Name: Un In Vitro Modello della barriera emato-encefalica Utilizzando spettroscopia di impedenza: un focus sui T Cell-endoteliale cellulare Interazione (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-08T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 17 s
Description: Scopri un modello in vitro murino della barriera emato-encefalica con spettroscopia di impedenza. Studia l'interazione tra cellule T attivate e endotelio per comprendere i meccanismi delle patologie neuroimmunitarie.

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Siamo grati a Annika Engbers e Frank Kurth per il loro eccellente supporto tecnico e il Dr. Markus Schäfer (nanoAnalytics GmbH) per le discussioni utili per quanto riguarda le misure teer. Questo lavoro è stato sostenuto dalla Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG), SFB1009 progetto A03 di HW e LK, CRC TR128, progetti A08; Z1 e B01 LK e HW, e il Centro Interdisciplinare per la Ricerca Clinica (Facoltà di Medicina di Münster) codice di autorizzazione KL2 / 2015/14 a LK.

Per tutti gli esperimenti, i topi sono stati allevati e mantenuti in specifiche condizioni di assenza di patogeni nella struttura animali centrale presso l&#39;Università di Münster, secondo le linee guida tedesche per la cura degli animali. Tutti gli esperimenti sono stati eseguiti secondo le linee guida del comitato etico degli animali sperimentali e approvati dalle autorità locali del Nord Reno-Westfalia, Germania (LANUV, AZ 84-02.05.20.12.217). 1. MBMEC Isolamento e la coltura NOTA: isolare MBMECs come precedentemente descritto in dettaglio 14 con le seguenti modifiche: <ol><li> Sacrificio 20 adulti C57BL 6 topi / (6-8 settimane) da CO 2 inalazione e confermare la loro morte per accertare arresto cardiaco e respiratorio. </li><li> Risciacquare il mouse con il 70% di etanolo e decapitare usando le forbici; rimuovere il cuoio capelluto con pinze e forbici. Fare incisioni sul lato destro e sinistro del cranio, partendo dal foro occipitale. Sollevare il cranio dal suo lato caudale e takvia e fuori il cervello con una pinza. </li><li> Sotto una cappa a flusso laminare, utilizzare pinze sterili per posizionare il cervello in una capsula di Petri e rimuovere il tronco cerebrale, cervelletto, e talamo, mantenendo solo la corteccia. NOTA: L&#39;uso di un microscopio non è necessario per uno di questi passaggi. </li><li> Posizionare la corteccia su un pezzo di carta assorbente sterile occidentale e rotolare delicatamente con una pinza fino meningi non sono più visibili. </li><li> Dopo la digestione enzimatica e meccanica (seguendo il protocollo 14), raccogliere le cellule endoteliali dal gradiente di densità utilizzando un lungo ago sterile ed uno stantuffo 5 ml. Le cellule endoteliali appaiono come uno strato torbido sopra l&#39;anello rosso con eritrociti. Trasferimento 20-25 ml di questo strato in un nuovo tubo 50 ml centrifugazione; rabboccare il tubo con DMEM. </li><li> Dopo due turni di lavaggio 14, sospendere nuovamente le cellule in 6 ml di mezzo MBMEC contenente puromicina (4 mg / ml) e seminare su sei pozzetti di una piastra da 24 pozzetti; lasciarli in un tessutocultura incubatore a 37 ° C e 5% CO 2 (indicato come &#39;incubatore&#39; da qui in) per tre giorni. NOTA: Per i dettagli della soluzione di rivestimento MBMEC, vedi Materiali Tavolo. </li><li> Modificare il medium con l&#39;aggiunta di 1 ml a ciascun pozzetto di mezzo fresco MBMEC senza puromicina; mettere la piastra posteriore a 37 ° C e 5% CO 2 per altri due giorni. </li></ol> 2. La raccolta MBMECs <ol><li> Al quinto giorno dopo l&#39;isolamento MBMEC, pre-coat inserti permeabili con soluzione di rivestimento MBMEC: aggiungere 80 ml di soluzione per inserto e li lasciano a 37 ° C e 5% di CO 2 per 3 ore. </li><li> pipetta con attenzione la soluzione di rivestimento e lasciare che il inserti asciugare per 30 minuti. Aggiungere 2 ml di temperatura ambiente (RT) PBS a ciascun pozzetto della piastra, utilizzando MBMECs per lavare il mezzo; ripetere questo passaggio. Aggiungere 0,05% tripsina-EDTA (300 ml per pozzetto) e lasciare la piastra nell&#39;incubatore per 5-10 min. </li><li> Aggiungere 2 ml di terreno MBMEC a ciascun pozzetto per arrestaretripsinizzazione. Trasferire le cellule raccolte in una provetta da 15 ml centrifugazione e centrifugare a 700 xg per 8 minuti a 4 ° C. Eliminare il surnatante e risospendere le cellule in 1 ml di terreno MBMEC senza puromicina. </li><li> Contare le cellule; mescolare 10 ml di sospensione cellulare con 90 ml di 0,04% Trypan Blue (10x diluizione delle cellule). Pipettare 10 ml di questo mix tra la copertura in vetro e la camera di conteggio delle cellule (emocitometro). Contare le cellule blu-libere Trypan nei quattro quadranti della camera (N) e determinare il numero medio di cellule contate (N &#39;) come segue: N&#39; = N / 4. </li><li> Calcolare la concentrazione cellulare (10 6 cellule / ml), utilizzando la seguente formula: C = N &#39;x 10 4 x 10, dove 10 4 è dato dalle dimensioni del emocitometro e 10 è il fattore di diluizione dal punto 2.4. </li><li> Seed 2 x 10 4 cellule in un volume di 260 microlitri per inserto. Aggiungere 810 pl di mezzo MBMEC al vano inferiore di ogni pozzetto. Posizionare la piastra con inserti in incubatrice fino al momento di