Name: Lanalisi del particolato ambientale indotto aberrazioni cromosomiche Lutilizzo di un In Vitro sistema (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 48 s
Description: Scopri come rilevare le aberrazioni cromosomiche indotte dal particolato ambientale utilizzando le cellule RAW264.7. Questo metodo permette la visualizzazione diretta dei danni al materiale genetico in vitro.

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Il lavoro è stato sostenuto, in parte, dal National Institute of Health Center of Biological Research Excellence [concessione numero 1P20GM109005], il Consorzio Arkansas spazio di Grant attraverso National Aeronautics and Space Administration [codice di autorizzazione NNX15AK32A], e l&#39;Istituto nazionale per la sicurezza e la Salute (NIOSH) [codice di autorizzazione 2T420H008436]. Gli autori desiderano ringraziare Christopher Fettes per la correzione e la modifica di questo manoscritto.

1. Raccolta e preparazione delle particelle <ol><li> La calibrazione delle particelle campionatore ad alto volume totale sospeso <ol><li> Scollegare il motore campionatore dal controllore di flusso di massa e collegare il motore ad una sorgente di alimentazione CA stabile (figura 1). Nota: Un filtro non viene utilizzato durante questa procedura. </li><li> Montare l&#39;orifizio calibratore e piastra di adattamento di carico superiore al campionatore. Serrare l&#39;adattatore di carico dadi superiori hold-down in modo sicuro per evitare perdite d&#39;aria sono presenti. Lasciare che il motore campionatore di riscaldarsi fino alla sua normale temperatura di esercizio (circa 10-15 minuti). </li><li> Eseguire un test di tenuta coprendo i fori sulla parte superiore del rubinetto dell&#39;orifizio e la pressione sul foro con le mani. Ascoltate per un suono acuto stridio fatta da fuoriuscita dell&#39;aria. Se si sente questo suono, serra nuovamente le adattatori di carico dadi superiori hold-down come è presente una perdita. Se il suono è bassa, la perdita è vicino ad una delle altre guarnizioni in sysTEM. </li><li> Collegate un lato di un manometro ad acqua al rubinetto pressione sul lato del foro con un tubo a vuoto di gomma. Lasciare il lato opposto del manometro aperto all&#39;atmosfera. Tenere un manometro in verticale per garantire letture precise. Toccando retro del registratore flusso continuo contribuirà a centrare la penna e fornire letture precise. </li><li> Ripetere il passaggio 1.1.2 utilizzando cinque portate che rappresentano le portate che operano da 30 a 60 ft / min (circa ogni 5-6 ft 3 / min). Regolare la manopola sul orifizio variabile a cinque diverse posizioni e prendere cinque letture diverse. </li><li> Registrare la temperatura ambientale dell&#39;aria, pressione barometrica ambiente, numero di serie campionatore, numero di serie orifizio, pendenza orifizio e intercetta con ultima data di certificazione, la data, il luogo del sito, e le iniziali dell&#39;operatore sul foglio di calibrazione. </li></ol></li><li> Totale raccolta particelle del campione in sospensione e analisi gravimetrica <ol><li> avvolgere un8 filtri in fibra di quarzo &quot;x 10&quot; in due strati di fogli di alluminio. Posizionare il filtro avvolta nel forno e impostare la temperatura a 550 ° C. Cuocere il filtro per almeno 4 ore. Lasciare raffreddare il forno e recuperare il filtro. Posizionare il filtro in un essiccatore con CaCO3. </li><li> Pesare il filtro in una microbilancia con precisione di 10 mg. Ripetere la misurazione per tre volte nel corso di una giornata. misurazioni individuali devono essere all&#39;interno di 25 mcg. Se questo non è raggiunto, restituire il filtro avvolto in un essiccatore e ripetere il processo il giorno seguente. </li><li> Aprire il coperchio riparo (Figura 2). Rimuovere il filtro telaio titolare allentando i quattro dadi ad alette, consentendo i bulloni in ottone e rondelle ad oscillare verso il basso fuori strada. Aprire il filtro dal foglio di alluminio, e utilizzare pinze puliti per centrare attentamente, parte più ruvida up, sullo schermo di supporto. Allineare correttamente il filtro sullo schermo. </li><li> Posizionare la cornice dello schermo e fissarlo coni bulloni ottone e rondelle applicando pressione sufficiente a