Name: Una procedura completa per valutare il In Vivo Prestazioni del Cancro nanomedicina (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 59 s
Description: Scopri una procedura completa per valutare le prestazioni delle nanomedicine antitumorali in vivo nei topi portatori di tumore. Questo metodo a doppia etichettatura consente la caratterizzazione da livello macroscopico a subcellulare.

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Gli autori desiderano ringraziare le dottoresse Helene Salmon e Miriam Merad della Icahn School of Medicine del Mount Sinai per aver fornito le cellule B16-F10-YFP e per la loro consulenza esperta sui modelli murini di melanoma. Gli autori ringraziano inoltre l'Animal Imaging Core Facility, la Radiochemistry and Molecular Imaging Probes Core Facility e la Molecular Cytology Core Facility presso il Memorial Sloan Kettering Cancer Center (MSK) per il loro supporto. Questo lavoro è stato sostenuto dalle sovvenzioni del National Institutes of Health NIH 1 R01 HL125703 (W.J.M.M.), R01CA155432 (W.J.M.M.), K25 EB016673 (T.R.) e P30 CA008748 (MSK Center Grant). Gli autori ringraziano anche il Center for Molecular Imaging and Nanotechnology (CMINT) di MSK per il loro sostegno finanziario (T.R.).

La procedura consiste nella etichettatura duplice radioattiva e fluorescenti di nanoparticelle, imaging in vivo PET-CT, ex vivo misure biodistribuzione, e ex vivo immunostaining e citometria a flusso analisi. Tutti gli esperimenti sugli animali sono stati approvati dal Comitato di Cura e uso istituzionale degli animali del Memorial Sloan Kettering Cancer Center. 1. Preparazione di liposomi Dual-etichettati NOTA: singenico B16 melanoma può essere indotta da iniezione di 300.000 cellule B16-F10 nei fianchi posteriori di topi C57BL / 6 sotto anestesia da inalazione di 2% di ossigeno -isoflurane contenenti. Utilizzare reagenti e strumenti sterili in un&#39;area di lavoro sterile durante l&#39;intervento chirurgico. Dopo l&#39;intervento chirurgico, osservare attentamente gli animali fino al loro recupero dall&#39;anestesia. Mettere gli animali nel loro gabbie solo quando riacquistano piena coscienza e la mobilità. li ospitare in camere sterili per animali con tumori xenotrapiantati. Tumori con una dimensionedi 300 mm 3 sono ideali per la caratterizzazione di nanoparticelle a causa delle loro pronunciate permeabilità e ritenzione effetti migliorati (EPR), che possono aumentare l&#39;accumulo di nanoparticelle. I protocolli dettagliati sono forniti di seguito. <ol><li> In un pallone a fondo tondo, dissolvere una miscela di 20 mg di lipidi in 2 mL di cloroformio contenente 1,2-dipalmitoyl- sn -glycero-3-phophocholine (DPPC), colesterolo, 1,2-disearoyl- sn -glycero- 3-fosfoetanolamina-poli (glicole etilenico) 2000 (DSPE-PEG2000), DSPE-deferoxamina (DSPE-DFO) 8, e l&#39;acido 1,1-diododecyl-3,3,3,3-tetramethylindodicarbocyanine-5,5-disolfonico ( DiIC12 [5] -ds) in rapporti molari di 61,3%, 33,4%, 5, 0,2% e 0,1% rispettivamente. NOTA: Questa composizione lipidica è molto simile alla formulazione liposomiale di doxorubicina attualmente utilizzati in clinica 2. I liposomi risultanti dalla nostra procedura sarà strettamente imitare la performance in vivo del nanomedic clinicaine. </li><li> Utilizzare un evaporatore rotante per rimuovere il solvente organico e formare un film lipidico sottile a temperatura ambiente. Aggiungere 20 ml di PBS e ultrasuoni per 30 minuti per generare nanoparticelle liposomiali utilizzando una punta sonicazione 3,8 mm e un&#39;ampiezza di 30 W, con sufficiente raffreddamento sul ghiaccio. </li><li> Centrifugare la soluzione di liposomi a 4.000 g per 10 minuti per rimuovere gli aggregati e lavare le nanoparticelle con PBS usando filtrazione centrifuga (peso molecolare di cut-off (MWCO:. 