Name: Determinazione del biofilm iniziazione su cellule infettate da virus da batteri e funghi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-06T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 33 s
Description: Scopri come misurare l'adesione di Staphylococcus aureus e Candida albicans a cellule HeLa infettate da HSV. Questo metodo quantifica le interazioni tra virus, batteri e funghi all'inizio della formazione del biofilm.

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Questo progetto è stato supportato dalla Midwestern University, dall'IL Office of Research and Sponsored Programs (ORSP) e dal Midwestern University College of Dental Medicine-Illinois (CDMI).

1. HSV ceppi e Manipolazione Nota: ricombinante non diffondere HSV-1 (KOS) gL86 e HSV-2 (KOS) 333gJ - con l&#39;attività reporter di beta-galattosidasi utilizzati sono stati forniti da V. Twiari 36,37. <ol><li> Utilizzare virus da un singolo lotto e conservare a -80 ° C in un rapporto 1: 1 di mezzo di Dulbecco modificato Eagle (DMEM) con siero fetale bovino 20% (FBS) e latte scremato fino al momento dell&#39;uso. Prima stoccaggio lot virale, determinare la concentrazione di virus o -nitrophenyl-β-D-galattopiranoside (ONPG) e 5-bromo-4-cloro-3-indolil-β-D-galattopiranoside (X-Gal) dosaggio. </li><li> Determinare la vitalità virus e molteplicità di infezione (MOI) di X-Gal colorazione per ogni seduta sperimentale mediante saggio entrata del virus giornalista, come descritto in precedenza (Figura 1) 14. </li><li> Diluire il virus (Opt-MEM) a MOI desiderato. Fissare monostrati (paraformaldeide; 0,5 ml / pozzetto) prima della colorazione. Posizionare controlli virus redditività in un microti separataPiastra ter in parallelo con le piastre test polimicrobiche. </li></ol> 2. HeLa 299 Manipolazione cellulare <ol><li> Crescere a 37 ° C, 5% CO 2 in DMEM con 4,5 g / L di glucosio, 10% inattivato al calore siero fetale bovino (FBS), gentamicina (50 ug / ml) e L-glutammina. cellule Passage a 80% di confluenza con la soluzione di tripsina (acido etilendiamminotetraacetico, 0,53 M EDTA 0,05% tripsina; 5 ml / fiasco). </li></ol> 3. C. Manipolazione albicans Nota: C. albicans ottenuti da una fonte di laboratorio clinico è conservato a -80 ° C in Remmel latte scremato 2x media. <ol><li> Cultura congelate Stock su Sabouraud destrosio Medium (37 ° C). Dopo 24 ore la sottocultura C. albicans su terreno Fungisel (37 ° C; 48 HR) per l&#39;uso. </li><li> Genera tubo germe (GT) forme (pick colonie rappresentative, 3 ml di FBS, 3 ore; 37 ° C; Abs 600, 0.3). Dopo l&#39;incubazione, lavare GT (HBSS; 2x; 4.000 xg). Aggiungere GT lavata per riscaldato HBSS (37 &amp;# 176; C; 0,32 Abs 600). forme GT dovrebbe essere il 99% delle cellule osservate come determinato dal conteggio emocitometro. </li><li> Fai la forma di lievito (YF) stock sospensioni con la scelta di colonie rappresentative Fungisel (HBSS, 3 ml; 0,32 Abs 600). Contare il numero di forme YF / ml al microscopio con un emocitometro. forme YF dovrebbero essere il 99% delle cellule osservate come determinato dal conteggio emocitometro. </li><li> Fare lavoro stock fungine (250 ml di GT o YF magazzino in 25 ml di HBSS; 37 ° C; 10 5 CFU / ml) </li></ol> 4. S. Manipolazione aureus <ol><li> Conservare S. aureus ATCC 25923 (-80 ° C; Remmel scremato 2x latte). Cultura su agar sangue di pecora (5%; 37 ° C; 24 ore). Scegli colonie rappresentante e trasferimento mannitolo sali media entro 2 giorni per il magazzino (37 ° C; 18 ore). </li><li> Fai S. aureus sospensione madre (3 ml di HBSS; 1.32 Abs 600; 10 8 UFC / ml) <ol><li> Fai S. lavoro aureus azionari (100 pldello stock in 25 ml di HBSS; 10 5 CFU / ml). </li></ol></li></ol> 5. Candida e S. aureus Sospensioni <ol><li> Fare misto C. albicans e S. sospensione aureus (250 ml YF o GT magazzino e 100 ml di S. aureus magazzino in 25 ml di HBSS). </li></ol> 6. polimicrobiche biofilm Assay <ol><li> Seed 96 pozzetti con 200 ml di 2 x 10 5 HeLa cellule / ml (85% livello di confluenza). Lastre di roccia (30 - 45 min; 37 ° C) prima di incubazione (37 ° C, 5% di CO 2 incubatore; 18 h). Monostrati lavaggio (1x; Opt-MEM) poi sementi con HSV (HSV-1 (KOS) gL86 o HSV-2 (KOS) 33 gJ - in 100 ml Opt-MEM; MOI 50 e 10). Incubare le piastre (3 ore; 37 ° C, 5% di CO 