procedere con la sezione 4. NOTA: I volumi per il vano superiore e inferiore sono specifici di inserimento e non funzionano per tutti i formati da 24 pozzetti. </li></ol> 3. CD4 + T cellule Isolamento e stimolazione <ol><li> L&#39;isolamento delle cellule T CD4 + <ol><li> Sacrificare un topo adulto (6-8 settimane) da CO 2 inalazione e confermare la sua morte per accertare arresto cardiaco e respiratorio. </li><li> Posizionare il mouse sul dorso su una tavola di dissezione pulito e risciacquare con etanolo al 70%; usare le forbici e pinze sterili per aprire il peritoneo e rimuovere i milza e nei linfonodi inguinali (, ascellare, brachiale e cervicale); infine, trasferire il tessuto in una provetta da 15 ml centrifugazione contenente 5 ml di PBS in ghiaccio. </li><li> Sotto la cappa a flusso laminare, trasferire il tessuto per decantazione PBS con il tessuto in un tubo di centrifugazione 50 ml con un filtro 70 micron cella sopra; omogeneizzareil tessuto premendo con un pistone 1 ml attraverso il filtro. </li><li> Aggiungere 30 ml di tampone FACS e centrifugare a 500 xg per 5 minuti a 4 ° C. Eliminare il surnatante e risospendere le cellule in 10 ml di tampone FACS. Filtrare la sospensione attraverso un filtro cella 40 micron, aggiungere altri 20 ml di tampone FACS al tubo. </li><li> Centrifugare a 500 xg per 5 minuti a 4 ° C. Eliminare il surnatante e risospendere le cellule in 500 ml di tampone FACS. </li><li> Aggiungere 20 ml di microsfere magnetiche topo CD4, mescolare bene e incubare per 15 minuti a 4 ° C. Aggiungere 25 ml di tampone FACS e centrifugare a 500 xg per 5 minuti a 4 ° C. </li><li> Nel frattempo, posizionare una colonna di separazione LS nel magnete e sciacquarlo con 3 ml di tampone FACS. Eliminare il surnatante e risospendere le cellule in 3 ml di tampone FACS. </li><li> Aggiungere cellule alla colonna. Lavare la colonna con 3 ml di tampone FACS per tre volte. Rimuovere la colonna dal magnete e posizionarlo su un nuovo 15 ml Centritubo fugation. Aggiungere 5 ml di tampone FACS, scovare le cellule marcate con lo stantuffo della colonna e centrifugare è a 500 xg per 5 minuti a 4 ° C. </li><li> Eliminare il surnatante e risospendere le cellule in 3 ml di terreno delle cellule T. Contare le cellule come descritto in 2.4 e sementi 1 x 10 5 cellule in 100 microlitri di terreno per pozzetto. </li></ol></li><li> T CD4 + cellule Stimolazione <ol><li> La stimolazione delle cellule T CD4 policlonale + <ol><li> Pre-coat una piastra a 96 pozzetti a fondo rotondo con purificato anticorpo anti-topo CD3 (clone 145-2C11) in PBS ad una concentrazione finale desiderata. Ad esempio, per pre-coat il piatto pieno con α-CD3 a 1 mg / ml, mescolare 10 ml di anticorpi (magazzino di concentramento = 0,5 mg / ml) con 5 ml di PBS, vortice e aggiungere 50 ml di mix di ogni pozzetto con una pipetta multicanale. </li><li> Lasciare la piastra nell&#39;incubatore per 3 ore. Dopo isolare le cellule T, lavare la piastra pre-rivestita due volte con PBS. Aggiungere purificato anticorpo anti-CD28 (clone37.51) alle cellule T isolate ad una concentrazione finale desiderata (ad esempio, a 1 mg / ml); mescolare bene. Seme le cellule T e lasciarli in incubatrice per due o tre giorni. </li></ol></li><li> La stimolazione delle cellule T CD4 + antigene-specifiche con le cellule dendritiche (DC) NOTA: se le DC sono utilizzati come cellule presentanti l&#39;antigene (APC), seguire il protocollo per l&#39;isolamento delle cellule T, con le seguenti eccezioni: <ol><li> Prima di omogeneizzare la milza, iniettarla con 1 ml di Collagenasi tipo IA in PBS a 0,5 mg / ml e trasferirlo ad un tubo di centrifugazione 15 ml. </li><li> Incubare a bagnomaria a 37 ° C per 15 min. Dopo il lavaggio con PBS, risospendere il pellet in tampone FACS e aggiungere 20 ml di microsfere magnetiche del mouse CD11c, invece di microsfere CD4. </li><li> Utilizzare una colonna di separazione MS ei volumi appropriati: lavare la colonna con 1 ml di tampone FACS; Risospendere le cellule in 1 ml di tampone FACS e lavare la colonna con 1 ml di FACS buffer di tre volte. </li><li> Anno Dominid antigene di scelta ai PVS (ad esempio, la mielina oligodendrociti glicoproteina (MOG) aa 35-55 a 20 mg / ml), mescolare bene e di semi di 5 x 10 4 cellule in 100 ml di terreno di coltura delle cellule T a 96-round-bottom bene. </li><li> Aggiungere 1 x 10 5 cellule T in 100 ml di mezzo di coltura cellulare T per 96-round-bottom-bene alla fine, come descritto nel protocollo per T isolamento delle cellule. </li></ol></li><li> La stimolazione delle cellule T CD4 + antigene-specifiche con le cellule B NOTA: se le cellule B sono usati come APC, seguire il protocollo per l&#39;isolamento delle cellule T, con le seguenti eccezioni: <ol><li> Utilizzare la milza di topi transgenici le cui cellule B sono l&#39;antigene-specifica (ad esempio, IgH MOG (Th) i topi, le cui cellule B specificamente riconoscere MOG 35-55). </li><li> Utilizzare cellule T antigene-specifiche (ad esempio, da TCR MOG (2D2) topi). Aggiungere 20 ml di microsfere magnetiche topo CD19 invece di microsfere CD4. </li><li> Aggiungere l&#39;antigene di scelta al cel BLS (ad esempio, MOG 35-55 a 20 mg / ml), mescolare bene e di semi di 5 x 10 4 cellule in 100 ml di B mezzo di coltura cellulare per 