evitare perdite d&#39;aria ai bordi. Pulire ogni accumulo di polvere provenienti da tutto il supporto del filtro con un panno pulito. Chiudere il coperchio riparo con cura e fissarlo. </li><li> Assicurarsi che tutti i cavi siano collegati a loro appropriate prese recipiente e il tubo tra la presa di pressione motore del ventilatore e il registratore flusso continuo è collegato. </li><li> Preparare il registratore di flusso. Premere penna braccio sollevatore per sollevare punto di penna e inserire un nuovo grafico. Allineare la scheda del grafico per il mozzo del registratore e premere con il pollice per abbassare il centro grafico sul mozzo. Imposta ora facendo ruotare il mozzo in senso orario fino al momento corretto sul grafico è allineato con il puntatore indice temporale. </li><li> passare manualmente sul campionatore e iniziare la raccolta. Monitorare il registratore per assicurarsi che sia correttamente inchiostrazione e l&#39;indicatore del tempo trascorso per essere sicuri che funzioni correttamente. </li><li> Alla fine del periodo di campionamento, spegnere il campionatore, registrareil tempo trascorso e recuperare il grafico. Rimuovere il telaio per esporre il filtro. Rimuovere il filtro esposto dalla schermata di supporto tenendolo dolcemente alle estremità con la pinza. Piegare il filtro longitudinalmente in modo che tocchi campione campione due volte e avvolgerla in un foglio di alluminio originale. </li><li> Conservare il filtro in un essiccatore con CaCO 3 per almeno 24 ore prima della pesata. Ripetere il passo 1.2.2 per misurare il peso dei filtri dopo il prelievo. Posizionare il filtro in un sacchetto di plastica con cerniera e conservarla in -80 ° C fino al momento dell&#39;analisi. </li></ol></li><li> Analisi di raccolta del campione sospesi totali di particelle <ol><li> Recupero del filtro memorizzato, aprire il foglio di alluminio e trasferire il filtro su una superficie pulita Teflon. Utilizzando pinze e bisturi, tagliare (bianco) esterno parte del filtro e smaltire. <ol><li> Quindi, tagliare il filtro in 0,5 &quot;x 0,5&quot; pezzi e pezzi in un pallone da 100 ml. Aggiungere 50 ml di acqua ultrapura. Porre il pallone in un ultrasuonobagno e ultrasuoni per 60 minuti a 33 ± 3 kHz. </li></ol></li><li> Estratto del filtro attraverso un 0,45 micron filtro in polipropilene siringa per 100 ml pallone da fondo. Evaporare l&#39;acqua usando uno strumento evaporatore rotante sotto pressione a 50 ° C fino a circa 5 ml di estratto rimane nel pallone. <ol><li> Evaporare l&#39;acqua residua in 15 ml pallone a pera di peso noto. Pesare il pallone con l&#39;estratto secco e registrare la massa dell&#39;estratto secco. </li></ol></li><li> Sciogliere il campione secco con 400 ml di D 2 O da sonicating per 15 minuti e trasferire in un tubo NMR standard di 5 mm. Centrifugare per 5 minuti a 12.000 xg a temperatura ambiente per rimuovere qualsiasi questione non disciolto. </li><li> Ripetere con 300 ml di D 2 O. Aggiungere 10 ml di NaN 3 1,4% (conc finale .: 0,02% w / v) nel tubo NMR. Aggiungere 10 microlitri (32 ug) di polveri totali sospese (TSP) -d4 (3,2 mg / ml) di D 2 O (concentrazione finale 0,258 mM) nel tubo NMR. </li><li>Acquisire 1 spettri H NMR utilizzando uno spettrometro NMR operante a 600,17 MHz. <ol><li> Inserire il tubo NMR nella cryoprobe tripla risonanza. Calibrare lo strumento nel seguente ordine: serratura, sintonia, lo spessore, la calibrazione lunghezza impulso a 90 ° e la regolazione guadagno del ricevitore. </li><li> Misurare spettri a 25 ° C con un 1 D sequenza di eccitazione scultura con 180 impulsi selettivi-acqua in modalità di rilevamento Quad digitale, 8.192 scansioni, 4 scansioni fittizi, larghezza spazzata di 8012,57 Hz, frequenza di offset per la soppressione del segnale dell&#39;acqua fissato a 4,70 ppm, 1,70 sec tempo di acquisizione, 32.768 punti di dati in tempo dominio (TD), 1 msec durata gradiente (P16), 100 msec ritardare il recupero dopo il gradiente (d16). </li></ol></li><li> Processo 1 H NMR spectra applicando un allargamento linea di 1 Hz e riempimento di zero per un fattore 2 (65.536 punti dati). Correggere la fase e linea di base manuale e integrare. Set TSP-d4 picco a 0,0 ppm. </li></ol></li></ol> Esposizione 2. particelle<ol><li> Cultura