular sieve plugs in capillary fenestrae.</a> Microvascular research. 53, 1-13 (1997).</li>
<li>Brutsaert, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+endothelial-myocardial+signaling%3A+its+role+in+cardiac+growth%2C+contractile+performance%2C+and+rhythmicity%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+reviews%22%5BJournal%5D)">Cardiac endothelial-myocardial signaling: its role in cardiac growth, contractile performance, and rhythmicity.</a> Physiological reviews. 83, 59-115 (2003).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Questo studio dimostra un metodo semplice per isolare e cultura endoteliali cellule da una aorta mouse senza particolari attrezzature. La colorazione immunofluorescenza indicato che la maggior parte delle cellule erano cellule endoteliali dopo il secondo passaggio. Si suggerisce che le cellule in seconda al terzo passaggio sono adatti in vitro e in vivo per studiare biologia endoteliale. Le note principali del protocollo Presente <p class="jove_content"...

L&#39;endotelio vascolare non è solo uno strato barriera che separa il sangue e tessuti, è considerato un vasto ghiandola endocrina che si estende per l&#39;intero albero vascolare con una superficie di 400 metri quadrati 1. Il benessere dell&#39;endotelio è essenziale per l&#39;omeostasi vascolare. L&#39;endotelio disfunzionale partecipa a vari disturbi cardiovascolari, tra cui l&#39;aterosclerosi, vasculite e le lesioni da ischemia / riperfusione, ecc 2-4. Fino ad oggi, i meccanismi cellulari e molecolari specifici coinvolti in queste condizioni patologiche non sono ben compresi a causa della natura diffusa anatomica di endotelio. Il mouse è un modello importante per la ricerca perché le tecniche di manipolazione genetica sono più sviluppati nei topi che in tutte le altre specie di mammiferi. Tuttavia, l&#39;isolamento di murine cellule endoteliali aortiche primarie è considerato particolarmente difficile perché le piccole dimensioni dell&#39;aorta rende enzymatic digestione dell&#39;endotelio impraticabile. Alcuni hanno riferito le procedure per isolare e purificare EC richiede 5-7. L&#39;obiettivo di questo protocollo è quello di utilizzare un metodo semplice per isolare ed espandere cellule endoteliali dall&#39;aorta mouse senza utilizzare particolari attrezzature. In questo protocollo, l&#39;aorta fresco isolato viene tagliato in piccoli segmenti e seminate su una matrice con l&#39;endotelio rivolto verso il basso per consentire la germinazione endoteliale. Dopo segmenti vengono rimossi, le cellule endoteliali sono espanse in media endotelio-favorito e sono pronti per esperimenti dopo due o tre passaggi. I vantaggi del metodo descritto sono che: 1) considerevolmente elevato numero di cellule endoteliali sono raccolte da un singolo aorta; 2) la vitalità delle cellule è ben conservato; e 3) è necessaria alcuna attrezzatura speciale o tecnica. Esso fornisce un mezzo efficace per identificare i meccanismi cellulari e molecolari specifici di fisiopatologia delle cellule endoteliali. Per coloro che sono interessati a studiare primary cellule endoteliali coltivate da entrambi i topi knock-out del gene, gene knock-nei topi, o un modello di malattia murino, questo protocollo è molto utile e facile da praticare.