96-round-bottom-bene. </li><li> Aggiungere 1 x 10 5 T cellule in 100 ml di terreno di coltura delle cellule T per 96-round-bottom-bene, come descritto nel protocollo per l&#39;isolamento delle cellule T. </li></ol></li></ol></li></ol> 4. Configurazione ed esecuzione di misura TEER <ol><li> Posizionare il modulo 24 pozzetti dello strumento TEER sotto cappa a flusso laminare. Togliere i coperchi e luogo inserti con MBMECs nello strumento con pinze. </li><li> Pipettare 810 ml di mezzo fresco al vano inferiore dei pozzetti modulo: inserirlo attenzione tra l&#39;inserto e la parete del modulo bene. </li><li> Chiudere i coperchi e posizionare lo strumento in incubatrice. Collegare lo strumento al suo calcolatore; accendere il controllore strumento e aprire il software. </li><li> Seleziona &#39;nuova misura&#39; nella finestra pop-up. Check &#39;show TEER&#39; e scatole di &#39;show Ccl&#39;; quindi premere &#39;start&#39;. Dopo aver completato la prima misurazione, selezionare &#39;controllare tutti i pozzetti&#39; nella scheda &#39;risultati&#39; per vedere tutti i valori Teer e CCL. </li><li> Salvare il file: File&gt; Salva con nome&gt; &#39;il nome del file&#39;. NOTA: Come TEER e Ccl sono continuamente misurati in modo automatico, monitorare i loro valori per un periodo di tre-cinque giorni. Cambiando il mezzo non è necessario, a meno vitalità cellulare è ottimale, come visualizzato dalla mancanza di aumento TEER. </li><li> Scegliere il punto di tempo di co-coltura con cellule T MBMECs quando Ccl è stabile e inferiore a 1 mF / cm 2 e TEER ha raggiunto il livello massimo. </li><li> Ispezionare con cura valori assoluti Teer e CCL ed escludere i pozzi in cui MBMECs non hanno sviluppato confluenti abbastanza monostrati deselezionando tali pozzi. </li><li> Gruppo il resto dei pozzi: tasto destro del mouse su un pozzo e selezionare &#39;aggiungere ben al nuovo pozzo media&#39;. Namvia e nella finestra pop-up; fare lo stesso per tutti i singoli pozzetti da raggruppare. </li><li> Controllare tutti i pozzetti medi per confermare che tutti hanno le stesse condizioni iniziali prima della co-coltura. Se alcuni hanno significativamente diversi valori assoluti TEER o TEER piste, o gli errori standard sono troppo grandi, rifare il raggruppamento. NOTA: Il raggruppamento ottimale dei pozzi fornisce minima variazione nei valori Teer, sia all&#39;interno che tra i gruppi sperimentali. </li><li> Nella scheda &#39;esperimento&#39;, premere &#39;pausa&#39;, scollegare lo strumento e portarlo fuori dell&#39;incubatore. Rimuovere i coperchi sotto cappa a flusso laminare. </li><li> Preparare pre-attivato e / o di cellule T naive, con o senza specifiche citochine, anticorpi o altre sostanze, se lo desideri: Per esempio: Mix purificato NA / Le Rat anticorpi anti-topo IFN-γ (XGM1.2 clone) con preparato T cellule, a 20 ug / ml per pozzetto dello strumento TEER. NOTA: Se si utilizzano sostanze come inibitore granzima B, sono undded di coltura cellulare T all&#39;inizio di stimolazione delle cellule T: ad esempio, Granzyme B Inhibitor II (Calbiochem) viene mescolato con le cellule T isolate ad una concentrazione finale di 10 mM in DMSO. Vedi Materiali e attrezzature per maggiori dettagli. </li><li> Rimuovere alcuni del mezzo dall&#39;inserto (vano ben superiore): per esempio, con attenzione pipetta fuori 150 ml (rimuovendo tutto il supporto deve essere evitata in quanto potrebbe disturbare il monostrato MBMEC). </li><li> Aggiungere cellule T di MBMECs pipettando con cautela 150 ml di mezzo contenente 2 x 10 5 cellule / inserto. NOTA: quando la raccolta delle cellule pre-attivate T, contare solo brillamento, le cellule Trypan Blue-free. </li><li> Chiudere i coperchi e posizionare lo strumento per l&#39;incubatore. Ricollegare lo strumento e premere &#39;la misura di ripresa&#39;. Dopo 24 ore, premere il tasto &#39;stop&#39; nella scheda &#39;esperimento&#39; e salvare il file (File&gt; Salva). </li></ol> 5. Esporta dati e l&#39;analisi statistica <ol><li>Esportare i risultati scegliendo File&gt; Esporta. </li><li> Nella scheda &quot;Impostazioni&quot; della finestra pop-up, selezionare &quot;dot&quot; nell&#39;opzione &quot;separatore decimale&quot; e &quot;tabulatore&quot; nell&#39;opzione &quot;campo delimitatore&quot;. </li><li> Nella scheda &quot;risultati di esportazione&quot;, il nome del file, controllare tutti i pozzi da esportare, e selezionare le caselle &quot;Ccl&quot; &quot;TEER&quot; e l&#39;opzione &quot;scegliere i dati&quot;. </li><li> Premere il tasto &quot;i dati di esportazione&quot;, aprire il file esportato, e copiare i dati in un foglio di calcolo. </li><li> Normalizzare i dati esportati (ordinati per ogni replica, con Teer e CCL valori dati per ogni ciclo (di misura)): i valori Set Teer e CCL dell&#39;ultimo punto di tempo prima che il co-coltura al 100% e modificare di conseguenza i valori per tutti gli altri piste, relative al periodo &#39;100%&#39;. </li><li> Copiare dati normalizzati ad un software di scelta per generare un grafico, utilizzando singoli pozzetti e visualizzando l&#39;errore standard della media per ciascun gruppo di trattamento. </li><li> Perfo rm a due vie test statistico ANOVA con una correzione di Bonferroni per confronti multipli, utilizzando il software statistico di scelta. </li></ol>