istituito <ol><li> mezzi di crescita completo caldo contenente 10% di siero fetale bovino (FBS) e la soluzione di penicillina-streptomicina (100 U / ml), soluzione di tripsina 0,25% e magnesio calcio libero tampone fosfato salino (PBS) in un bagno d&#39;acqua (a 37 ° C) per almeno 30 minuti prima dell&#39;inizio della cultura. </li><li> Estrarre un pallone T75 dal 5% di CO 2 incubatore contenente cellule in coltura RAW264.7 e lavare le cellule con 2 ml di pre-riscaldato PBS due volte. </li><li> Staccare le cellule aderenti RAW264.7 dal fondo del recipiente di coltura tissutale con 1 ml di soluzione di pre-riscaldato tripsina seguite da raschiare. </li><li> Raccogliere le cellule dal recipiente di coltura tissutale e fare una sospensione singola cella pipettando ripetutamente. Contare il numero di cellule con trypan blu e la piastra ad una densità di 8.000 / cm 2 (500.000 cellule totali) in un tessuto coltura piatto 100 mm con supporti completa pre-riscaldato. Regolare volume di supporto a 10 ml per una concentrazione finale di 50.000 celluleper ml. NOTA: il doppio del numero di piastre se viene eseguita anche l&#39;analisi della metilazione del DNA. </li><li> Mettere le cellule RAW264.7 recente placcato indietro nel 5% di CO 2 incubatore a 37 ° C e permettono di collegare per 24 ore. </li><li> Anche in un armadio biosicurezza, risospendere le particelle filtrate. Ad esempio, diluire particelle ad una concentrazione di 0,5 mg / ml in PBS sterile per una dose di trattamento 5 ug / ml e 5 mg / ml per una dose di trattamento 50 ug / ml. Le diluizioni possono essere preparate fino a mese in anticipo e conservati a -80 ° C. </li></ol></li><li> Il trattamento con particolato <ol><li> Estrarre le cellule dal 5% di CO 2 incubatore e visualizzate a 10 ingrandimenti utilizzando un microscopio invertito per la crescita cellulare, la morfologia delle cellule, la condizione della cultura, e la contaminazione. Si dovrebbe aspettare di avere almeno il 30% di cellule confluenti in questa fase. </li><li> Asetticamente, aspirare i media con una pipetta sterile e lavare il recipiente di coltura con 2 ml 37 ° C PBSdue volte per rimuovere completamente i mezzi di comunicazione e le cellule galleggianti o morti. </li><li> Aggiungere dosaggio predeterminato di particolato con mezzi freschi nei recipienti di coltura e incubare per tempo desiderato a 37 ° C in 5% CO 2 incubatore. In questo studio, il trattamento di cellule RAW264.7 con PM per 72 ore in parallelo all&#39;esposizione utilizzato per l&#39;analisi genotossico e epigenotoxic concorrente. NOTA: La citotossicità può influire negativamente sulla qualità delle analisi citogenetica. Pertanto, saggi aggiuntivi come citotossicità, metilazione del DNA, Western blotting, o analisi di espressione genica sono tipicamente eseguite su cellule trattate. Esporre le cellule come descritto e procedere con il test specifico desiderato. Gli utenti inesperti possono anche voler includere un controllo positivo, come metansulfonato metile per testare la loro capacità di rilevare CA. </li></ol></li></ol> 3. test citogenetico <ol><li> Il trattamento di arrestare le cellule in metafase <ol><li> Scaldare il Colcemid cosìluzione (10 ug / ml) in un bagno di acqua a 37 ° C per 30 min. Pulire il coperchio con il 70% di alcool sotto un armadio biosicurezza per minimizzare il rischio di contaminazione </li><li> Rimuovere completamente i mezzi di comunicazione in modo asettico e lavare i recipienti di coltura con 2 ml di pre-riscaldato PBS due volte. </li><li> Aggiungere mezzi freschi pre-riscaldato (2 ml supporti / 10 6 celle) contenenti soluzione Colcemid (5 ml / ml) nel recipiente di coltura e incubare per 2 ore. </li></ol></li><li> la raccolta delle cellule <ol><li> soluzione tripsina caldo e PBS in un bagno d&#39;acqua mantenuto a 37 ° C per 30 min. Da questo punto in poi, non vi è alcuna necessità di mantenere condizioni asettiche. </li><li> Rimuovere completamente i media, lavare i recipienti di coltura con 2 ml 37 ° C PBS per due volte, aggiungere il volume richiesto di soluzione pre-riscaldato tripsina (di solito 2 ml per 60 millimetri piatto cultura o pallone T25 e 4 ml per piatto 100 mm o pallone T75 ), e posizionare il recipiente di coltura nel 