<table><tbody><tr><td>Topi di 4 o 6 settimane</td><td>Jackson Laboratory</td><td>#000664</td><td></td></tr><tr><td>Sterile 1x soluzione salina tamponata con fosfato (PBS)</td><td>Gibco</td><td>#10010-023</td><td></td></tr><tr><td>Sterile 1x PBS contenente 1.000 U/mL di eparina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H3149</td><td></td></tr><tr><td>Terreno di crescita delle cellule endoteliali (Dulbeccos' Aquila modificata' s Medium [DMEM] con 25&nbsp; mM HEPES [Gibco, #12320-032], integrato con 100&nbsp; &mu; g/mL di integratore per la crescita delle cellule endoteliali da tessuto neurale bovino [ECGS, Sigma, #2759], 10% di siero fetale bovino [FBS, Gibco, #10082-147], 1.000&nbsp; U/mL di eparina [Sigma Aldrich, H3149], 10.000&nbsp; U/mL penicillina e 10&nbsp; mg/mL di streptomicina [Gibco, #15140-122])Matrice</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>ridotta del fattore</td><td>di crescita BD Biosciences</td><td>356231</td><td></td></tr><tr><td>Proteinasi neutra (Dispase, 1&nbsp; U/mL, Fisher Scientific, #CB-40235) e D-Val (D-Valina, 0,034&nbsp; g/L, Sigma, #1255), in Dulbeccos' Aquila modificata' s Medio, basso glucosio (Gibco, #12320-032)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1,1'-diottadil-3,3,3',3'- tetrametilindo-carbocianina LDL acetilato marcato con perclorato (Dil-ac-LDL)</td><td>Life Technologies</td><td>L3484</td><td></td></tr><tr><td>Ulex europaeus agglutinina (Ulex-Lectina)</td><td>Sigma</td><td>L9006</td><td></td></tr><tr><td>Anti-topo CD31-FITC anticorpo coniugato</td><td>BD Biosciences</td><td>553372</td><td></td></tr><tr><td>Anti-recettore del fattore di crescita dell'endotelio vascolare di topo 2 Anticorpo</td><td>Segnalazione cellulare</td><td>9698</td><td></td></tr><tr><td>Anti-ossido nitrico endoteliale di topo sintasi</td><td>Abcam</td><td>ab5589</td><td></td></tr><tr><td>Anti-endotelio vascolare di topo-caderina</td><td>Abcam</td><td>33168</td><td></td></tr><tr><td>Anti-topo calponina</td><td>Abcam</td><td>700</td><td></td></tr><tr><td>Siringa da 1 mL coniugata anti-coniglio IgG</td><td>Sigma</td><td>F6005</td><td></td></tr><tr><td>dotata di ago da 25 G</td><td>Fisher Scientific</td><td>50-900-04222</td><td></td></tr><tr><td>Piastre Peri da 100 mm</td><td>Fisher Scientific</td><td>07-202-516</td><td></td></tr><tr><td>Piastre per colture cellulari a sei pozzetti</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-772-1B</td><td></td></tr><tr><td>Pallone per coltura T12.5</td><td>Fisher Scientific</td><td>50-202-076</td><td></td></tr><tr><td>Forbici, pinze, forbici e pinze per microdissezione, lama per bisturi</td><td>Fine Science Tools, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Macchina per anestesia con isoflurano</td><td>Webster Veterianary Supply</td><td>07-806-3204</td><td></td></tr><tr><td>lampada</td><td></td><td></td><td></td>riscaldante</tr><tr><td>Macchina</td><td></td><td></td><td></td>centrifuga</tr><tr><td>Microscopio a contrasto di fase invertito Microscopio</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td></td><td></td><td></td><td>a fluorescenza invertito</td></tr></tbody></table>