2). Utilizzare un solo ceppo virale al giorno. </li><li> Lavare monostrati infettati (1x; tampone fosfato (PBS) con Mg +2 e Ca +2; 100 ml). Sostituire PBS con caldo HBSS lasciando 25 &amp; #181; l in ciascun pozzetto. <ol><li> Aggiungere YF, GT e / o S. sospensioni aureus lavoro (100 ml; porta a rapporto cellulare = 5: 1; n = 16). come indicato nella Tabella 1 Incubare le piastre (statici; 30 min; 37 ° C; 5% CO 2). </li></ol></li><li> Dopo l&#39;incubazione, aspirare una colonna alla volta immediatamente ricarica da 300 ml PBS con Mg +2 e Ca +2. Ripetere questa operazione due volte, quindi aggiungere la radio-immunoprecipitazione tampone di lisi (RIPA; filtro sterilizzato, 200 ml di una diluizione 1:50). </li><li> Rapidamente triturate il lisato cellulare HeLa poi posto su 50 pl sali mannitolo (MS) e media / o Fungisel (F) (figura 2). Distribuire il lisato utilizzando una bacchetta di vetro piegata a 90 °. Incubare le piastre (18 ore a 37 ° C). contare manualmente il numero di colonie per piastra. I controlli sono costituiti da S. aureus e / o C. albicans aderenza alle cellule HeLa HSV-non infetti. </li></ol> 7. Gli studi di imaging &lt;/ P&gt; <ol><li> Lavare ogni coprioggetto di vetro rotondo (12 mm; 50 ml di acetone in 100 ml bicchiere). coprioggetto secche e sterilizzare (Kimwipes; piatti di vetro Petri). Mettere vetrini sterili a secco nei pozzetti di sterili 24 pozzetti con l&#39;alcool di fiamma pinze sterilizzate. </li><li> Aggiungere cellule HeLa (1 ml; il volume 5x utilizzato per 96 pozzetti) ai pozzetti di 24 pozzetti contenenti i vetrini rotondi sterili lavati. Aggiungere i virus, batteri e funghi secondo la dima (Tabella 2) al 5x il volume usato per le piastre a 96 pozzetti, poi incubare e processo come descritto ai punti 6.2.1 a 6.4 sopra. </li><li> Dopo l&#39;ultimo lavaggio, fissare le cellule per la microscopia inondando il vetrino con metanolo e permettendogli di evaporare. Conservare le piastre a temperatura ambiente fino a colorazione. </li><li> Per microscopia in campo luminoso (1,000x finale ingrandimento originale) riempire i pozzetti contenenti coprioggetto metanolo-fisso con acqua deionizzata. Immediatamente aspirare l&#39;acqua. Coprire ogni vetrino con cristalvioletto Grammi. Lavare coprioggetto libera di macchia non legato (acqua deionizzata). Coprioggetto secchi in situ poi aderire con set mediamente dura ad una slitta etichettato montaggio (Figura 3). </li><li> Per la microscopia a fluorescenza (obiettivo 100X; 1,000x originale ingrandimento finale) lavaggio coprioggetto privo di metanolo essenzialmente come descritto al punto 7.4. Asciugare il coprioggetto nei pozzetti. <ol><li> Dopo l&#39;essiccazione, rimuovere i vetrini e metterli su vetrini etichettati. Quindi aggiungere una quantità sufficiente di diluizione 1:20 di isotiocianato di fluorescina (FITC) coniugata Herpes simplex virus di tipo 1 + 2 GD anticorpi per coprire il vetrino (1 - 5 ml). </li><li> Incubare i vetrini in una camera umida a 37 ° C per 30 min. Dopo l&#39;incubazione, lavare i coprioggetti in 4 cambi di PBS. </li><li> Dopo l&#39;ultimo lavaggio, restituire il vetrino alla diapositiva etichettati. Macchia con 4 &#39;, 6-diamidino-2-fenilindolo (DAPI; camera umida; 37 ° C per 30 min). Dopo l&#39;incubazione lavare i coprioggetti in 4 chanGES di PBS, poi apporre la diapositiva etichettato con set dura mezzo di montaggio. </li><li> Lasciare che il mezzo di montaggio per la cura per 24 ore a temperatura ambiente al buio. Esaminare i coprioggetti sotto dell&#39;obiettivo olio sia su un microscopio a campo chiaro o microscopio a fluorescenza con filtri di taglio FITC e DAPI. Esaminate immagini di almeno 50 campi (100 cellule per minimo organismo) per co-localizzazione (Figura 4). </li></ol></li></ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Al momento non sono disponibili informazioni sulle interazioni complesse tra permanente ai membri semi-permanenti del microbiome host che attraversano più domini tassonomici, vale a dire, procarioti, eucarioti e virali. Perciò abbiamo sviluppato un nuovo sistema modello in vitro per lo studio del biofilm iniziazione da S. aureus e C. albicans on HSV-1 oppure HSV-2 infettato 229 cellule HeLa 38 (HeLa). Il sistema modello cellule HeLa presenta un vantaggio u...