5% CO 2 incubatore a 37 ° C per 1 min. </li><li> Take il recipiente di coltura, staccare le cellule con un raschietto, e aggiungere 10 ml di PBS per fermare l&#39;azione tripsina. </li><li> Pipetta su e giù per almeno dieci volte per fare sospensione cellulare unico e le cellule di trasferimento in un 15 ml conica tubo fondo centrifuga. </li><li> sospensione cellulare Centrifugare a 400 xg per 5 min in un&#39;oscillazione fuori centrifuga a temperatura ambiente. </li><li> Rimuovere il surnatante, rompere il pellet cellulare con lievi colpetti, aggiungere 10 ml di PBS, e di nuovo centrifugare per cinque minuti. </li></ol></li><li> Trattamento ipotonico e la fissazione <ol><li> Pre-warm 0,075 M soluzione di cloruro di potassio in un bagnomaria a 37 ° C per almeno 30 min. </li><li> Rimuovere il surnatante senza disturbare il pellet cellulare e lasciare circa 0,5 ml di PBS. </li><li> rompere delicatamente il pellet di cellule e rendere la sospensione singola cella utilizzando una pipetta P200. </li><li> Aggiungere 4 ml di soluzione di cloruro di potassio goccia pre-riscaldato a goccia agitando delicatamente. </li><li> Incubare le cellule a ipotonica psoluzione di cloruro otassium a bagnomaria C 37 ° per 20 min. </li><li> Fai la soluzione acetomethanol fresco con l&#39;aggiunta di 3 parti metanolo con acido acetico glaciale 1-parte. Tenere questo fissativo appena preparato a temperatura ambiente. </li><li> Dopo il trattamento ipotonico, aggiungere un volume uguale (4 ml) di fissativo nel tubo e mescolare delicatamente la soluzione capovolgendo la provetta. </li><li> Centrifugare a 400 xg per 5 min a temperatura ambiente, e rimuovere il surnatante. A questo aumento delle dimensioni pellet cellulare palco, diventano biancastre e più visibile. </li><li> Rimuovere il surnatante, aggiungere 4 ml di fissativo aperta e mantenerlo a temperatura ambiente per 30 min. </li><li> Centrifugare a 400 xg per 5 minuti, rimuovere il surnatante, e dare più due lavaggi con 4 ml di fissativo. </li></ol></li><li> Pulizia scivolo e preparazione diffusione metafase <ol><li> Immergere vetrini completamente in 10% di detergente liquido per 30 min. </li><li> Sciacquare i vetrini completamente in acqua fredda rubinetto aperto per 30 minuti. </li><li> Rinse vetrini tre volte con acqua distillata per rimuovere completamente il detersivo, immergere in acqua distillata, e conservare in frigorifero per uso futuro. NOTA: scivoli pulizia prima dell&#39;uso facilita uniformità di applicazione e aumenta la qualità metafase. </li><li> Goccia sospensione cellulare 10 microlitri sul vetrino bagnato freddo e lasciarlo all&#39;aria asciugare per una notte a temperatura ambiente. </li></ol></li><li> Colorazione e montaggio <ol><li> Preparare 50 ml di soluzione colorante Giemsa mescolando una parte della soluzione colorante Giemsa con una parte di PBS e versare in una vaschetta Coplin. </li><li> Immergere i vetrini nella soluzione colorante per 20 min. </li><li> Sciacquare i vetrini in acqua distillata per rimuovere l&#39;eccesso macchia e immediatamente asciugare le diapositive utilizzando un asciugacapelli. </li><li> Lasciare le diapositive a temperatura ambiente per una notte. </li><li> Applicare una sola goccia di mezzo di montaggio sul vetrino, inserire delicatamente un coprioggetto sul mezzo di montaggio, consentono il supporto di diffondere sul vetrino lentamente, e rimuovereil mezzo eccesso con un tovagliolo di carta. Lasciare che il vetrino montato ad asciugare per almeno 1 ora prima di spostare o la visualizzazione al microscopio per evitare movimenti del vetrino. Attenzione: è importante mettere il vetrino accuratamente senza formare eventuali bolle durante questa fase. L&#39;uso del calore eccessivo per rimuovere bolle non è raccomandato. </li></ol></li><li> Tipi osservazione al microscopio e di aberrazione <ol><li> Esaminare le CA strutturali in metafase si diffonde a ingrandimento 100X utilizzando un campo chiaro microscopio di buona qualità. </li><li> Segna almeno 50 a 100 metafase diffonde per ciascun gruppo di trattamento per i trattamenti che inducono un gran numero di CA. Per dimensioni dell&#39;effetto più piccoli, si consiglia l&#39;analisi di un massimo di 300 spread metafase. </li></ol></li></ol>