I. Kuzmanov, A. M. Herrmann, S.G. Meuth, H. Wiendl e L. Klotz non hanno nulla da rivelare. H.-J. Galla è consulente scientifico di nanoAnalytics GmbH, il produttore del monitor cellulare automatizzato.

Diverse fasi del protocollo descritto sono essenziali per un esperimento riuscito. Durante l&#39;isolamento MBMEC iniziale e cultura, è essenziale che il lavoro viene effettuato in condizioni sterili per quanto possibile, per evitare la contaminazione della coltura cellulare con spore fungine o batteri. Per ottenere una coltura pura di EC, si raccomanda di utilizzare un supporto contenente puromicina per i primi tre giorni, che consente la sopravvivenza di cellule endoteliali, ma non altri tipi di cellule (in particolar...

La barriera emato-encefalica separa la circolazione sistemica del sistema nervoso centrale (CNS) 1 - 3. Esso fornisce una barriera fisica che inibisce la libera circolazione delle cellule e la diffusione delle molecole idrosolubili e protegge il cervello da agenti patogeni e sostanze potenzialmente nocive. Oltre alla sua funzione di barriera, la BBB consente la fornitura di ossigeno e nutrienti al parenchima cerebrale, che garantisce il corretto funzionamento del tessuto neuronale. Proprietà funzionali del BBB sono altamente regolamentati dai suoi componenti cellulari e acellulari, con EC altamente specializzato essendo il suo elemento strutturale principale. EC della BBB sono caratterizzati dalla presenza di giunzioni strette (TJ) complessi, la mancanza di finestrature, estremamente bassa attività pinocytic, e meccanismi di trasporto permanentemente attivi. Altri componenti della BBB membrana basale CE, periciti incorporamento l&#39;endotelio, i piedi di fascia astrocitari e = par associatienchymal membrana basale contribuiscono allo sviluppo, la manutenzione e la funzione della BBB 2,4 - 6 e, insieme con i neuroni e microglia, formano l&#39;unità neurovascolare (NVU), che permette il corretto funzionamento del CNS 7 - 9. In una varietà di malattie neurologiche, come neurodegenerative, malattie infiammatorie o infettive, la funzione della BBB è compromessa 2,5,10. Disregolazione di TJ complessi e meccanismi di trasporto molecolari porta ad un aumento della permeabilità BBB, leucociti stravaso, infiammazione e danno neuronale. Al fine di studiare le proprietà di BBB in tali condizioni fisiopatologiche, vari modelli BBB in vitro sono stati stabiliti 9,11,12. Insieme hanno fornito preziose informazioni sui cambiamenti di integrità della barriera, la permeabilità così come meccanismi di trasporto. Questi modelli utilizzano cellule endoteliali di umano, topo, ratto, suina o bovina 13 - 18; cellule endoteliali primarie o linee cellulari sono coltivate sia come monocoltura o insieme con periciti e / o astrociti in modo da imitare più da vicino la BBB in vivo 19 SpA - 25. Negli ultimi anni, la misurazione della resistenza elettrica transendoteliale (TEER) è diventato uno strumento ampiamente accettata per valutare le proprietà barriera endoteliale 26,27. TEER riflette l&#39;impedenza al flusso di ioni attraverso il monostrato cellulare e la sua diminuzione fornisce una misura sensibile compromissione dell&#39;integrità barriera endoteliale e quindi aumento della permeabilità. Sono stati sviluppati diversi sistemi di misurazione Teer, tra cui epiteliale Voltohmmeter (Evom), Cell-substrato elettrico impedenza di rivelazione (ECIS), e l&#39;analisi delle cellule in tempo reale 15,28 - 30. TEER riflette la resistenza al flusso di ioni tra EC adiacenti (percorso paracellulare) ed è direttamente proporzionale allaintegrità della barriera. In spettroscopia di impedenza 27,31, impedenza totale complesso (Z) è misurata, che fornisce ulteriori informazioni sulla integrità della barriera misurando Ccl. Ccl riferisce alla corrente capacitiva attraverso la membrana cellulare (percorso transcellulare): lo strato di cellule agisce come un condensatore nel circuito elettrico equivalente, separando le cariche su entrambi i lati della membrana ed è inversamente proporzionale alla integrità della barriera. Quando coltivate su inserti permeabili, EC aderire, proliferano e si sviluppa su la membrana microporosa. Questa resiste alla corrente capacitiva sfondo dell&#39;inserto (che si comporta come un condensatore) e porta ad una diminuzione della capacità fino a raggiungere il livello minimo. Questo è seguito dalla istituzione di TJ complessi che sigillare lo spazio tra EC adiacenti. Questo limita il flusso di ioni attraverso il percorso paracellulare, e TEER aumenta fino a raggiungere il plateau. In condizioni infiammatorie, tuttavia, il endotheliAl barriera è compromessa: TEER diminuisce come complessi TJ ottenere perturbato e Ccl aumenta la componente capacitiva dell&#39;inserto sale nuovamente. La nostra misura TEER utilizza il sistema automatizzato di monitoraggio cella 32: segue il principio della spettroscopia di impedenza ed estende le sue applicazioni precedenti. Qui, descriviamo un modello in vitro BBB che consente lo studio delle proprietà barriera, compresa l&#39;interazione di endotelio cervello con cellule immunitarie; in particolare le cellule T attivate. Tali condizioni fisiopatologiche sono osservate nelle malattie autoimmuni del sistema nervoso centrale, come la sclerosi multipla e il suo modello animale encefalomielite autoimmune sperimentale 33-37. Qui, un passo fondamentale è la trasmigrazione delle cellule T specifiche per mielina encefalitogenici in tutto il BBB. Questo è seguito dal loro riattivazione nello spazio perivascolare e l&#39;ingresso nel parenchima cerebrale, ove reclutano altre cellule immunitarie e mediato infiammazione e conseguente demielinizzazione 1,35,38. Tuttavia, i meccanismi molecolari dell&#39;interazione tra tali cellule T e le cellule endoteliali, i costituenti principali della BBB, non sono ben compresi. Il nostro protocollo ha lo scopo di colmare questa lacuna e dare nuove intuizioni le conseguenze sulle cellule endoteliali (vale a dire, l&#39;integrità barriera e permeabilità), al loro contatto diretto e complessa interazione con le cellule T attivate. Il protocollo qui descritto fa uso di cellule endoteliali microvascolari cerebrali di topo primaria, coltivate come un monostrato su inserti permeabili con membrane microporose. Le cellule endoteliali sono co-coltura con cellule T CD4 +, che può essere pre-attivati sia policlonale o in maniera antigene-specifica. Co-cultura MBMECs con cellule pre-attivate, ma non naive T induce una diminuzione TEER e un aumento Ccl, che fornisce una misura quantitativa della MBMEC erettile e barriera interruzione. La tecnicanon è invasivo: utilizza built-in, invece di elettrodi bacchette, che impediscono principali disturbi del monostrato CE; esso può essere utilizzato per monitorare funzione barriera senza l&#39;uso di marcatori cellulari. Rende misurazioni continue in modo automatico e consente una valutazione indipendente dei due parametri barriera (Teer e CCL) contemporaneamente nel corso del tempo. Il metodo è anche abbastanza sensibile per distinguere tra diversi livelli di attivazione delle cellule T e gli effetti di tali cellule T su EC. Esso può essere utilizzato in una vasta gamma di saggi funzionali: diverse citochine e / o chemochine implicati in processi infiammatori possono essere aggiunti al co-coltura delle MBMECs e le cellule T; bloccanti anticorpi contro molecole di adesione cellulare su entrambi CE o parte delle cellule T possono essere utilizzati; e inibitori di marcatori di attivazione delle cellule T o delle loro proprietà citolitica possono essere aggiunti durante il priming di cellule T o la loro co-coltura con cellule endoteliali. Il saggio è utile anche per la trasmigrazione cellule Tsaggi, come può servire come un controllo di qualità dell&#39;integrità monostrato MBMEC prima dell&#39;aggiunta di cellule T. Tutto questo rende questo metodo uno strumento versatile e affidabile per studiare la BBB in vitro, con una particolare attenzione per l&#39;effetto delle cellule T attivate sull&#39;integrità monostrato CE. Questo è di particolare importanza per la comprensione dei meccanismi della perturbazione BBB nella patogenesi delle malattie autoimmuni, come la sclerosi multipla e il suo modello animale EAE, dove, le cellule T encefalitogenici autoreattive attraversare la BBB e causano infiammazione e danno neuronale.