isolamento e colture primarie di cellule di topo aortica endoteliali

Isolation and Primary Culture of Mouse Aortic Endothelial Cells

L'endotelio vascolare è essenziale per la normale omeostasi vascolare. La sua disfunzione partecipa a vari disturbi cardiovascolari. Il topo è un modello importante per la ricerca sulle malattie cardiovascolari. Questo studio dimostra un metodo semplice per isolare e coltivare cellule endoteliali dall'aorta di topo senza alcuna attrezzatura speciale. Per isolare le cellule endoteliali, l'aorta toracica viene rapidamente rimossa dal corpo del topo e il tessuto adiposo e il tessuto connettivo attaccati vengono rimossi dall'aorta. L'aorta viene tagliata in anelli di 1 mm. Ogni anello aortico viene aperto e seminato su una matrice ridotta del fattore di crescita con l'endotelio rivolto verso il basso. I segmenti vengono coltivati in terreno di crescita delle cellule endoteliali per circa 4 giorni. La germinazione endoteliale inizia già dal giorno 2. I segmenti vengono quindi rimossi e le cellule vengono coltivate continuamente fino a raggiungere la confluenza. Le cellule endoteliali vengono raccolte utilizzando proteinasi neutra e coltivate in terreno di crescita delle cellule endoteliali per altri due passaggi prima di essere utilizzate per esperimenti. La colorazione in immunofluorescenza ha indicato che dopo il secondo passaggio la maggior parte delle cellule era doppiamente positiva per l'assorbimento di Dil-ac-LDL, il legame con lectina e la colorazione CD31, le caratteristiche tipiche delle cellule endoteliali. Si suggerisce che le cellule dal secondo al terzo passaggio siano adatte per esperimenti in vitro e in vivo per studiare la biologia endoteliale. Il nostro protocollo fornisce un mezzo efficace per identificare specifici meccanismi cellulari e molecolari nella fisiopatologia delle cellule endoteliali.

Endoteliale Cavolo cellulare Spontanea delle cellule endoteliali germogliamento ha iniziato da un segmento del mouse dell&#39;aorta. Il segmento del mouse aorta è stato permesso di crescere su una matrice fattore di crescita ridotto poi nel terreno di crescita endoteliale per 4 giorni. La germinazione delle cellule endoteliali di solito appare in 2 - 4 giorni. Microfotografie sono state scattate il giorno 4 (Figura 1). Come mostrato nelle immagini, numerose ...

Le cellule endoteliali vascolari svolgono un ruolo significativo in molti importanti disturbi cardiovascolari. Questo articolo descrive un metodo semplice per isolare ed espandere le cellule endoteliali dall'aorta del topo senza l'uso di attrezzature speciali. Il nostro protocollo fornisce un mezzo efficace per identificare i meccanismi nella fisiopatologia delle cellule endoteliali.

Isolamento e colture primarie di cellule di topo aortica endoteliali

The vascular endothelium is essential to normal vascular homeostasis. Its dysfunction participates in various cardiovascular disorders. The mouse is an ...

L'obiettivo generale di questo procedimento è utilizzare un metodo semplice per isolare ed espandere cellule endoteliali dall'aorta del topo senza impiegare alcuna attrezzatura speciale. Altri metodi utilizzati per isolare cellule endoteliali vengono applicati principalmente al cuore o ai polmoni, non all'aorta. Questa tecnica per l'aorta fornisce un rendimento notevolmente più elevato, un'alta viabilità cellulare e non richiede attrezzature o tecniche particolari.Sebbene questi si applichino allo studio di cellule endoteliali primarie ottenute da topi knock-out o da topi murini, provenienti dalla maggior parte dei modelli di malattia. Questo protocollo è molto utile e facile da eseguire. Iniziare questo protocollo all'inizio della giornata.Dopo aver anestetizzato un topo e aver verificato l'assenza di riflessi, posizionare il topo in posizione supina su un tappetino chirurgico e posizionare una lampada riscaldante sopra di esso per mantenere la temperatura corporea. Quindi disinfettare l'addome spruzzandolo con etanolo al 70%. Successivamente, con forbici da dissezione, aprire l'addome lungo la linea mediana per esporre l'aorta addominale.Quindi, aprire la cavità toracica per espo

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Biologia

Qui, descriviamo un protocollo per l'isolamento e la coltura di cellule murine endoteliali polmonari. Questo metodo comprende meccanico e dissociazione enzimatica tessuto polmonare e una 2-step processo di purificazione con anti-PECAM-1 e anti-ICAM-2 anticorpi coniugati a sfere magnetiche, che produce una popolazione pura di cellule endoteliali di origine per lo più microvascolare.