<html> Il microbioma umano comprende diversi organismi da più regni tassonomici che condividono aree geografiche nel corpo. L&#39;adesione alla superficie delle cellule è un primo passo essenziale nella formazione di biofilm, che è parte del processo microbiome colonizzazione. Incluso nel microbiome può essere virus che causano infezioni croniche e persistenti. L&#39;infezione cronica a cellule da questi virus può causare un&#39;alterazione putativo disponibilità del recettore. 1,2 Inoltre, l&#39;ingresso delle cellule da patogeni intracellulari potrebbe anche influenzare la fluidità di membrana host / idrofobia che a loro volta possono alterare l&#39;attaccamento degli altri membri microbiome, compresi batteri e funghi . Al fine di comprendere le interazioni che possono verificarsi tra questi molteplici agenti patogeni che co-localizzano nelle stesse regioni geografiche del ospite umano, dobbiamo essere in grado di studiare l&#39;interazione di agenti patogeni che rappresentano lo spettro di regni tassonomici presenti sulla superficie della mucosa. t &quot;&gt; Il Herpesviridae sono una famiglia di microbi presenti nel 100% degli esseri umani come membri permanenti del microbiome 3,4. Inoltre, esse possono anche essere persistentemente versato sia in presenza che in assenza di sintomi. In particolare, herpes simplex virus-1 e herpes simplex virus 2 (HSV-1 e HSV-2, rispettivamente) sono membri permanenti del microbiome nella oronasopharynx e del tratto genitale. in individui immuno-competenti, sia HSV-1 e HSV-2 causa gengivostomatite, nonché herpes genitale 5-8. in questi siti, HSV provoca un&#39;infezione latente caratterizzata da persistente asintomatica virale spargimento 9. ingresso di HSV in cellule provoca alterazioni nell&#39;espressione superficiale di nectins, eparan solfato, raft lipidici e herpesvirus ingresso mediatore necrosi cronica / tumorale recettore del fattore (HVEM / TNFR) 10-25. Questi recettori potenzialmente rappresentano condivise per alcuni batteri e funghi, per esempio S. aureus e C. albicans, che pur patogeni opportunisti,può anche risiedere come membri del microbioma mucosa del oronasopharynx 26,27. All&#39;interno del oronasopharynx S. aureus e C. albicans occupano due siti distinti di colonizzazione. In host con denti naturali, la mucosa orale è condiviso da HSV-1 e C. albicans, mentre le narici nasali anteriori sono occupati da S. aureus 28. Tuttavia, nonostante i risultati in vitro in cui S. aureus aderisce alle cellule epiteliali della bocca, 29,30 S. aureus è raramente isolata da campioni orali quando il tessuto normale è presente 29,30. Poco si sa riguardo a genitali nicchie tratto co-colonizzazione al di là dei risultati clinici che S. aureus è associata a vaginite aerobica, caratterizzata da infiammazione genitale, scarico e dispareunia, mentre C. albicans produce lesioni della mucosa simile a quello osservato nella cavità orale 31-35. Così, anche se questi membri della Microbi orale e genitaleome croce regni tassonomici poco si sa sulla loro interazione come urta la loro capacità di avviare la formazione di biofilm attraverso l&#39;adesione alla superficie della cellula ospite 5. Questo protocollo è stato efficacemente applicato a determinare le conseguenze funzionali di co-colonizzazione / infezione.