<table><tbody><tr><td>cellZscope</td><td>nanoAnalytics GmbH</td><td>www.nanoanalytics.com</td><td>tra cui: Modulo cella a 24 pozzetti, controller, PC con software cellZscope v2.2.2&nbsp;</td></tr><tr><td>Ultracentrifuga</td><td>Thermo Scientific</td><td>www.thermoscientific.com</td><td>SORVALL RC 6+; rotore F21S-8x50y; per citometro a flusso di isolamento MBMEC</td></tr><tr><td></td><td>Beckman Coulter</td> www.beckmancoulter.com <td>per l'analisi della trasmigrazione delle cellule T</td><td></td></tr><tr><td>Software FlowJo7.6.5</td><td>Tree Star</td><td>www.flowjo.com</td><td>per l'analisi della trasmigrazione delle cellule T</td></tr><tr><td>Provette per centrifuga Oak Ridge, PC</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>3118-0050</td><td>50 ml; per l'isolamento MBMEC</td></tr><tr><td>Inserti a membrana Transwell - dimensione dei pori 0,4 & micro; m</td><td>Corning</td><td>3470</td><td>per la misura TEER come lettura principale</td></tr><tr><td>Inserti a membrana Transwell - dimensione dei pori 3 & micro; m</td><td>Corning</td><td>3472</td><td>per la misurazione TEER come controllo di qualità prima del saggio di trasmigrazione delle cellule T</td></tr><tr><td>piastra per coltura cellulare a 24 pozzetti</td><td>Greiner</td><td>650 180</td><td>a fondo piatto; per coltura MBMEC</td></tr><tr><td>piastra per coltura cellulare a 96 pozzetti</td><td>Costar</td><td>3526</td><td>a fondo tondo; per coltura cellulare immunitaria</td></tr><tr><td>Separatore QuadroMACS</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-090-976</td><td>per l'isolamento di cellule T e cellule B; supporta Colonne MACS LS</td></tr><tr><td>OctoMACS Separatore</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-109</td><td>per l'isolamento di cellule dendritiche; supporta colonne MACS MS</td></tr><tr><td>Camera di conteggio Neubauer</td><td>Marienfeld</td><td>MF-0640010</td><td>per il conteggio delle cellule</td></tr><tr><td>Filtro cellulare, 70 &; m</td><td>Corning</td><td>352350</td><td>per l'isolamento delle cellule immunitarie</td></tr><tr><td>Filtro cellulare, 40 & micro; m</td><td>Corning</td><td>352340</td><td>per l'isolamento delle cellule immunitarie</td></tr><tr><td>MACS MultiStand</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-303</td><td>per l'isolamento delle cellule immunitarie</td></tr><tr><td>Colonne di separazione MACS LS</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-401</td><td>per l'isolamento delle cellule T e delle cellule B</td></tr><tr><td>Colonne di separazione MACS MS</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-201</td><td>per l'isolamento delle cellule dendritiche</td></tr><tr><td>Microsfere CD4</td> <td>di topoMiltenyi Biotec</td><td>130-049-201</td><td>per CD4+ Isolamento delle cellule T</td></tr><tr><td>Topo CD19 MicroBeads</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-052-201</td><td>per l'isolamento delle cellule B</td></tr><tr><td>Topo CD11c MicroBeads</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-052-001</td><td>per l'isolamento delle cellule dendritiche</td></tr><tr><td>Collagene di tipo IV da placenta umana</td><td>Sigma</td><td>C5533</td><td>per soluzione di rivestimento MBMEC</td></tr><tr><td>Fibronectina da plasma bovino</td><td>Sigma</td><td>F1141-5MG</td><td>per soluzione di rivestimento MBMEC</td></tr><tr><td>Collagenasi 2 (CSL2)</td><td>Worthington</td><td>LS004176</td><td>per isolamento MBMEC</td></tr><tr><td>Collagenasi/Dispasi (C/D)</td><td>Roche</td><td>11097113001</td><td>per isolamento MBMEC</td></tr><tr><td>DNasi I</td><td>Sigma</td><td>DN25</td><td>per isolamento MBMEC</td></tr><tr><td>Siero fetale bovino (FBS)</td><td>Sigma</td><td>F7524</td><td>per isolamento MBMEC</td></tr><tr><td>Albumina sierica bovina (BSA)</td><td>Amresco</td><td>0332-100G</td><td>per isolamento MBMEC</td></tr><tr><td>Percoll</td><td>Sigma</td><td>P1644-1L</td><td>per isolamento MBMEC</td></tr><tr><td>DMEM (+ GlutaMAX)</td><td>Gibco</td><td>31966-021</td><td>per isolamento MBMEC e terreno di coltura MBMEC</td></tr><tr><td>Penicillina/streptomicina</td><td></td><td>Sigma P4333</td><td>per isolamento MBMEC e terreno di coltura MBMEC</td></tr><tr><td>tamponato con fosfato Soluzione salina (PBS)</td><td>Sigma</td><td>D8537</td><td>per MBMEC e isolamento delle cellule immunitarie</td></tr><tr><td>Eparina</td><td>Sigma</td><td>H3393</td><td>per terreno di coltura MBMEC</td></tr><tr><td>Fattore di crescita dei fibroblasti basici umani (bFGF)</td><td>PeproTech</td><td>100-18B</td><td>per terreno di coltura MBMEC</td></tr><tr><td>Puromicina</td><td>Sigma</td><td>P8833</td><td>per terreno di coltura MBMEC; solo per i primi tre giorni</td></tr><tr><td>0,05% Tripsina-EDTA</td><td>Gibco</td><td>25300-054</td><td>per la raccolta di MBMEC</td></tr><tr><td>Collagenasi Tipo IA</td><td>Sigma</td><td>C9891</td><td>per l'isolamento di cellule dendritiche</td></tr><tr><td>Soluzione di Trypan Blue, 0,4%</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15250061</td><td>per la conta cellulare</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma</td><td>E5134</td><td>per l'isolamento di cellule immunitarie</td></tr><tr><td>IMDM + 1% L-Glutammina</td><td>Gibco</td><td>21980-032</td><td>per terreno di coltura di cellule T</td></tr><tr><td>X-VIVO 15</td><td>Lonza</td><td>BE04-418Q</td><td>proteggere dalla luce; per terreno di coltura di cellule B</td></tr><tr><td>&beta;-mercaptoetanolo</td><td>Gibco</td><td>31350-010</td><td>per terreno di coltura di cellule B</td></tr><tr><td>L-Glutammina (100x Glutamax)</td><td>Gibco</td><td>35050-061</td><td>per terreno di coltura di cellule B</td></tr><tr><td>di topo MOG35&mdash; 55 peptide</td><td>Biotrend</td><td>BP0328</td><td>per l'attivazione di cellule T antigene-specifiche</td></tr><tr>,<td>CD3 di topo purificato</td><td>BioLegend</td><td>100302</td><td>clone 145-2C11; per l'attivazione di cellule T policlonali,</td></tr><tr><td>CN/LE purificato anti-topo CD28 Ab</td><td>BD Pharmingen</td><td>553294</td><td>clone 37.51; per l'attivazione di cellule T policlonali,</td></tr><tr><td>IFN murino ricombinante-&gamma;</td><td>PeproTech</td><td>315-05</td><td>per saggi di trasmigrazione di cellule T</td></tr><tr><td>TNF murino ricombinante-&alfa;</td><td>PeproTech</td><td>315-01A</td><td>per saggi di trasmigrazione di cellule T</td></tr><tr><td>N/LE anticorpo purificato con IFN-&gamma nel topo</td>, <td>BD Biosciences</td><td>554408</td><td>clone XMG1.2; concentrazione finale consigliata: 20 &micro; g/ml</td></tr><tr><td>Granzyme B Inibitore II</td><td>Calbiochem</td><td>368055</td><td>concentrazione finale raccomandata: 10 &micro; </td></tr><tr><td>M PE anticorpo CD4 anti-topo</td><td>Biolegend</td><td>116005</td><td>clone RM4-4; per l'analisi della trasmigrazione delle cellule T</td></tr></tbody></table>