100 kDa) per rimuovere i lipidi liberi e solvente organico residuo concentrare il liposomi, che sarà rimangono nella camera superiore, e trasferirli in una nuova provetta. i liposomi possono essere memorizzati in un frigorifero in PBS fino a 1 settimana prima delle fasi successive. </li><li> Per il controllo di qualità, caratterizzare i liposomi dalla dispersione della luce dinamica (DLS). In particolare, mescolare 50 ml di liposomi con 950 ml di PBS, e poi trasferire il composto nella cuvetta dimensionamento. Posizionare la cuvetta nell&#39;analizzatore e misurare la particelladimensioni e la loro distribuzione dimensionale. Le dimensioni delle particelle e la loro distribuzione delle dimensioni (indice di polidispersità (PDI)) dovrebbero essere 90-120 nm e 0.1 - 0.2, rispettivamente. </li><li> Per radiomarcatura, miscelare i liposomi purificati, pari a 2 mg di lipidi, in PBS a pH compreso tra 6,9 e 7,1 con 1 mCi 89 Zr-ossalato a 37 ° C per 2 h in una provetta da 1,5 mL, (volume totale: ~ 100 ml). Rimuovere la libera, che non ha reagito 89 Zr mediante filtrazione centrifuga (MWCO = 100 kDa), simile al punto 1.3. Lavare il retentato con PBS sterile e diluire al volume desiderato. La resa radiochimica dovrebbe essere 80-95%. ATTENZIONE! Lavorare con materiali radioattivi è altamente regolamentato. Le istituzioni devono essere certificati e di fornire i servizi necessari, formazione del personale, e rigoroso monitoraggio dell&#39;uso della radioattività. I ricercatori hanno bisogno di ricevere una formazione adeguata e indossare dispositivi di protezione individuale e anelli dosimetria / badge durante la manipolazione di radioattività. </li><li&gt; Determinare la purezza radiochimica dei liposomi radiomarcati per dimensione esclusione radio-HPLC, che in genere dovrebbe essere superiore al 98% 10. purezze radiochimici inferiori al 95% sono indicativi di un lavaggio insufficiente nel passaggio 1.5. </li><li> Dopo radiomarcatura, determinare le dimensioni delle nanoparticelle di dispersione della luce dinamica. La dimensione e la PDI dovrebbero essere all&#39;interno dello stesso intervallo come le misure in fase 1.4 10. NOTA: Se i campioni radioattivi non sono ammessi nel citofluorimetro o microscopio a fluorescenza, NAT non radioattivo Zr-ossalato può essere usato per etichettare liposomi nella fase 1.5. Questi liposomi non radioattive hanno caratteristiche identiche a loro analoghi radioattivi. Una rappresentazione di questa procedura è fornito in Figura 2. </li></ol> 2. In Vivo PET-CT Imaging e Biodistribuzione di liposomi Dual-etichetta <ol><li> Iniettare circa 100 ml di liposomi dual-marcato Wesimo circa 300 pCi di radioattività in topi di melanoma trattenuto (C57BL / 6, di sesso femminile, 10 - 16 settimane) nelle loro vene coda, a circa 10 mCi 89 Zr / kg di peso corporeo. </li><li> Per determinare il tempo di dimezzamento, prelevare il sangue dalla vena della coda da animali anestetizzati di sotto del 2% isoflurano contenenti ossigeno utilizzando 28-G siringhe da insulina. Raccogliere il sangue (10-20 ml) in tubi pre-pesato a 2 min, 15 min, 1 h, 4 h, 8 h, 24 h, e 48 ore dopo l&#39;iniezione. Pesare il sangue per differenza, determinare il contenuto di radioattività in un contatore gamma, e calcolare la concentrazione di radioattività come percentuale della dose iniettata per grammo (% ID / g). NOTA: Eseguire la procedura in una stanza dotata di un sistema di anestesia, gabbie di recupero, riscaldamento, e un cappuccio a rischio biologico. Assicurarsi che gli animali recuperano completamente e contare su una mobilità normale dopo la procedura prima del trasferimento dalle gabbie di recupero a tenere gabbie. Casa gli animali portatori di tumore in camere apposite per gli animali somministrato conmateriali radioattivi. </li><li> 24 o 48 ore dopo l&#39;iniezione del liposomi, immagine i topi in un piccolo animale microPET-CT scanner 10. Posto l&#39;animale anestetizzato orizzontalmente sulla sua pancia e tenerlo anestetizzato. Somministrare 2% isoflurano-ossigeno attraverso un cono di naso. Applicare una pomata oftalmica per gli occhi prima della scansione per impedire loro di essiccazione. </li><li> Eseguire un