La mappatura del destino è una tecnica utilizzata per capire come le cellule embrionali si dividono, si differenziano e migrano durante lo sviluppo. Nei classici esperimenti di mappatura del destino, le cellule in diverse aree di un embrione vengono etichettate con un colorante chimico e quindi tracciate per determinare quali tessuti o strutture formano. I miglioramenti tecnologici consentono ora di marcare e tracciare le singole cellule durante lo sviluppo embrionale e l’età adulta.
Questo video esamina i concetti alla base della mappatura del destino e quindi descrive in dettaglio un protocollo di mappatura del destino nel pesce zebra utilizzando proteine fluorescenti fotoattivabili. Infine, vengono discusse le applicazioni specifiche e le modifiche di questa tecnica unica.
I biologi dello sviluppo usano la mappatura del destino come strumento per tracciare i lignaggi cellulari mentre un organismo matura. Questo viene fatto etichettando le cellule in una fase embrionale e quindi monitorando loro e la loro progenie durante lo sviluppo dell’organismo. La mappatura del destino viene anche utilizzata per studiare la migrazione e la differenziazione cellulare durante lo sviluppo, nonché la rigenerazione e la riparazione durante l’età adulta.
Questo video fornirà una panoramica della mappatura del destino, spiegherà un protocollo utilizzato per generare una mappa del destino nel pesce zebra e mostrerà alcuni modi in cui questa tecnica viene attualmente applicata nei laboratori.
Prima di saltare nei dettagli procedurali, discutiamo cos’è una mappa del destino e come è costruita.
Nei classici esperimenti di mappatura del destino, gli scienziati hanno colorato gruppi di cellule in un embrione precoce, come quelli nello stadio di gastrula, con un colorante che sarebbe stato trasmesso a tutti i discendenti di queste cellule. Dopo aver permesso all’embrione di svilupparsi per un certo periodo di tempo, hanno visto le cellule colorate nell’organismo più maturo. È stata quindi notata la posizione delle cellule colorate nell’organismo maturo. I risultati in comune di diversi esperimenti simili hanno permesso la costruzione di un diagramma noto come mappa del destino.
Pertanto, una mappa del destino è un piano generale che delinea il destino di ogni parte di un embrione precoce. Queste mappe aiutano gli scienziati a determinare cose come quali cellule embrionali si differenziano in quali cellule adulte funzionali e come migrano e si organizzano in strutture mature.
Gli scienziati hanno utilizzato molti organismi modello per creare mappe del destino, tra cui rane, nematodi, pesci, pulcini e topi. Alcuni organismi modello, come il pesce zebra Danio rerio, hanno un ulteriore vantaggio in questo tipo di esperimento. Poiché sono piccoli e rimangono trasparenti per gran parte del processo di sviluppo, gli scienziati possono facilmente tracciare le cellule osservando il pesce al microscopio ottico. È importante sottolineare che i progressi nelle tecniche di etichettatura cellulare ora consentono agli scienziati di contrassegnare con precisione le singole cellule e rintracciarle mentre l’organismo si sviluppa, il che aiuta nella creazione di una mappa del destino estremamente dettagliata.
Ora che hai un’idea di cosa siano le mappe del destino, discutiamo di un protocollo per la mappatura del destino nel pesce zebra che utilizza la fotoattivazione. Questo approccio relativamente nuovo dipende dalle proteine fotoattivabili. Si tratta di speciali proteine fluorescenti, che sono “ingabbiati”, il che significa che sono tenute in una conformazione specifica per prevenire la fluorescenza. Un’applicazione di un impulso laser controllato provoca un cambiamento conformazionale, denominato “uncaging”, che si traduce in fluorescenza visibile.
Per eseguire questo esperimento, queste proteine in gabbia specializzate vengono prima sintetizzate e poi iniettate in embrioni di zebrafish a uno o due stadi cellulari. Successivamente, gli embrioni sono autorizzati a maturare allo stadio di sviluppo desiderato prima della fotoattivazione.
Quindi, per preparare il pesce alla fotoattivazione, gli embrioni vengono decorionati per rendere accessibile il tessuto bersaglio. Successivamente, sono montati in un mezzo otticamente chiaro, come l’agarose a bassa temperatura di fusione, che li mantiene in modo sicuro in una posizione stabile. I campioni sono allineati per esporre l’area di interesse e montati su un microscopio dotato di laser. Un impulso laser viene applicato all’area mirata contenente cellule di interesse, inducendo la fotoattivazione.
Dopo il trattamento laser, gli embrioni vengono accuratamente rimossi dall’agarose e restituiti al loro ambiente naturale fino a raggiungere lo stadio di sviluppo desiderato. Al fine di tracciare le cellule fotoattivate, gli embrioni sono di nuovo incorporati nell’agarose a bassa temperatura di fusione e le cellule fotoattivate possono quindi essere visualizzate e tracciate utilizzando la fluorescenza diretta o l’immuno colorazione.
Ora che hai una comprensione generale di un protocollo di mappatura del destino, diamo un’occhiata ad alcuni esperimenti di laboratorio che sfruttano questa procedura.
Oltre a studiare lo sviluppo embrionale, la mappatura del destino può essere utilizzata per esaminare la riparazione nei sistemi maturi. In questo esperimento, un sottotipo di cellula specifico è stato ablato da una retina transgenica di zebrafish. Gli scienziati hanno quindi rintracciato cellule staminali adulte residenti geneticamente etichettate per determinare il loro destino a seguito di lesioni. Infine, è stata eseguita l’analisi delle immagini, che ha dimostrato l’attivazione delle cellule staminali adulte e la successiva riparazione dei tessuti.
