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Misurazione del segnalatore del ricettore accoppiato con G-proteina mediante la legatura GTP con ...
Misurazione del segnalatore del ricettore accoppiato con G-proteina mediante la legatura GTP con ...
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Biochemistry
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JoVE Journal Biochemistry
Measuring G-protein-coupled Receptor Signaling via Radio-labeled GTP Binding

Misurazione del segnalatore del ricettore accoppiato con G-proteina mediante la legatura GTP con etichetta radio

Full Text
17,282 Views
10:13 min
June 9, 2017

DOI: 10.3791/55561-v

Chirag Vasavda*1, Nicholas W. Zaccor*1, Paul C. Scherer1, Charlotte J. Sumner1,2, Solomon H. Snyder1,3,4

1The Solomon H. Snyder Department of Neuroscience,Johns Hopkins University School of Medicine, 2Department of Neurology and neurosurgery,Johns Hopkins University School of Medicine, 3Departments of Pharmacology and Molecular Sciences,Johns Hopkins University School of Medicine, 4Department of Psychiatry and Behavioral Sciences,Johns Hopkins University School of Medicine

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Il legame di guanosina trifosfato (GTP) è uno degli eventi più iniziali nell'attivazione del GCR-Receptor (GPCR). Questo protocollo descrive come caratterizzare farmacologicamente interazioni specifiche GPCR-ligand monitorando il legame dell'analogo GTP radio-etichettato, [35S] guanosina-5'-O- (3-tio) trifosfato ([35S] GTPyS) Risposta a un ligando di interesse.

L'obiettivo generale di questa procedura è isolare le membrane cellulari che contengono recettori accoppiati a proteine G o GPCR e studiare la farmacologia dei GPCR utilizzando un saggio di legame funzionale del GTP. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo della biochimica riguardanti le proprietà farmacologiche di recettori accoppiati a proteine G stabiliti o orfani. I principali vantaggi sono che è semplice, rapido e misura l'evento più prossimale nella segnalazione dei recettori accoppiati a proteine G.

Innanzitutto, piastrate le cellule renali embrionali umane su una piastra di coltura tissutale di 10 centimetri in 10 millilitri di DMEM completo. Incubare le cellule a 37 gradi Celsius e al 5% di anidride carbonica, fino a raggiungere la confluenza dal 70% all'80%. Dopo l'incubazione, trasfettare le cellule con HAMOR1 utilizzando un reagente di trasfezione adatto secondo le linee guida del produttore.

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Biochimica Edizione 124 Frazionamento cellulare preparazione delle membrane GPCR agonista antagonista legame GTPγS farmacologia μ-opioid receptor

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