corpo intero PET registrazione scansione statica di almeno 50 milioni di eventi coincidenti, con una durata approssimativa di 15 minuti. Impostare la finestra di temporizzazione energia e coincidenza a 350-700 keV e 6 ns rispettivamente. Successivamente, eseguire una scansione a 5 min tomografia computerizzata (CT). Impostare il tubo a raggi X ad una tensione di 80 kV e una corrente di 500 μA; la TAC utilizza 120 gradini di rotazione per un totale di 220 gradi, con circa 145 ms per frame 10. </li><li> Dopo la scansione PET-CT, sacrificare subito i topi di anidride carbonica per asfissia e confermare le morti per Pinching le zampe degli animali. Una volta confermata, eseguire lussazioni cervicali. </li><li> Rimuovere il sangue nei tessuti di topo dal primo Tagliando l&#39;atrio destro e poi iniettando 20 ml di PBS nel ventricolo sinistro, e successivamente raccogliere i tessuti rilevanti come tumore, fegato, milza, polmone, rene, muscolo, altri 16. </li><li> Pesare i tessuti, misurare il loro contenuto radioattività gamma contando 8, 9, e calcolare l&#39;accumulo di tessuto radioattività come percentuale della dose iniettata per g (% ID / g). </li></ol> 3. Ex Vivo Citometria a Flusso e Immunocolorazione NOTA: Iniettare circa 100 ml di liposomi fluorescenti in topi di melanoma attraverso la vena della coda alla dose di 0,5 mg di colorante per kg di peso corporeo. Se i campioni radioattivi non sono ammessi nel citofluorimetro e microscopio a fluorescenza, devono essere utilizzati liposomi non radioattivi. <ol><li> Sacrifica l&#39;iniezione dopo 24 ore i topi, come al punto 2.5, e raccogliere i tumori, che devono essere memorizzati in PBS freddo. </li><li> Per citometria a flusso, attenersi alla seguente procedura 17: <ol><li> Preparare un cocktail enzimatico costituito da una miscela di purificato collagenasi I e II (4 U / mL), ialuronidasi (60 U / mL), e DNasi I (60 U / ml) in citometria a flusso tampone (PBS con 0,5% BSA e 1 mM EDTA). </li><li> Miscelare 100 mg di tessuto tumorale con 200 ml di tampone cocktail di enzimi in una provetta da 1,5 ml e dadi tessuto a piccoli pezzi con forbici sottili. Aggiungere un altro 1,3 ml di cocktail di enzimi nel tubo e trasferire il contenuto di un 6-pozzetti. </li><li> Agitare la piastra da 6 pozzetti su un agitatore orizzontale posta all&#39;interno di un forno 37 C ° per 60 min a 60 rpm. </li><li> Lavare il tessuto omogenato con citometria a flusso buffer di 3 volte per ottenere una sospensione singola cella. </li><li> Colorare le cellule con un cocktail di anticorpi specifici per biomarcatori tra cui CD45, CD11b, Ly6C, CD11c,CD64, CD3, MHCII, e CD31 (diluizione 1: 200 per tutti gli anticorpi; informazioni clone è fornita nel foglio di calcolo dei materiali). Identificare i tipi di cellule rilevanti e determinare la loro intensità di fluorescenza media (MFI) di DiIC12 (5) -ds in ogni popolazione di cellule con un flusso adeguato di citometria software di analisi. </li></ol></li><li> Per immunostaining, attenersi alla seguente procedura: <ol><li> Mettere un tumore in una cassetta piena di medio taglio ottimale (OCT) e congelarlo in ghiaccio secco. </li><li> Fare 6-micron sezioni congelate di tessuto tumorale e metterli su vetrini istologici; sezioni dovrebbero coprire più grandi sezioni di tumore, che forniscono le informazioni più rappresentative sul tessuto. </li><li> Macchiare le biomarcatori (ad esempio, CD31 per le cellule endoteliali) di interesse con i corrispondenti anticorpi (ad esempio, anti-CD31, clone MEC13.3). Fissare le sezioni con paraformaldeide; bloccarli con siero corrispondenza dell&#39;origine delle specie degli anticorpi secondari; incubmangiato con anticorpi primari per 12 ore a 4 ° C e quindi con anticorpi secondari per 2 h; e, infine, lavare con PBS e coprire con coprioggetto. Immagine i vetrini colorati con una Leica confocale in posizione verticale SP5 microscopio 13, 16. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno alcuna divulgazione da fare.