<table><tbody><tr><td>C.albicans</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BBL Sabouraud Destrosio</td><td>BD</td><td>211584</td><td></td></tr><tr><td>Fungisel Agar</td><td>Dot Scientific</td><td>7205A</td><td></td></tr><tr><td>S.aureus</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mannitol Salt Agar</td><td>Troy Biologicals</td><td>7143B</td><td></td></tr><tr><td>Sangue di pecora agar</td><td>Troy Biologicals</td><td>221239</td><td></td></tr><tr><td>Hela cells</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1x DMEM (Dubelcco's Modified Eagle Medium, con 4,5 g/L di glucosio e L-glutammina, senza piruvato di sodio</td><td>Corning</td><td>10-017-CM</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicin 50 mg/ml</td><td>Sigma</td><td>1397</td><td>50 &micro; g/ml concentrazione finale nel DMEM completo</td></tr><tr><td>Tripsina EDTA (0,05% tripsina, 0,53 M EDTA)Soluzione 1x</td><td>Corning</td><td>25-052-CI</td><td></td></tr><tr><td>Siero fetale bovino</td><td>Atlanta Biologicals</td><td>S11150</td><td>10% concentrazione finale nel DMEM</td></tr><<tr><td>strong>Other medium and reagents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ONPG</td><td>Thermo Scientific</td><td>34055</td><td></td></tr><tr><td>Ultra-Pure X gal</td><td>Invitrogen</td><td>15520-018</td><td></td></tr><tr><td>1x HBSS (Soluzione salina bilanciata di Hanks)</td><td>Corning</td><td>20-021-CV</td><td></td></tr><tr><td>1x PBS</td><td>Dot Scientific</td><td>30042-500</td><td></td></tr><tr><td>RIPA Lysis</td><td>Life Technologies</td><td>89901</td><td></td></tr><tr><td>Staining</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Methanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>A433P-4</td><td></td></tr><tr><td>HSV 1& 2, specifico per gD</td><td>ViroStat</td><td>196</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>SIGMA</td><td>D8417-5MG</td><td></td></tr><tr><td>Gram Crystal Violet</td><td>Troy Biologicals</td><td>212527</td><td></td></tr><tr><td>Supplies</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Petri dish 100 x 15</td><td>Dot Scientific</td><td>229693&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Piastra di Petri 150 x 15</td><td>Kord Valmark</td><td>2902</td><td></td></tr><tr><td>Piastre a 96 pozzetti</td><td>Evergreen Scientific</td><td>222-8030-01F</td><td></td></tr><tr><td>Piastre a 24 pozzetti</td><td>Evergreen Scientific</td><td>222-8044-01F</td><td></td></tr><tr><td>Provette per coltura 100 x 13</td><td>Thomas Scientific</td><td>9187L61</td><td></td></tr><tr><td>Cerchi di copertura, 12 mm</td><td>Deckglaser</td><td>CB00120RA1</td><td></td></tr></tbody></table>

determinazione del biofilm iniziazione su cellule infettate da virus da batteri e funghi