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Gli autori non hanno nulla da rivelare.

studio citogenetica o analisi microscopica dei numeri o strutture di cromosomi, soprattutto in spread metafase, fornisce informazioni cruciali per la prognosi, la valutazione del rischio, e il trattamento per varie malattie. E &#39;ormai ben stabilito che le anomalie citogenetiche sono collegati con la progressione e lo sviluppo di diverse malattie, compreso il cancro. Fino ad oggi, le CA sono stati trovati in tutti i principali tipi di tumore. CA può sorgere spontaneamente o da entrambi gli stimoli esterni o interni, c...

E &#39;stato stimato che l&#39;esposizione al particolato (PM) fa sì che oltre 3 milioni di morti in eccesso ogni anno, soprattutto per malattie cardiopolmonari e cancro ai polmoni 1. Infatti, PM è stata riconosciuta come cancerogena per l&#39;uomo dall&#39;Agenzia internazionale per la ricerca sul cancro (Gruppo 1), come un aumento del rischio di cancro ai polmoni con l&#39;aumento dei livelli di esposizione al PM è stato indicato 2. È interessante notare che quasi tutte le cellule tumorali porto anomalie cromosomiche numeriche e / o strutturali. Particulate carbonio organico è una variante, complessa, e la miscela eterogenea, la cui composizione e distribuzione dimensione dipende emissioni nonché trasformazioni fisiche e chimiche. Esso rappresenta 35-55% del urbana PM 2,5 di massa (PM 2,5 micron di dimensione e più piccolo) e più del 60% del fondo rurale e continentale PM 2,5 di massa 3, 4. rappresenta la frazione solubile in acqua per 30-90% di aerosol organico. Un gran numero di composti organicisono stati identificati, compresi gli idrocarburi alifatici, idrocarburi policiclici aromatici, e loro derivati ​​ossigenati e nitrati, aldeidi alifatici e alcoli, acidi grassi liberi e loro sali, acidi di-carbossilici, composti multifunzionali, proteine ​​e macromolecole umiche-like (HULIS) utilizzando metodi cromatografici accoppiato con tecniche di spettrometria di massa 5-8. Questi composti rappresentano meno del 10-20% di carbonio organico particolato, quindi la maggior parte del carbonio organico è sconosciuto 9. Prove sperimentali suggeriscono che la citotossicità, stress ossidativo, e infiammazione sono coinvolti nello sviluppo di stati patologici PM-associati. Recentemente è stato dimostrato, tuttavia, che l&#39;esposizione a PM traduce anche in un certo numero di alterazioni epigenetiche, comprese le alterazioni nella metilazione del DNA di elementi ripetitivi, sia sperimentale sistemi in vitro ed in soggetti umani 10-12. Di particolare interesse sono gli effetti dellaPM DNA satellite - maggiori e minori satelliti - che si trovano nella regione heterochromatic attorno al centromero dei cromosomi. E &#39;stato dimostrato che questi effetti possono essere persistenti per natura, in quanto possono essere rilevati per almeno 72 ore dopo l&#39;esposizione 12. Alterazioni nella metilazione del DNA, in particolare intorno centromeri, possono portare ad accumulo di trascritti di mRNA DNA satellite, l&#39;integrità cromosomica compromesso durante la divisione cellulare e, successivamente, provocare lo sviluppo di una varietà di stati patologici 13. Adattamento di approccio per l&#39;analisi citogenetica di CA come end-point di alterazioni epigenetiche causati da PM, quindi, è di grande importanza. Qui, riportiamo l&#39;approccio per il PM di raccolta e preparazione ambiente, in esposizione in vitro e analisi delle CA utilizzando il sistema murino macrofagi modello RAW264.7. I macrofagi comprendono la prima linea di difesa contro i corpi estranei inalati e, di conseguenza, tla linea cellulare serve come stabilito e il modello più utilizzato in tossicologia particelle 11, 12, 14, 15.

<table><tbody><tr><td>Campionatore di particolato totale sospeso</td><td>Tisch Environmental</td><td>TE-5170</td><td></td></tr><tr><td>Bruker Avance III spettrometro NMR&nbsp;</td><td>Software Bruker</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>TopSpin 3.5/pl2</td><td>Bruker</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>ACD/NMR Processore Edizione accademica</td><td>ACD/Labs</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>RAW264.7 macrofagi murini</td><td>ATCC ATCC</td><td>TIB-71</td><td></td></tr><tr><td>Media DMEM GlutaMAX ad alto glucosio</td><td>ThermoFisher</td><td>10569010</td><td>Warm in a 37 &deg; C bagnomaria prima dell'uso</td></tr><tr><td>Fetale Siero Bovino ThermoFisher</td><td></td><td>16000044</td><td>Warm in un 37 &deg; C bagnomaria prima dell'uso</td></tr><tr><td>Penicillina-Streptomicina (10.000 U/ml)</td><td>ThermoFisher</td><td>15140163</td><td>Warm in un 37 &deg; C bagnomaria prima dell'uso</td></tr><tr><td>Tripsina-EDTA (0,25%)</td><td>ThermoFisher</td><td>25200056</td><td>Caldo in un 37 &deg; C bagnomaria prima dell'uso</td></tr><tr><td>PBS, pH 7,4</td><td>ThermoFisher</td><td>10010049</td><td>Caldo in un 37 &deg; C bagnomaria prima dell'uso</td></tr><tr><td>KaryoMAX Colcemid Solution in PBS</td><td>ThermoFisher</td><td>15212012</td><td>Warm in a 37 &deg; C bagnomaria prima dell'uso</td></tr><tr><td>KaryoMAX cloruro di potassio soluzione</td><td>ThermoFisher</td><td>10575090</td><td>caldo in un 37 &deg; C bagnomaria prima dell'uso</td></tr><tr><td>Metanolo (HPLC)</td><td>Fisher Scientific</td><td>A452N1-19</td><td></td></tr><tr><td>Acido acetico, glaciale</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1185-500</td><td></td></tr><tr><td>Decon Contrad 70 Detergente liquido</td><td>Fisher Scientific</td><td>04-355-1</td><td></td></tr><tr><td>Wright e Wright-Giemsa Stain Solutions</td><td>Fisher Scientific</td><td>23-200733</td><td></td></tr><tr><td>Permount Mounting Medium</td><td>Fisher Scientific</td><td>SP15-100</td><td></td></tr><tr><td>Axio Imager 2</td><td>Zeiss</td><td>NA</td><td></td></tr></tbody></table>