I passaggi critici all&#39;interno del protocollo: La qualità dei liposomi dual-marcato è la chiave per produrre risultati costanti per un lungo periodo di tempo. Coloranti fluorescenti liberi o 89 ioni Zr possono generare totalmente diversi modelli di targeting e devono essere completamente rimosso durante la fase di purificazione. Inoltre, se il sistema immunitario influisce significativamente sperimentale prestazioni cancro nanomedicina, l&#39;utilizzo di modelli di topo immunocom...

Nanomedicina si sta spostando il paradigma dello sviluppo trattamento del cancro 1. Ispirato al tremendo impatto clinico di precedenti nanomedicina cancro, come liposome- e nanotherapies albumina a base di 2, 3, molte nuove formulazioni sono state prodotte negli ultimi dieci anni. Tuttavia, recenti analisi del successo di traduzione clinica di questi nanomedicina cancro indicano che solo pochi di essi sono stati approvati per l&#39;uso clinico 4, 5. Uno dei principali ostacoli alla traduzione clinica di nuovi nanomedicina cancro è la loro limitata miglioramento dell&#39;indice terapeutico rispetto alla gestione diretta dei composti terapeutici liberi 6. Come tale, la valutazione accurata delle prestazioni in vivo di nanomedicine a sistemica, tessuti, e livello cellulare in modelli animali preclinici è essenziale per identify quelli con indici terapeutici ottimali per future Traduzione clinica. I nanomateriali possono essere radioattivo per la caratterizzazione quantitativa in animali che vivono con la tomografia ad emissione di positroni (PET), che ha superba sensibilità e riproducibilità tra tutte le modalità di imaging clinico 7. Ad esempio, 89 Zr-etichettato lungo circolanti nanomedicine sono stati caratterizzati in modelli murini di cancro 8, 9, 10, così come in altri modelli di malattia 11. Inoltre, il sangue emivita e biodistribuzione delle nanomedicine possono essere valutate utilizzando ex vivo misure della radioattività in tessuti 8. Pertanto, radiomarcatura consente la valutazione quantitativa delle nanomedicine a concentrazioni sistemiche e tissutali. È importante sottolineare che, radiolabeled nanomedicine generalmente non possono essere analizzate a singola cella o livelli subcellulari causa della limitata risoluzione spaziale del segnale radioattivo. Pertanto, marcatura fluorescente rivela essere una modalità complementare per la valutazione delle nanoparticelle con tecniche di imaging ottico come citometria di flusso e microscopia a fluorescenza 12. A tal fine, le nanoparticelle marcate con radioisotopi e tag fluorescenti possono essere quantitativamente valutati in vivo mediante imaging nucleare e ex vivo mediante conteggio della radioattività, e possono anche essere ampiamente caratterizzati a livello cellulare imaging ottico. In precedenza, abbiamo sviluppato procedure modulari per incorporare etichette fluorescenti radioattive e varie nanoparticelle, tra lipoproteine ad alta densità (HDL) 11, liposomi 9, 10, nanoparticelle polimeriche, frammenti di anticorpi, e nanoemulsions 10, 13. Queste nanoparticelle etichettati hanno consentito per la caratterizzazione quantitativa in modelli animali pertinenti a diversi livelli, che hanno guidato l&#39;ottimizzazione di questi nanomateriali per le loro applicazioni specifiche. Nel corso di studio, l&#39;obiettivo è quello di utilizzare le nanoparticelle-the liposomiali piattaforma di nanomedicina più affermati 14 -come un esempio per dimostrare le procedure complete per generare una nanoparticella dual-etichettati e per caratterizzare a fondo in un classico singenici melanoma B16-F10 modello di topo 15 . Dai risultati, siamo fiduciosi questo approccio caratterizzazione di nanoparticelle può essere adattato per valutare altre nanomedicine cancro in modelli murini rilevanti.