Gli scienziati stanno anche usando protocolli simili per capire il destino delle cellule staminali trapiantate. Qui, le cellule staminali embrionali umane geneticamente marcate, o hESC, sono state trapiantate in un modello murino immunocompromesso. Le cellule impiantate sono state lasciate differenziare per 8-12 settimane, dopo di che il teratoma risultante, che è un tumore che contiene tessuto da più strati germinali, è stato raccolto, fissato e immunomaccato per determinare il destino delle cellule staminali impiantate. Questo tipo di esperimento aiuta gli scienziati a confermare il potenziale differenziativo in vivo delle cellule staminali coltivate.
Come accennato in precedenza, gli scienziati eseguono procedure di mappatura del destino in vari organismi modello, compresi i mammiferi. In questo particolare studio, gli scienziati hanno contrassegnato le cellule in una regione specifica di un embrione di topo precoce utilizzando approcci genetici inducibili. Questo viene fatto somministrando un agente induttore a un topo gravido che trasporta prole geneticamente modificata. Le cellule etichettate sono state monitorate durante le fasi successive dello sviluppo, il che ha aiutato gli scienziati a determinare il loro destino finale.
Hai appena visto il video di JoVE sulla mappatura del destino. Questo video ha fornito alcune informazioni sulla creazione di mappe del destino, ha esaminato uno specifico protocollo di mappatura del destino e ha discusso alcune delle modifiche e delle applicazioni di questa tecnica estremamente utile. Come sempre, grazie per aver guardato!
Developmental biologists use fate mapping as a tool to trace cell lineages while an organism matures. This is done by labeling cells at an embryonic stage and then tracking them and their progeny throughout the organism’s development. Fate mapping is also used to study cell migration and differentiation during development, as well as regeneration and repair during adulthood.
This video will provide an overview of fate mapping, explain a protocol used to generate a fate map in zebrafish, and show some ways in which this technique is currently being applied in labs.
Before jumping into the procedural details, let’s discuss what a fate map is and how it’s constructed.
In classical fate mapping experiments, scientists stained groups of cells in an early embryo, such as those in the gastrula stage, with a dye that would be passed on to all the descendants of these cells. After allowing the embryo to develop for a certain period of time, they viewed the stained cells in the more mature organism. The location of stained cells in the mature organism was then noted. Pooled results of several similar experiments allowed construction of a diagram known as a fate map.
Therefore, a fate map is an overall plan that outlines the fate of each part of an early embryo. These maps help scientists to determine things like which embryonic cells differentiate into which functional adult cells, and how they migrate and organize into mature structures.
Scientists have used many model organisms to create fate maps, including frogs, nematodes, fish, chicks, and mice. Some model organisms, such as the zebrafish Danio rerio, have an additional advantage in this type of experiment. Since they are small and remain transparent for much of the developmental process, scientists can easily track cells by viewing the fish under a light microscope. Importantly, advances in cell labeling techniques now allow scientists to precisely mark single cells and trace them as the organism develops, which helps in the creation of an extremely detailed fate map.
Now that you have an idea about what fate maps are, let’s discuss a protocol for fate mapping in zebrafish that uses photoactivation. This relatively new approach depends on photoactivatable proteins. These are special fluorescent proteins, which are “caged,” meaning they are held in a specific conformation to prevent fluorescence. An application of a controlled laser pulse causes a conformational change, referred to as “uncaging,” that results in visible fluorescence.
In order to perform this experiment, these specialized caged proteins are first synthesized and then injected into one or two cell stage zebrafish embryos. Next, the embryos are allowed to mature to the desired developmental stage prior to photoactivation.
Then, to prepare the fish for photoactivation, the embryos are dechorionated to make the target tissue accessible. Next, they are mounted in an optically clear medium, such as low melting temperature agarose, which safely maintains them in a steady position. The samples are aligned to expose the area of interest, and mounted onto a laser-equipped microscope. A laser pulse is applied to the targeted area containing cells of interest, inducing photoactivation.
Following the laser treatment, embryos are carefully removed from the agarose and returned to their natural environment until the desired developmental stage is reached. In order to trace the photoactivated cells, embryos are again embedded in low melting temperature agarose, and the photoactivated cells can then be visualized and traced using direct fluorescence or immunostaining.
Now that you have an overall understanding of a fate mapping protocol, let’s take a look at a few lab experiments that take advantage of this procedure.
In addition to studying embryonic development, fate mapping can be used to examine repair in mature systems. In this experiment, a specific cell subtype was ablated from a transgenic zebrafish retina. Scientists then traced genetically labeled resident adult stem cells to determine their fate following injury. Finally, image analysis was performed, which demonstrated activation of adult stem cells and subsequent tissue repair.
Scientists are also using similar protocols to understand the fates of transplanted stem cells. Here, genetically tagged human embryonic stem cells, or hESCs, were transplanted into an immunocompromised mouse model. The implanted cells were allowed to differentiate for 8-12 weeks, following which the resulting teratoma, which is a tumor that contains tissue from multiple germ layers, was harvested, fixed, and immunostained to determine the fate of implanted stem cells. This type of experiment helps scientists to confirm the in vivo differentiative potential of cultured stem cells.
As mentioned earlier, scientists perform fate mapping procedures in various model organisms, including mammals. In this particular study, scientists marked cells in a specific region of an early mouse embryo using inducible genetic approaches. This is done by administering an inducing agent to a pregnant mouse carrying genetically modified offspring. The labeled cells were tracked throughout later developmental stages, which helped scientists to determine their ultimate fate.
You’ve just watched JoVE’s video on fate mapping. This video provided some insight into creating fate maps, reviewed a specific fate mapping protocol, and discussed some of the modifications and applications of this extremely useful technique. As always, thanks for watching!
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