Determination of Biofilm Initiation on Virus-infected Cells by Bacteria and Fungi

Lo studio delle interazioni polimicrobiche attraverso i regni tassonomici che includono funghi, batteri e virus non sono stati precedentemente esaminati rispetto a come i membri virali del microbiome influenzano le successive interazioni microbo con queste cellule ospiti infettate da virus. La convivenza virus con batteri e funghi è principalmente presente sulle superfici mucose della cavità orale e genitale. le cellule delle mucose, in particolare quelli con infezioni virali latenti croniche o persistenti persistenti, potrebbero avere un impatto significativo sulla membri della microbiome attraverso l&#39;alterazione del virus in numero e tipo di recettori espressi. Modifiche nell&#39;architettura membrana della cellula ospite comporterebbe capacità alterato di successivi componenti della flora normale e patogeni opportunisti di avviare il primo passo nella formazione di biofilm, cioè, l&#39;aderenza. Questo studio descrive un metodo per la quantificazione e esame visivo effetto di HSV sulla apertura di Biofilformazione m (aderenza) di S. aureus e C. albicans.

Il livello di solidità dei dati ottenibili da sistema descritto in questa relazione è illustrata nella Figura 2 af 38. Attraverso l&#39;utilizzo di questo sistema di modulazione di interazione stafilococco e funghi con le cellule infettate da virus e il loro effetto sulla reciproca aderenza può essere delineata. Questi tipi di studi richiedono esame microscopico dell&#39;interazione come mostrato nelle figure 3 e 4, 38</s...

Un metodo è descritto qui per la determinazione dell'associazione e della competizione inter-regno (batterica e fungina) per l'adesione ai monostrati di cellule HeLa infettate da virus. Questo protocollo può essere esteso a più combinazioni di procarioti, eucarioti e virus.

Determinazione del biofilm iniziazione su cellule infettate da virus da batteri e funghi

The study of polymicrobial interactions across the taxonomic kingdoms that include fungi, bacteria and virus have not been previously examined with ...