<table><tbody><tr><td>DPPC</td><td>Avantilipids</td><td>850355</td><td></td></tr><tr><td>Colesterolo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C8667</td><td></td></tr><tr><td>DSPE-PEG2000</td><td>Avantilipids</td><td>880120P</td><td></td></tr><tr><td>DSPE-DFO</td><td>Fatto in casa</td><td>110634</td><td>Perez-Medina et al., JNM, 2014</td></tr><tr><td>DiIC12[5]-DS</td><td>AAT Bioquest</td><td>22051</td><td></td></tr><tr><td>Filtro centrifugo</td><td>Vivaproducts</td><td>VS2061</td><td></td></tr><tr><td>Evaporatore rotante</td><td>Buchi</td><td>R-100</td><td></td></tr><tr><td>Radio-HPLC</td><td>Shimadzu HPLC con 2 pompe LC-10AT</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>89Zr-ossalato</td><td>MSKCC</td><td>Sintetizzato in casa</td><td>TR19/9 ciclotrone a fascio variabile (Ebco Industries Inc.)</td></tr><tr><td>Micro PET-CT</td><td>Siemens</td><td>Inveon Micro-PET/CT</td><td></td></tr><tr><td>Contatore gamma</td><td>PerkinElmer</td><td>2470-0150</td><td></td></tr><tr><td>Citometria a flusso</td><td>BD Biosciences</td><td>Fortessa</td><td>Qualsiasi analizzatore di citometria a flusso multiparametrico sarebbe sufficiente</td></tr><tr><td>Topi C57BL/6</td><td>Jackson Laboratories</td><td></td><td></td>Cellule</tr> di <tr><td>melanoma B16-YFP</td><td>Fatto in casa</td><td>N/A</td><td>Salmone et al., Immunità, 2016</td></tr><tr><td>Ly6C (clone HK1.4)--APC-Cy7</td><td>128025</td><td>Biolegend</td><td></td></tr><tr><td>MHCII (M5/114/152)--APC</td><td>107613</td><td>Biolegend</td><td></td></tr><tr><td>CD45 (30-F11)--BV510</td><td>103137</td><td>Biolegend</td><td></td></tr><tr><td>CD64 (X54-5/7.1)--PE-Cy7</td><td></td><td>139313 Biolegend</td><td></td></tr><tr><td>CD11b (M1/70)--BV605</td><td>101237</td><td>Biolegend</td><td></td></tr><tr><td>CD3 (17A2)--BV711</td><td>100241</td><td>Biolegend</td><td></td></tr><tr><td>CD31 (13.3)--PE</td><td></td><td>561073 Biolegend</td><td></td></tr><tr><td>CD11c (M418)--PerCP-Cy5.5</td><td>117327</td><td>BD Biosciences</td><td></td></tr><tr><td>CD31 (13.3) senza fluoroforo</td><td>550274</td><td>BD Biosciences</td><td></td></tr></tbody></table>

una procedura completa per valutare il<em&gt; in vivo</em&gt; prestazioni del cancro nanomedicina

A Comprehensive Procedure to Evaluate the In Vivo Performance of Cancer Nanomedicines

Ispirato dal successo delle precedenti nanomedicina cancro nella clinica, i ricercatori hanno generato un gran numero di nuove formulazioni negli ultimi dieci anni. Tuttavia, solo un piccolo numero di nanomedicine sono stati approvati per l&#39;uso clinico, mentre la maggior parte dei nanomedicine sotto sviluppo clinico hanno prodotto risultati deludenti. Uno dei principali ostacoli alla traduzione clinica di successo di nuovi nanomedicina cancro è la mancanza di una comprensione accurata delle loro prestazioni in vivo. Questo articolo presenta una procedura rigorosa per caratterizzare il comportamento in vivo della nanomedicina in topi portatori di tumore al sistemico, tessuti, cella singola, e livelli subcellulare tramite l&#39;integrazione di emissione di positroni tomografia tomografia-computerizzata (PET-CT), metodi di radioattività di quantificazione , citometria a flusso, e microscopia a fluorescenza. Usando questo approccio, i ricercatori possono valutare con precisione le formulazioni su scala nanometrica romanzo in modelli murini pertinenti cator. Questi protocolli possono avere la capacità di identificare i nanomedicine cancro più promettenti ad alto potenziale o traslazionale per aiutare nella ottimizzazione della nanomedicine cancro per la traduzione futuro.