l&#39;analisi del particolato ambientale indotto aberrazioni cromosomiche l&#39;utilizzo di un<em&gt; in vitro</em&gt; sistema

Analysis of the Ambient Particulate Matter-induced Chromosomal Aberrations Using an In Vitro System

L&#39;esposizione al particolato (PM) è una delle principali preoccupazioni di salute mondo, che può danneggiare i vari componenti cellulari, tra cui il materiale genetico nucleare. Per valutare l&#39;impatto del PM sull&#39;integrità genetica nucleare, aberrazioni cromosomiche strutturali sono segnati degli spread metafase dei macrofagi del mouse RAW264.7. PM è raccolto da aria ambiente con particelle campionatore ad alto volume totale sospeso. Il materiale raccolto viene solubilizzato e filtrato per mantenere la porzione fini idrosolubile. Le particelle si caratterizzano per la composizione chimica mediante spettroscopia di risonanza magnetica nucleare (NMR). Differenti concentrazioni di sospensione di particelle vengono aggiunti a una coltura in vitro di RAW264.7 macrofagi di topo per un tempo di esposizione di 72 ore, insieme con cellule di controllo non trattate. Alla fine dell&#39;esposizione, la coltura viene trattata con Colcemid di arrestare le cellule in metafase. Le cellule vengono quindi raccolte, trattate con soluzione ipotonica, fissato acetomethanol, dropped su vetrini e infine colorate con la soluzione Giemsa. I vetrini sono esaminati per valutare le aberrazioni strutturali cromosomiche (CA) in metafase propagarsi 1,000X ingrandimento utilizzando un microscopio in campo chiaro. 50 a 100 diffusione metafase vengono assegnati per ciascun gruppo di trattamento. Questa tecnica è adatta per la rivelazione di aberrazioni strutturali cromosomiche (CA), come ad esempio le pause cromatidio-tipo, gli scambi cromatidi-tipo, frammenti acentrici, cromosomi dicentrici e ad anello, doppie minuti, endoreduplicazione, e le traslocazioni robertsoniane in vitro dopo l&#39;esposizione a PM. Si tratta di un potente metodo per associare un endpoint citogenetica consolidata ad alterazioni epigenetiche.

Grande attenzione dovrebbe essere presa nella scelta della posizione del campionatore TSP, nonché il tempo dell&#39;anno in cui viene eseguita la raccolta. La composizione chimica e le dimensioni delle particelle possono influenzare notevolmente i risultati. Il materiale raccolto deve essere visibile contro il filtro bianco. Un normale del mouse metafase diffusione avrà 40 cromosomi acentrici. L&#39;obiettivo della tecnica è quello di dimostrare un cambiamento (o assenza) nella proporzio...

Questo protocollo descrive le tecniche per la quantificazione e la caratterizzazione delle aberrazioni cromosomiche in vitro in RAW264.7 macrofagi di topo dopo il trattamento con particolato nell&#39;aria ambiente.

L&#39;analisi del particolato ambientale indotto aberrazioni cromosomiche L&#39;utilizzo di un<em&gt; In Vitro</em&gt; sistema

Exposure to particulate matter (PM) is a major world health concern, which may damage various cellular components, including the nuclear genetic material. ...