un<em&gt; in vitro</em&gt; modello della barriera emato-encefalica utilizzando spettroscopia di impedenza: un focus sui t cell-endoteliale cellulare interazione

An In Vitro Model of the Blood-brain Barrier Using Impedance Spectroscopy: A Focus on T Cell-endothelial Cell Interaction

L'abbattimento della barriera emato-encefalica (BBB) è un passo fondamentale nello sviluppo di malattie autoimmuni come la sclerosi multipla (SM) e il suo modello animale di encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE). Questo processo è caratterizzato dalla trasmigrazione delle cellule T attivate attraverso le cellule endoteliali cerebrali (EC), i principali costituenti della BEE. Tuttavia, le conseguenze sulla funzione EC cerebrale in seguito all'interazione con tali cellule T sono in gran parte sconosciute. Qui descriviamo un test che consente di valutare la funzione dell'EC microvascolare cerebrale primaria di topo (MBMEC) e l'integrità della barriera durante l'interazione con le cellule T nel tempo. Il test si avvale della spettroscopia cellulare ad impedenza, un potente strumento per studiare l'integrità e la permeabilità del monostrato EC, misurando le variazioni della resistenza elettrica transendoteliale (TEER) e della capacità dello strato cellulare (Ccl). A diretto contatto con le EC, le cellule T stimolate ma non naive sono in grado di indurre una disfunzione del monostrato EC, come dimostrato da una diminuzione del TEER e da un aumento del Ccl. Il test registra le variazioni dell'integrità del monostrato EC in modo continuo e automatizzato. È abbastanza sensibile da distinguere tra diverse intensità di stimoli e livelli di attivazione delle cellule T e consente di studiare le conseguenze di una modulazione mirata dell'interazione cellula T-EC utilizzando un'ampia gamma di sostanze come anticorpi, reagenti farmacologici e citochine. La tecnica può essere utilizzata anche come controllo di qualità per l'integrità delle EC nei saggi di trasmigrazione delle cellule T in vitro. Queste applicazioni lo rendono uno strumento versatile per studiare le proprietà della BBB in condizioni fisiologiche e fisiopatologiche.

La figura 1 fornisce una panoramica generale del modello in vitro di BBB utilizzato per studiare l&#39;interazione tra cellule T e le cellule endoteliali. L&#39;esperimento consiste di tre fasi principali. Il primo passo è l&#39;isolamento di MBMECs primari da cortecce cerebrali, e la loro cultura per cinque giorni. Quando raggiungono confluenza nella piastra di coltura cellulare, MBMECs vengono tripsinizzate e reseeded su inserti permeabili, che sono successiva...

Qui, descriviamo un modello murino in vitro della barriera emato-encefalica che fa uso della spettroscopia delle cellule di impedenza, con particolare attenzione alle conseguenze sull'integrità e la permeabilità delle cellule endoteliali in seguito all'interazione con le cellule T attivate.

Un<em&gt; In Vitro</em&gt; Modello della barriera emato-encefalica Utilizzando spettroscopia di impedenza: un focus sui T Cell-endoteliale cellulare Interazione

Breakdown of the blood-brain barrier (BBB) is a critical step in the development of autoimmune diseases such as multiple sclerosis (MS) and its animal ...