L'obiettivo generale di questo esperimento è misurare gli effetti che le cellule pre-infettate con HSV hanno sull'adesione successiva di patogeni opportunisti batterici e fungini, ad esempio Staphylococcus aureus e Candida albicans. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali riguardo al ruolo svolto dall'infezione virale cronica nella regolazione dei diversi membri del microbioma dell'ospite. Il principale vantaggio di questa tecnica è che l'interazione tra più organismi può essere esaminata e quantificata nella fase iniziale della formazione del biofilm, ovvero l'adesione.Le implicazioni di questa tecnica riguardano il controllo dei patogeni opportunisti colonizzatori, poiché la condizione preliminare dell'infezione da HSV con eliminazione asintomatica è presente nella maggior parte della popolazione umana. Sebbene questo metodo possa fornire informazioni sul controllo esercitato dall'HSV nell'adesione microbica successiva, può essere applicato anche ad altri sistemi, come l'infezione da CMV e da adenovirus. Per iniziare, determinare la vitalità del virus HSV1 o HSV2 e la molteplicità di infezione, o MOI, mediante colorazione con x-gal per ogni esecuzione del saggio sperimentale, utilizzando un saggio di ingresso del virus reporter.Diluire il virus al MOI desiderato e posizionare i controlli di vitalità virale in una piastra microlitrica separata, in parallelo con le piastre per il saggio polimicrobico. Quindi utilizzare 100 microlitri di tampone paraformaldeide glutaraldeide per fissare i monocapati prima della colorazione. Per il mantenimento delle cellule HeLa, coltivarle in DMEM con quattro virgola cinque grammi per litro di glucosio, dieci percento di FBS inattivato per riscaldamento, 50 microgrammi per litro di gentamicina e l-glutammina.Utilizzare una soluzione di tripsina per il passaggio delle cellule al 80 percento di confluenza. Per coltivare C.albicans, coltivare una riserva congelata su mezzo sub in un mezzo duttile a 37 gradi Celsius. Dopo 24 ore, sottocolturare C.albicans su mezzo fungicell e incubare per 48 ore prima dell'uso.Generare forme a tubo germinale o GT di C.albicans prelevando colonie di cellule fungine rappresentative e coltivandole in tre millilitri di FPS a 37 gradi Celsius per tre ore. Al termine dell'incubazione, centrifugare la coltura a 4.000 ×g per dieci minuti. Successivamente, lavare le cellule due volte con HBSS.Dopo aver contato le cellule utilizzando un emocitometro, aggiungere il GT lavato all'HBSS a 37 gradi celsius fino a un OD 600 di zero virgola tre due. Per preparare le sospensioni di forma lievito, o YF, selezionare colonie fungicell rappresentative e utilizzarle per inoculare tre millilitri di HBSS. Far crescere le colture fino a un OD 600 di zero virgola tre due, utilizzando un emocitometro contare il numero di forme YF per millilitro, che dovrebbe corrispondere al 99 percento delle cellule osservate al microscopio.Preparare un ceppo fungino di lavoro trasferendo 250 microlitri di ceppo GT o YF in 25 millilitri di HBSS a 37 gradi celsius. Questo produce da dieci alla quinta CFU per millilitro. Per preparare SRES ATCC 25923, effettuare un’isolamento su agar al 5% di sangue di pecora da un ceppo congelato e incubare a 37 gradi celsius per 24 ore.Entro due giorni, selezionare colonie rappresentative, trasferirle in mezzo salino al mannosio e coltivare a 37 gradi Celsius per 18 ore. Per preparare una sospensione SRES, sospendere colonie rappresentative in tre millilitri di HBSS a 37 gradi Celsius fino a un OD 600 di zero virgola uno tre due, ovvero dieci alla ottava UFC per millilitro. Per preparare una sospensione lavorativa, trasferire 100 microlitri della sospensione madre in 25 millilitri di HBSS.Questo porta a una concentrazione di dieci alla quinta UFC per millilitro. Il primo passaggio fondamentale quando si applica questo metodo ad altri organismi o ceppi di microrganismi è la determinazione del numero corretto di batteri e funghi da aggiungere, in modo da ottenere un numero sufficiente di colonie da contare. Per eseguire un saggio di biofilm polimicrobico, si seminano le piastre a 96 pozzetti con 200 microlitri di due volte dieci alla quindicesima cellule HeLa per millilitro.Agitare le piastre a 37 gradi Celsius per 30-45 minuti prima di incubarle in presenza di anidride carbonica al cinque percento a 37 gradi Celsius per 18 ore. Utilizzare One X ottimo per lavare i monocapati, quindi seminare con il singolo ceppo di HSV. Testare un solo ceppo alla volta.Incubare le piastre a 37 gradi Celsius in un'atmosfera contenente il 5 percento di anidride carbonica per tre ore. Lavare i monocapati infetti utilizzando 100 microlitri di PPS a 37 gradi Celsius con magnesio e calcio. Successivamente, sostituire il PBS con HBSS a 37 gradi Celsius.Lasciare 25 microlitri di HBSS in ogni pozzetto. Successivamente, aggiungere la sospensione lavorativa di YF, GT e/o SRES e incubare le piastre a 37 gradi Celsius in presenza del cinque percento di anidride carbonica per 30 minuti. Al termine dell'incubazione, aspirare una colonna della piastra alla volta.Riempire