L'obiettivo generale di questo esperimento è rilevare i danni cromosomici indotti dall'esposizione delle cellule a materiale particolato estratto dall'aria ambiente. Questo metodo può contribuire a rispondere a una domanda fondamentale nel campo del materiale particolato: l'esposizione al materiale particolato induce danni cromosomici? Il vantaggio principale di questa tecnica è che consente la visualizzazione diretta dei danni indotti nel materiale genetico.Dopo aver raccolto e analizzato le particelle secondo il protocollo descritto nel testo, effettuare l'esposizione alle particelle riscaldando il mezzo di crescita completo, la tripsina allo 0,25% e il PBS in un bagno d'acqua a 37 gradi Celsius per almeno 30 minuti prima dell'inizio della coltura. Dopo aver lavato le cellule RAW 264.7, aggiungere un millilitro della soluzione di tripsina calda alla piastra e staccare le cellule dal fondo del contenitore per colture cellulari mediante raschiamento. Successivamente, raccogliere le cellule e ottenere una sospensione di singole cellule eseguendo ripetuti passaggi con una pipetta.Con il blu di tripano, contare il numero di cellule, quindi utilizzare del mezzo completo pre-riscaldato per seminare le cellule a una densità di 8000 per centimetro quadrato in una piastra per colture cellulari da 100 millimetri. Successivamente, aggiustare il volume con mezzo completo fino a 10 millilitri per ottenere una concentrazione finale di 50.000 cellule per millilitro. Incubare le cellule a 37 gradi Celsius e 5% CO₂ per 24 ore per consentire l'attaccamento.In una cappa a sicurezza biologica, utilizzare PBS sterile per diluire le particelle filtrate a una concentrazione di 0,5 milligrammi per millilitro, per una dose di trattamento di 5 microgrammi per millilitro, e a 5 milligrammi per millilitro, per una dose di trattamento di 50 microgrammi per millilitro. Per trattare le cellule con materiale particolato, controllare le cellule in coltura al microscopio con un ingrandimento 10x per verificare la crescita cellulare, la morfologia cellulare, le condizioni di coltura e la contaminazione. A questo stadio, le cellule dovrebbero essere confluenti almeno al 30%.Utilizzando una pipetta sterile, aspirare asetticamente il mezzo e utilizzare due millilitri di PBS a 37 gradi Celsius per lavare il contenitore di coltura due volte. Aggiungere una dose predeterminata di materiale particolato con mezzo fresco e incubare le colture a 37 gradi Celsius e 5%CO2, in parallelo all'esposizione utilizzata per l'analisi concomitante di genotossicità ed epigenotossicità. Per arrestare le cellule in metafase, dopo il lavaggio aggiungere due millilitri di mezzo preriscaldato con cinque microlitri per millilitro di soluzione di colcemid al contenitore di coltura, e incubare a 37 gradi Celsius e 5%CO2 per due ore.Dopo l'incubazione, rimuovere completamente il mezzo e utilizzare PBS caldo per lavare le cellule due volte. Quindi aggiungere la soluzione di tripsina e incubare le colture a 37 gradi Celsius per un minuto. Utilizzando un raschietto per cellule, staccare le cellule e aggiungere 10 millilitri di PBS per inattivare la tripsina.Quindi aspirare e dispensare le cellule su e gi&ugrave; almeno dieci volte per ottenere una sospensione di singole cellule, e trasferire le cellule in un tubo conico da 15 millilitri per centrifuga. Posizionare i tubi in una centrifuga a braccio oscillante ed eseguire la centrifugazione della sospensione cellulare a 400 &times;g e a temperatura ambiente per cinque minuti. Per eseguire il trattamento ipotonico, rimuovere il soprannatante dai tubi senza disturbare il pellet cellulare, lasciando circa 0,5 millilitri di PBS.Rompere delicatamente il pellet cellulare e utilizzare una pipetta P200 per ottenere una sospensione monocellulare. Aggiungere quindi quattro millilitri di soluzione pre-riscaldata di cloruro di potassio, goccia a goccia, con agitazione delicata. Incubare la sospensione cellulare in un bagno d'acqua a 37 gradi celsius per 20 minuti.Dopo il trattamento ipotonico, fissare le cellule aggiungendo un volume uguale di fissativo al tubo e mescolare delicatamente capovolgendo il tubo. Centrifugare i tubi a 400 volte g a temperatura ambiente per cinque minuti ed eliminare il soprannatante. A questo stadio, il pellet cellulare sarà aumentato di dimensioni, diventando di colore biancastro e più visibile.Rimuovere il soprannatante. Aggiungere quattro millilitri di fissativo fresco e incubare i tubi a temperatura ambiente per 30 minuti. Successivamente, centrifugare i tubi, rimuovere il soprannatante e lavare le cellule altre due volte con quattro millilitri di fissativo.Immergere completamente le lamelle di vetro in detergente liquido al 10% per 30 minuti. Successivamente, risciacquare accuratamente le lamelle con acqua corrente fredda per 30 minuti. Utilizzare acqua distillata per risciacquare le lamelle tre volte, in modo da rimuovere completamente il detergente.Quindi immergerli in acqua distillata e conservare i vetrini in frigorifero per tutta la notte. Depositare dieci microlitri di sospensione cellulare su un vetrino freddo e umido, e lasciare asciugare tutta la notte a temperatura ambiente. Per colorare e montare i campioni, preparare 50 millilitri di soluzione colorante di Giemsa mescolando una parte di soluzione colorante di Giemsa con una parte di PBS, e versare in un barattolo Coplin.Immergere i vetrini nella soluzione di colorazione per 20 minuti, quindi risciacquare i vetrini in acqua distillata per rimuovere l'eccesso di colorante ed asciugarli immediatamente con un asciugacapelli. Lasciare i vetrini a temperatura ambiente per tutta la notte. La mattina seguente, applicare una singola goccia di mezzo di montaggio sul vetrino.Posizionare delicatamente un coprioggetto sulla parte superiore e lasciare che il mezzo di montaggio si diffonda lentamente sul vetrino. Successivamente, utilizzare un tovagliolo di carta per rimuovere l'eccesso di mezzo. Infine, utilizzare un microscopio a campo chiaro con un ingrandimento di 100x per esaminare le aberrazioni cromosomiche strutturali nelle metafasi espanse.Questa immagine mostra che un cariotipo normale di metafase di topo presenta 40 cromosomi acromatici. Il trattamento con materiale particolato induce diverse aberrazioni cromosomiche, come rottura del cromatidio, frammento acromatico, cromosoma ad anello, cromosoma dicentrico, minuti doppi, traslocazione robertsoniana e endoreduplicazione. Durante l'esecuzione di questa procedura, è importante ricordare che devono essere utilizzate solo cellule in proliferazione.Al termine di questa procedura, altri metodi, come M-FISH e SKY, possono essere utilizzati per rispondere a ulteriori domande, ad esempio se sono presenti aberrazioni intercromosomiche stabili. Non dimenticare le sostanze pericolose e cancerogene, né le precauzioni, come l'uso di guanti, che devono sempre essere adottate durante l'esecuzione di questa procedura.