L'obiettivo generale di questo esperimento è studiare le conseguenze sull'integrità e sulla permeabilità delle cellule endoteliali in seguito all'interazione con linfociti T attivati. Questo metodo contribuisce a rispondere a domande fondamentali nel campo della neuroimmunologia, ad esempio in che modo l'interazione diretta tra linfociti T e cellule endoteliali influisce sull'integrità e sulla permeabilità della barriera ematoencefalica. Il principale vantaggio di questa tecnica è che consente una valutazione automatizzata e in tempo reale della funzione della barriera a seguito della modulazione mirata dell'interazione tra linfociti T e cellule endoteliali.Le implicazioni di questa tecnica si estendono alla terapia dei disturbi autoimmuni del sistema nervoso centrale, poiché forniscono informazioni sul deterioramento della barriera ematoencefalica mediato dai linfociti T, un passaggio cruciale nella patogenesi di tali malattie. Questo metodo si concentra sulle proprietà della barriera ematoencefalica marina durante l'EAE. Tuttavia, può essere applicato anche a modelli di barriera ematoencefalica murina o umana, nonché a studi su altri disturbi autoimmuni del sistema nervoso centrale.Generalmente, le persone nuove rispetto a questo metodo potrebbero incontrare difficoltà a causa di possibili problemi legati al momento ottimale per la coltura combinata di cellule endoteliali primarie e l'attivazione dei linfociti T. Abbiamo sviluppato inizialmente questo metodo quando abbiamo intrapreso lo studio degli effetti di diversi livelli di attivazione dei linfociti T sulle proprietà della barriera ematoencefalica durante l'EAE, un modello animale della sclerosi multipla. La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale, poiché l'allestimento di colture cellulari co-abbinate di linfociti T e cellule endoteliali è difficile da apprendere, in quanto variazioni iniziali dei linfociti T tra pozzetti potrebbero portare successivamente a rappresentazioni errate dei risultati.Per iniziare questa procedura, al quinto giorno dopo l'isolamento delle MBMEC, rivestire preventivamente le inserti permeabili con 80 microlitri di soluzione di rivestimento per MBMEC per ogni inserto. Incubare a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica per tre ore. Dopo aver rimosso la soluzione di rivestimento per MBMEC dagli inserti, lavare le MBMEC aggiungendo due millilitri di PBS a temperatura ambiente in ogni pozzetto, aspirandola dopo un minuto, quindi ripetere questa procedura un'altra volta.Successivamente, aggiungere 0,05% di tripsina-EDTA in quantità di 300 microlitri per pozzetto e incubare per cinque-dieci minuti. In seguito, aggiungere due millilitri di mezzo MBMEC in ogni pozzetto per arrestare la tripsinizzazione. Quindi, trasferire le cellule raccolte in un tubo da centrifuga da 15 millilitri e centrifugare il campione a 700 × g per otto minuti a quattro gradi Celsius.Dopo otto minuti, eliminare il soprannatante e risospendere le cellule in un millilitro di mezzo MBMEC senza puromicina. Per contare le cellule, mescolare 90 microlitri di blu di tripano 0,04% con 10 microlitri di sospensione cellulare; pipettare quindi 10 microlitri della miscela tra il vetrino coprioggetto e l'emocitometro.Successivamente, seminare due volte 10 alla quarta cellule per inserto. Aggiungere 810 microlitri di mezzo MBMEC nel compartimento inferiore di ogni pozzetto e posizionare la piastra con gli inserti nell'incubatrice fino al momento della misurazione del TEER. Per stimolare le cellule T positive per CD4, rivestire in anticipo una piastra a 96 pozzetti con fondo rotondo con anticorpo anti-topo CD3 purificato a una concentrazione finale desiderata per tre ore a 37 gradi Celsius.Dopo aver isolato i linfociti T, lavare la piastra pre-ricoperta due volte con PBS. Successivamente, aggiungere l'anticorpo anti-CD28 purificato ai linfociti T isolati a una concentrazione finale desiderata e mescolare accuratamente. Quindi, coltivare i linfociti T e lasciarli a 37 gradi Celsius per due o tre giorni.Per impostare la misurazione del TEER, posizionare il modulo a 24 pozzetti dello strumento TEER all'interno della cappa a flusso laminare. Rimuovere i coperchi e inserire i supporti con MBMEC nello strumento, utilizzando pinze. Successivamente, pipettare 810 microlitri di mezzo fresco nel compartimento inferiore dei pozzetti del modulo, aggiungendoli con attenzione tra il supporto e la parete del pozzetto del modulo.Successivamente, chiudere i coperchi e posizionare lo strumento nell'incubatrice. Collegare lo strumento al computer. Quindi, accendere il controllore dello strumento e aprire il software.Nella finestra a comparsa, selezionare "Nuova misurazione", spuntare le caselle "Mostra TER" e "Mostra Ccl", quindi premere Avvia. Al termine della prima misurazione, selezionare "Seleziona tutte le pozzette" nella scheda Risultati per visualizzare tutti i valori di TEER e Ccl.Quindi, salvare il file. Successivamente, scegliere il punto temporale per effettuare la co-coltura di MBMEC con linfociti T in cui il Ccl è stabile e inferiore a un microfarad per centimetro quadrato e il TEER ha raggiunto il suo livello massimo. Esaminare attentamente i valori assoluti di TEER e Ccl ed escludere le pozzette in cui le MBMEC non hanno sviluppato monociti sufficientemente confluenti deselezionando tali pozzette.Raggruppare le restanti pozzette facendo clic con il tasto destro sulle pozzette e selezionando "aggiungi pozzetta a nuova pozzetta media". Assegnare un nome nella finestra a comparsa e ripetere l'operazione per tutte le singole pozzette da raggruppare. Quindi verificare tutte le pozzette medie per confermare che ciascuna abbia le stesse condizioni iniziali prima della coltura in co-coltura. Nella scheda dell'esperimento, premere pausa.Scollegare lo strumento ed estrarlo dall'incubatore. Successivamente, rimuovere i coperchi all'interno della cappa a flusso laminare. In seguito, rimuovere parte del mezzo dall'inserzione nel compartimento della pozzetta superiore.Aggiungere linfociti T alle MBMEC pipettando attentamente 150 microlitri di mezzo. Successivamente, ricollegare lo strumento e premere riprendi misurazione. Dopo 24 ore, premere interrompi nella scheda dell'esperimento e salvare il file.Qui sono mostrate la morfologia a fuso e la colorazione immunofluorescente di PECAM-1 e Cldn-5 a cinque giorni dall'isolamento delle MBMEC. Qui di seguito sono riportati i valori di TEER e Ccl prima e dopo il raggruppamento dei singoli pozzetti prima dell'aggiunta delle cellule T. La curva blu non viene utilizzata per l'esperimento poiché le MBMEC in questo pozzetto non hanno sviluppato un TEER elevato come negli altri pozzetti.In questo esperimento, da 35 a 55 linfociti T specifici positivi per CD4 sono stati stimolati in modo specifico per l'antigene per cinque giorni. I linfociti T naïve e le citochine proinfiammatorie, interferone gamma e TNF-alfa, sono stati utilizzati come controllo negativo e positivo, rispettivamente. In questo caso, i linfociti T sono stati stimolati con la stessa quantità di anticorpi anti-CD3 e anti-CD28 e quelli coltivati per tre giorni hanno mostrato una maggiore propensione a causare la rottura della barriera rispetto ai linfociti T coltivati solo per due giorni.I risultati mostrano che le cellule T stimolate, ma non i loro supernatanti, causano un danno sostanziale alle MBMEC, indicando che il contatto diretto tra le cellule T e le MBMEC è fondamentale per la rottura della barriera. D'altro canto, l'aggiunta dell'inibitore della granzima B due alla coltura delle cellule T ripristina in misura maggiore l'integrità delle MBMEC, evidenziando il ruolo cruciale di questa molecola citolitica nel provocare il danno alle MBMEC e il conseguente calo del TEER. Una volta padroneggiato, questo esperimento può essere completato in 12 giorni se eseguito correttamente. Durante l'esecuzione di questa procedura, è importante ricordare di scegliere il punto temporale corretto per impostare la co-coltura di cellule T e cellule endoteliali.Una volta seguita questa procedura, possono essere utilizzati altri saggi, come la microscopia a immunofluorescenza, la citometria a flusso e i saggi probabilistici. Per affrontare ulteriori domande, come: In che modo questa interazione influisce sull'espressione delle molecole delle giunzioni strette, sulla permeabilità e sul grado di trasmigrazione dei linfociti T? Dopo il suo sviluppo, questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo della neuroimmunologia per esplorare i disturbi autoimmuni del sistema nervoso centrale nei topi.Dopo aver visto questo video, dovresti avere un'idea chiara di come valutare gli effetti diretti tra linfociti T attivati e cellule endoteliali in relazione all'integrità e alla permeabilità della barriera ematoencefalica.