La Figura 1 mostra una panoramica della procedura. Figura 2 presenta la procedura di sintesi schematica dei liposomi dual-marcato descritte nel passaggio 1 10. La figura 3 mostra un rappresentante PET-CT immagine (Figura 3a), la radioattività quantificazione da immagini PET (figura 3b), il sangue emivita (Figura 3c), e biodistribuzione (figura 3d)...

La scarsa comprensione delle prestazioni in vivo delle nanomedicine ostacola la loro traduzione clinica. Qui sono descritte le procedure per valutare il comportamento in vivo dei nanofarmaci antitumorali a livello sistemico, tissutale, di singola cellula e subcellulare in topi immunocompetenti portatori di tumore. Questo approccio può aiutare i ricercatori a identificare promettenti nanofarmaci antitumorali per la traduzione clinica.

Una procedura completa per valutare il<em&gt; In Vivo</em&gt; Prestazioni del Cancro nanomedicina

Inspired by the success of previous cancer nanomedicines in the clinic, researchers have generated a large number of novel formulations in the past ...

L'obiettivo generale di questa procedura è valutare il comportamento in vivo di nanomedicinali antitumorali a livello sistemico, tissutale, cellulare singolo e subcellulare in topi immunocompetenti con tumore. Questo metodo può aiutare a rispondere a una domanda fondamentale nel campo dei nanomedicinali per il cancro: come i nanomedicinali si accumulano quantitativamente in diversi tessuti di animali vivi nel tempo?Il principale vantaggio di questa tecnica è che l'approccio di doppia marcatura consente la caratterizzazione in vivo della nanomedicina dal livello macroscopico a quello microscopico. Abbiamo scelto i liposomi come esempio per dimostrare il nostro procedimento poiché i liposomi sono attualmente utilizzati in ambito clinico e rappresentano inoltre una piattaforma comune per le nanomedicine sperimentali. Per iniziare il procedimento, sciogliere 20 milligrammi di una miscela lipidica, contenente lo 0,1% in moli di un colorante fluorescente cationico lipofilico, in due millilitri di cloroformio.Quindi, asciugare i lipidi con un evaporatore rotante. Aggiungere 20 millilitri di soluzione salina fosfato ai lipidi essiccati. Sottoporre la miscela a sonicazione in ghiaccio con un sonicatore a sonda da 3,8 millimetri a 30 watt per 30 minuti, mantenendo la miscela tra i 4 e i 20 gradi Celsius per tutta la durata dell'operazione.Centrifugare la sospensione risultante di nanoparticelle liposomiali a 4.000 G per 10 minuti. Scartare il pellet e lavare i liposomi con PBS, utilizzando un filtro centrifugo con cutoff di 100 kDa a 4000 G. Trasferire i liposomi concentrati dalla camera superiore in un nuovo tubo da centrifuga. I liposomi possono essere conservati in PBS in frigorifero per un massimo di una settimana.Eseguire la diffusione dinamica della luce su una miscela di 50 microlitri della sospensione di liposomi purificati e 950 microlitri di PBS. Misurare le dimensioni delle particelle e determinare la distribuzione dimensionale. Per iniziare la procedura di marcatura radioattiva, trasferire in una provetta da 1,5 millilitro il volume necessario di liposomi purificati e PBS, al fine di ottenere due milligrammi di lipidi.Aggiungere un millicurie di ossalato di zirconio-89 per un volume finale di 100 microlitri e un pH compreso tra 6,9 e 7,1. Mescolare la miscela a 37 gradi Celsius per due ore. Successivamente, rimuovere lo zirconio-89 libero mediante filtrazione centrifuga utilizzando un filtro da 100 kilodalton a 4.000 G. Lavare il retentato con PBS sterile per tre volte a 4.000 G. Infine, diluire il retentato a circa tre microcurie per microlitro per l'iniezione.Utilizzare una cromatografia HPLC a esclusione dimensionale abbinata a un rivelatore di radiazioni per determinare la purezza radiochimica dei liposomi marcati con radionuclidi. Se la purezza radiochimica è inferiore al 95%, riformulare la dose. Utilizzare la diffusione dinamica della luce per confermare che i valori di dimensione e distribuzione delle particelle siano entrambi simili a quelli dei liposomi non marcati con radionuclidi.Per iniziare la procedura di imaging, iniettare