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Genetics

Genetica

Xenopus uovo estratto è un sistema modello utile per studiare il punto di controllo danno al DNA. Questo protocollo è per la preparazione di estratti di uova di Xenopus e danno del DNA reagenti inducenti checkpoint. Queste tecniche sono adattabili ad una varietà di approcci di danneggiamento del DNA nello studio del DNA segnalazione checkpoint danni.

Studio del danno al DNA con Checkpoint<em&gt; Xenopus</em&gt; Uovo Estratti

Questo video dimostra un test altamente sensibile basato sull'immunofluorescenza per rilevare il danno ossidativo indotto da PM2,5 nel cuore di embrioni di zebrafish misurando i livelli di 8-OHdG e γH2AX, che indicano rispettivamente il danno al DNA e le rotture del DNA a doppio filamento.

Saggio di immunofluorescenza per rilevare il danno al DNA mediato da PM2,5 negli embrioni di pesce

I cromosomi possono essere isolate da cellule vive come linfociti o fibroblasti cutanei, e da organismi compresi gli esseri umani o topi. Queste preparazioni cromosomiche possono essere ulteriormente utilizzati per routine di G-banding e le procedure di citogenetica molecolare quali la ibridazione in situ fluorescente (FISH), ibridazione genomica comparativa (CGH), e cariotipo spettrale (SKY).

Cromosoma Preparazione da cellule in coltura

Percorsi di riparazione del DNA sono essenziali per il mantenimento dell'integrità genomica e prevenire la mutazione e il cancro. L'obiettivo di questo protocollo è quello di quantificare l'instabilità genomica mediante l'osservazione diretta di aberrazioni cromosomiche in metafase si diffonde dalle cellule B del mouse utilizzando ibridazione in situ fluorescente (FISH) per ripetizioni telomeriche del DNA.

Analisi rapida di aberrazioni cromosomiche in linfociti B mouse da PNA-FISH

Descriviamo le fasi dettagliate di un test chimico ad alto rendimento nel nematode Caenorhabditis elegans utilizzato per valutare la tossicità germinale. In questo test, l'interruzione della funzione germinale a seguito di esposizione chimica viene monitorata utilizzando un reporter fluorescente specifico per embrioni aneuploidi.

Valutazione completa della linea germinale Chemical Tossicità Utilizzando il nematode<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Viene presentato un protocollo per valutare i cambiamenti nei livelli di danno al DNA e nella capacità di riparazione del DNA che possono essere indotti dall'irradiazione cronica in vivo a basse dosi nei linfociti della milza di topo, misurando l'istone fosforilato H2AX, un marcatore di rotture del doppio filamento del DNA, utilizzando la citometria a flusso.

Misurazione danno al DNA e ripristina in mouse Splenociti Dopo cronica<em&gt; In Vivo</em&gt; L&#39;esposizione a dosi molto basse di beta e gamma Radiazioni

Il presente protocollo descrive l'utilità dell'ibridazione in situ a fluorescenza multipla (mFISH) e del cariotipo spettrale (SKY) nell'identificare aberrazioni stabili intercromosomiche nelle cellule del midollo osseo dei topi dopo l'esposizione all'irradiazione corporea totale.

Rilevazione di Inter-aberrazioni cromosomiche stabili per fluorescenza multipla<em&gt; In Situ</em&gt; Ibridazione (mFISH) e spettrale cariotipo (SKY) in topi irradiati

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