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JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia e Infezioni

Questo video mostra un metodo per valutare la resistenza elettrica transendoteliale (TEER) nelle cellule endoteliali microvascolari cerebrali di topo in vitro. Un valore TEER elevato indica giunzioni di cellule endoteliali intatte, mentre l'aggiunta di cellule T attivate abbassa il valore TEER, riflettendo la rottura della barriera giunzionale.

Valutazione della resistenza elettrica transendoteliale in un modello di barriera emato-encefalica in vitro

Questo video mostra un modello in vitro per studiare i patogeni che attraversano la barriera emato-encefalica (BEE). Le cellule endoteliali microvascolari, che esprimono giunzioni strette, formano uno strato endoteliale nella camera superiore, mentre i neuroni, gli astrociti e la microglia rappresentano il parenchima cerebrale nella camera inferiore, separati da una membrana porosa. L'infezione virale nel modello BBB imita l'agente patogeno che passa dal sangue al cervello. Dopo l'introduzione...

Un modello in vitro per lo studio dell'attraversamento patogeno della barriera emato-encefalica e dell'infezione delle cellule cerebrali

Istituzione di modelli umani della barriera emato-encefalica (BBB) ​​può beneficiare la ricerca sulle condizioni del cervello connesse con il fallimento BBB. Descriviamo qui una tecnica migliorata per la preparazione di un modello BBB contatto, che consente coculturing di astrociti e cellule endoteliali cervello sui lati opposti di una membrana porosa.

Migliorata metodo per la preparazione di un cell-based, Contact modello umano della barriera sanguigna del cervello

Lo scopo di questo studio era di convalidare la riproducibilità di un modello in vitro BBB coinvolge un singenici ratto co-coltura delle cellule endoteliali e astrociti. Il monostrato di cellule endoteliali presentato TEER alta e bassa permeabilità LY. Espressione di proteine ​​TJ specifici, sono state valutate le risposte funzionali ai infiammazione e la funzionalità dei trasportatori e recettori.

Istituzione di un<em&gt; In Vitro</em&gt; Modello di Rat barriera emato-encefalica (BBB): A Focus on BBB impermeabilità e Trasporti recettore-mediata

Qui, descriviamo un modello di barriera emato-encefalica umana che consente di studiare la trasmigrazione dei linfociti nel sistema nervoso centrale in vitro.

L&#39;analisi dei linfociti stravaso utilizzo di un<em&gt; In Vitro</em&gt; Modello del Sangue-Cervello umano Barriera

L'obiettivo del protocollo è di presentare una procedura ottimizzata per la creazione di un modello in vitro barriera ematomeningea (BBB) basato sulle cellule endoteliali cerebrali primari porcina (pBECs). Il modello mostra un'elevata riproducibilità, alta tenuta ed è adatto per studi di trasporto e traffico intracellulare nella scoperta della droga.

Migliorato il metodo per la creazione di un In Vitro barriera emato - encefalica modello basato sulle cellule endoteliali Porcine cervello

Questo protocollo descrive un metodo per stabilire un modello umano di barriera emato-encefalica (BBB) in vitro . Le cellule endoteliali e i periciti sono seminati su ciascun lato di un filtro inserto (compartimento sanguigno) e gli astrociti sono seminati nel pozzetto inferiore (compartimento cerebrale). Il modello caratterizzato è stato utilizzato per esperimenti di trasporto di nanoparticelle.

Un sistema di cellule a tripla coltura che modella la barriera emato-encefalica umana

Questo rapporto fornisce protocolli per l'assemblaggio, la coltura cellulare e i saggi sulla piattaforma μSiM per la costruzione di modelli di barriera emato-encefalica.

Utilizzo della piattaforma tissutale barriera MicroSiM (μSiM) per la modellazione della barriera emato-encefalica

La barriera emato-encefalica (BBB) ha un ruolo cruciale nel sostenere un ambiente cerebrale stabile e sano. La disfunzione della BBB è associata a molte malattie neurologiche. Abbiamo sviluppato un modello 3D derivato da cellule staminali della BBB per studiare la patologia cerebrovascolare, l'integrità della BBB e il modo in cui la BBB viene alterata dalla genetica e dalla malattia.

Ricostruzione della barriera emato-encefalica in vitro per modellare e colpire terapeuticamente la malattia neurologica

Questo protocollo descrive un modello in vitro affidabile ed efficiente della barriera emato-encefalica. Il metodo utilizza cellule endoteliali vascolari cerebrali di topo bEnd.3 e misura la resistenza elettrica transmembrana.

Registrazione dell'integrità funzionale della barriera su cellule endoteliali vascolari bEnd.3 tramite rilevamento della resistenza elettrica transendoteliale

Qui dimostriamo la tecnica di utilizzo di biosensori basati sull'impedenza: ECIS e cellZscope, per misurare la forza della barriera endoteliale cerebrale. Descriviamo in dettaglio la preparazione e la tecnica per aggiungere vari stimoli a un modello in vitro dell'endotelio cerebrale. Misuriamo, registriamo e forniamo un'analisi rappresentativa dei risultati.

Misurazione dei cambiamenti nell'integrità della barriera endoteliale cerebrale con due biosensori basati sull'impedenza in risposta alle cellule tumorali e alle citochine

Scopri un modello in vitro murino della barriera emato-encefalica con spettroscopia di impedenza. Studia l'interazione tra cellule T attivate e endotelio per comprendere i meccanismi delle patologie neuroimmunitarie.

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