immediatamente i pozzetti con 300 microlitri di PBS contenente magnesio e calcio. Dopo aver ripetuto questo passaggio di lavaggio due volte, aggiungere 200 microlitri di buffer di lisi RIPA, filtrato e sterilizzato, diluito 1:50, in ogni pozzetto. Quando si lavora con altri ceppi di batteri o funghi, assicurarsi che la concentrazione di RIPA utilizzata sia sufficiente per la lisi cellulare, ma comunque compatibile con il test di vitalità microbica.Triturare rapidamente il lisato di cellule HeLa e pipettare 50 microlitri su terreno salino al mannosio e/o su terreno fungicell. Quindi, utilizzando una bacchetta di vetro piegata ad un angolo di 90 gradi, distribuire il lisato sulla superficie della piastra. Dopo aver incubato le piastre per 18 ore, contare manualmente il numero di colonie per piastra.I controlli consistono di SRES o aderenti di C. albicans su cellule HeLa non infette da HSV. Per eseguire gli studi di imaging, lavare ogni disco circolare di vetro coprioggetto nell'acetone prima della sterilizzazione. Quindi, utilizzando pinze sterili trattate con alcol e fiamma, posizionare i dischi coprioggetto asciutti e sterili nelle pozzette di piastre sterili da 24 pozzette.Aggiungere le cellule HeLa nei pozzetti delle piastre contenenti i cover slip. Quindi, infettare le cellule con il virus. Dopo l'infezione, aggiungere batteri e funghi secondo il modello indicato e incubare ed elaborare le cellule come dimostrato in precedenza per la piastra a 96 pozzetti.Dopo l'ultimo lavaggio, fissare le cellule per la microscopia inondando i coverslip con metanolo e lasciandolo poi evaporare. Per la microscopia in campo chiaro, riempire le pozzette contenenti i coverslip fissati con acqua deionizzata. Aspirare immediatamente l'acqua e aggiungere una quantità sufficiente di cristallo violetto in grammi per coprire ciascun coverslip.Dopo aver lavato le coprioggetti colorate con violetto cristallino con acqua deionizzata, asciugarle in C2 prima di fissarle con un mezzo di montaggio a indurimento su un vetrino etichettato. Per la microscopia a fluorescenza, dopo aver rimosso il metanolo dalle coprioggetti mediante lavaggio, asciugarle nelle pozzette prima di montarle su vetrini etichettati con un mezzo di montaggio a indurimento. Aggiungere una quantità sufficiente di una diluizione da uno a 20 dell'anticorpo anti-HSV1 coniugato con FITC più 2GD per coprire completamente la coprioggetti.Incubare i vetrini in una camera umida a 37 gradi Celsius per 30 minuti. Dopo l'incubazione, lavare le lamelle con PBS per quattro volte. Dopo l'ultimo lavaggio, riposizionare i vetrini nella camera umida.Aggiungere dab B e incubare per 30 minuti a 37 gradi Celsius. Dopo l'incubazione, lavare i vetrini quattro volte con PBS. Lasciare polimerizzare il mezzo di montaggio per 24 ore a temperatura ambiente al buio.Quindi, con un obiettivo ad immersione in olio, esaminare al microscopio, in campo chiaro o in fluorescenza, almeno 50 campi per la colocalizzazione. Qui vengono mostrati risultati rappresentativi dell'effetto dell'HSV sull'adesione di Staphylococcus e/o Candida albicans. La presenza di HSV1 ha inibito l'adesione di Staphylococcus a cellule HeLa.La presenza di forme a tubo germinale di Candida, ma non di forme lievitarie, ha ripristinato i livelli di adesione degli Stafilococchi. Risultati simili sono stati osservati nelle cellule HeLa infettate con HSV2. Come mostrato in questa figura, il livello di adesione delle forme a tubo germinale di Candida è significativamente più elevato nelle cellule infettate da HSV2 rispetto a quelle infettate da HSV1.L'effetto inverso è stato misurato per HSV1 rispetto a HSV2 sulle forme lievitate di Candida. I modelli di adesione sono stati determinati mediante colorazione con violetto di cristallo di monocapato per visualizzare l'interazione tra batteri e fungo. Successivamente, la microscopia a fluorescenza è stata utilizzata per determinare la presenza di HSV in relazione agli altri microrganismi.In assenza di HSV, gli Stafilococchi e sia le forme lievitative che quelle con germoglio di Candida colocalizzavano sulle cellule HeLa. Tuttavia, solo Candida è stata osservata sulle cellule infettate da HSV. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in otto o nove ore se viene effettuata correttamente.Seguendo questa procedura, possono essere eseguiti altri metodi come la colorazione differenziale con anticorpi fluorescenti al fine di rispondere ad ulteriori domande, ad esempio sull'espressione differenziale di recettori di superficie presenti dopo l'ingresso virale nella cellula. Dopo il suo sviluppo, questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo del microbioma umano per esplorare le interazioni post-microbiche in sistemi di coltura tissutale e di organo. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come sviluppare un modello di interazione polimicrobica che interessi i diversi regni tassonomici.Non dimenticare che lavorare con agenti patogeni può essere estremamente pericoloso, e sono necessarie precauzioni come l'uso di ceppi virali non trasmissibili e tecniche di barriera.