Isolamento e la coltura di cellule endoteliali polmonari da topi neonati

Le cellule endoteliali microvascolari cerebrali (BMEC) sono interconnesse da specifiche proteine giunzionali che formano una barriera altamente regolata che separa il sangue e il sistema nervoso centrale (SNC), la cosiddetta barriera emato-encefalica (BBB). L'isolamento delle cellule endoteliali microvascolari primarie del cervello murino, come discusso in questo protocollo, consente studi dettagliati in vitro della BEE.

Isolamento di cellule primarie murini cervello microvascolare endoteliali

Segnaliamo un metodo affidabile per isolare e coltivare cellule endoteliali primarie specifiche per il tumore da modelli murini geneticamente modificati.

Isolamento e cultura espansione delle cellule endoteliali tumore-specifici

Lo scopo di questo protocollo è quello di dimostrare l'isolamento e coltura tecniche di cellule muscolari murine primarie lisce vascolari (VSMC) dalla circolazione coronarica. Una volta VSMC sono stati isolati, essi possono essere utilizzati per vari tecniche di coltura standard.

L&#39;isolamento di Murine coronarica vascolari cellule muscolari lisce

Questo protocollo è preparato per condividere il nostro metodo di isolamento delle cellule endoteliali coronariche di topo a scopo di imaging o per condurre esperimenti di biologia molecolare.

Isolamento di cellule di topo coronarica endoteliali

Cellule endoteliali microvascolari dei muscoli scheletrici (MMEC) forma la parete interna dei vasi capillari del muscolo e regolano entrambi, scambio di fluidi/molecole e migrazione delle cellule (immuni) tra sangue e tessuto muscolare. Isolamento di MMEC murino primario, come descritto qui, consente indagini complete in vitro del "unità myovascular".

Isolamento di cellule endoteliali microvascolari murino primario del muscolo scheletrico

Viene descritto un metodo enzimatico efficace per l'isolamento delle cellule endoteliali sui porcili primari (pAEC) dai suini in miniatura. I pAEC primari isolati possono essere utilizzati per studiare la risposta immunitaria e di coagulazione nello xenotrapianto.

Isolamento e cultura delle cellule endoteliali aortiche primarie dai suini in miniatura

Qui delineiamo e dimostriamo un protocollo per l'isolamento primario delle cellule endoteliali sinusoidali epatiche del topo (LSEC). Il protocollo si basa sulla perfusione di collagenasi epatica, sulla purificazione delle cellule non parenchimali mediante centrifugazione a bassa velocità e sulla selezione magnetica delle perline CD146. Abbiamo anche fenotipo e caratterizzato questi LSECs isolati utilizzando la citometria a flusso e la microscopia elettronica a scansione.

Isolamento e caratterizzazione di cellule endoteliali sinusoidali primarie del fegato di topo

Presentiamo un metodo per isolare cellule e nuclei endoteliali dal lume delle arterie carotidi di topo esposte a condizioni di flusso stabili o disturbate per eseguire esperimenti omici a singola cellula.

Isolamento delle cellule endoteliali dal lume delle arterie carotidi di topo per esperimenti multi-omici a singola cellula

In questo articolo, le cellule endoteliali polmonari primarie sono state isolate e coltivate da topi neonatali.

Isolamento delle cellule endoteliali polmonari primarie di topo

Viene presentato un protocollo per l'isolamento e la coltura primaria delle cellule endoteliali microvascolari cerebrali (BMEC) dal tessuto cerebrale murino neonatale per generare un modello in vitro robusto per studiare la funzione della barriera emato-encefalica in condizioni fisiologiche e patologiche.

Isolamento e coltura delle cellule endoteliali microvascolari del cervello del topo

Impara a isolare e coltivare cellule endoteliali primarie dall'aorta di topo con un metodo semplice e senza attrezzature speciali. Questa tecnica garantisce alta vitalità cellulare e rendimento superiore per studiare la fisiopatologia endoteliale.

Isolamento e colture primarie di cellule di topo aortica endoteliali

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