circa 300 microcurie di liposomi marcati con radionuclidi nella vena della coda di un topo con melanoma immobilizzato. Due minuti dopo l'iniezione, utilizzare una siringa per insulina da 28 gauge per prelevare da 10 a 20 microlitri di sangue dalla vena della coda del topo. Trasferire il campione di sangue in un tubo per conteggio precedentemente pesato.Pesare il campione di sangue e misurare l'attività con un contatore a scintillazione gamma. Calcolare la concentrazione di radioattività come percentuale della dose iniettata per grammo. Quindici minuti dopo l'iniezione, raccogliere e misurare un altro campione di sangue nello stesso modo.Quindi, anestetizzare il topo somministrando 2% di isoflurano e ossigeno tramite un cono nasale. Raccogliere e misurare un terzo campione di sangue un'ora dopo l'iniezione. Successivamente, permettere al topo di riprendersi in una gabbia di recupero fino al ripristino della normale mobilità.Prelevare campioni aggiuntivi a quattro, otto, 24 e 48 ore dall'iniezione. Consentire al topo di riprendersi completamente tra un'iniezione e l'altra. Alloggiare il topo in una stanza dedicata agli animali ai quali sono stati somministrati materiali radioattivi.A 24 o 48 ore dall'iniezione dei liposomi, anestetizzare il topo con isoflurano al 2% e ossigeno. Posizionare il topo in posizione prona su un lettino per scanner microPET-CT per piccoli animali. Continuare a somministrare isoflurano al 2% e ossigeno tramite un cono nasale.Applicare un unguento veterinario sugli occhi del topo per evitarne l'essiccazione. Successivamente, spostare il lettino dello scanner all'interno dello strumento. Eseguire una scansione PET statica dell'intero corpo della durata di 15 minuti, con almeno 50 milioni di eventi coincidenti, con un'energia compresa tra 250 e 700 kiloelettronvolt e una finestra temporale di coincidenza di sei nanosecondi.Successivamente, eseguire una scansione TC di cinque minuti con 120 passi rotazionali su 220 gradi, con circa 145 millisecondi per fotogramma. Al termine della scansione, sacrificare immediatamente il topo mediante asfissia da anidride carbonica. Confermare il decesso pizzicando la zampa dell'animale e quindi eseguire la dislocazione cervicale.Perfondere i tessuti con PBS per rimuovere il sangue ed espiantare i campioni di tessuto pertinenti. Pesare i tessuti raccolti e misurarne l'attività. Calcolare l'accumulo di liposomi radiomarcati nel tessuto come percentuale della dose iniettata per grammo.Conservare il tessuto tumorale in PBS freddo. Eseguire la citometria a flusso ex vivo e l'immagine di immunofluorescenza sul tessuto tumorale raccolto per misurare l'accumulo rispetto alle popolazioni cellulari. L'immagine PET/TC di topi con tumore inoculati con nanoparticelle marcate con zirconio-89 ha mostrato un significativo accumulo di nanoparticelle nel tessuto tumorale 24 ore dopo l'iniezione.Si è determinato che l'emivita nel sangue delle nanoparticelle è di circa 10 ore. Le misurazioni es vivo della biodistribuzione a 24 ore dall'iniezione erano coerenti con le misurazioni in vivo mediante PET/TC. L'accumulo delle nanoparticelle è stato quindi analizzato a livello di singola cellula mediante tecniche di immunomarcatura.La citometria a flusso ha indicato che le nanoparticelle tendevano ad accumularsi preferenzialmente nei macrofagi assistiti dal tumore. L'immagine di immunofluorescenza dei campioni tumorali ha inoltre indicato un indirizzamento specifico delle cellule endoteliali da parte delle nanoparticelle. Questa tecnica può aiutare i ricercatori a identificare nanomedicinali promettenti per la traduzione clinica.Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in tre giorni se effettuata correttamente. Quando si effettua la marcatura radioattiva di nanomedicinali, è importante applicare elevati standard di controllo qualità. Seguendo questa procedura, altri nanomedicinali, come nanoemulsioni, nanoparticelle polimeriche, micelle, anticorpi e frammenti di anticorpi, possono essere marcati al fine di misurare la loro performance in vivo in topi con tumore.

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