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JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia e Infezioni

Il saggio descrive un modo rapido per misurare la rapida formazione di biofilm in batteri e funghi. Questo metodo utilizza una micropiastra come substrato per la formazione di biofilm microbico, e il biofilm viene visualizzato per mezzo viola ceppo di cristallo. Il saggio fornisce sia un test qualitativo o quantitativo per la formazione di biofilm presto.

Microtitolazione Dish Biofilm saggio Formazione

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Quantificazione della soppressione del biofilm indotta da enzimi nei batteri patogeni

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Stabilimento di biofilm trasversali batterico-fungini per lo studio della patogenesi orale

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Stabilimento di una co-coltura fungo-batterica per la formazione di biofilm

Questo video illustra l'inizio della formazione di biofilm polimicrobici su cellule infettate da virus da parte di batteri e funghi. L'infezione da virus dell'herpes simplex impedisce l'adesione batterica alle cellule, impedendo la co-localizzazione batterico-fungina. Al contrario, le cellule non infette mostrano una co-localizzazione batterico-fungina e l'inizio della formazione di biofilm.

Un test per determinare l'inizio del biofilm polimicrobico su cellule infettate da virus

Questo video descrive un metodo per far crescere e analizzare qualitativamente i biofilm batterici su ife fungine utilizzando la microscopia. I biofilm batterici si formano frequentemente sulle superfici fungine e coinvolgono numerosi processi di interazione batterico-fungina, come la cooperazione metabolica, la competizione o la predazione.

Un metodo per la preparazione del campione per visualizzare i batteri che formano biofilm sulle ife fungine

Questo protocollo descrive un nuovo metodo per crescere e qualitativamente analizzare biofilm batterici su ife fungine mediante microscopia confocale ed elettronica.

Un nuovo metodo per l&#39;analisi qualitativa multi-scala batterica biofilm su filamentose Fungal Colonies Utilizzando confocale e microscopia elettronica

Questo protocollo descrive l'uso di un dispositivo microfluidico automatico personalizzabile per visualizzare la formazione di biofilm in Candida albicans in condizioni fisiologiche host.

Visualizzazione della formazione di Biofilm in Candida albicans utilizzando un dispositivo microfluidico automatizzato

Questo protocollo permette al lettore di analizzare la formazione di biofilm indotta da sali biliari in patogeni enterici usando un approccio sfaccettato per catturare la natura dinamica del biofilm batterici valutando l'aderenza, formazione di matrice extracellulare sostanza polimerica, e dispersione.

Formazione di Biofilm indotta da sali biliari in patogeni enterici: tecniche di identificazione e quantificazione

Questo protocollo descrive la preparazione dell'inoculo, la quantificazione del biofilm su piastre per microtitolazione utilizzando un colorante crystal violet, la conta vitale nei biofilm e la visualizzazione dei biofilm di Acinetobacter.

Strategie di quantificazione, valutazione della vitalità e visualizzazione per biofilm di Acinetobacter

Scopri come misurare l'adesione di Staphylococcus aureus e Candida albicans a cellule HeLa infettate da HSV. Questo metodo quantifica le interazioni tra virus, batteri e funghi all'inizio della formazione del biofilm.

Determinazione del biofilm iniziazione su cellule infettate da virus da batteri e funghi

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