18 agosto 2017
Un protocollo per la quantificazione della proteina in fluidi biologici complessi utilizzando la tecnologia automatizzata immuno-MALDI (iMALDI) è presentato.
L'obiettivo generale di questo saggio immuno-MALDI automatizzato è quello di quantificare peptidi e proteine integre in fluidi biologici complessi in modo accurato e sensibile. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della proteomica quantitativa, come la quantificazione dei livelli proteici per scopi diagnostici o per il monitoraggio della risposta del paziente al trattamento. Il vantaggio principale di questo metodo è la sua capacità di quantificare i livelli proteici con elevata sensibilità e accuratezza a partire da campioni complessi.
Questa tecnica consente la diagnosi di malattie in una fase precoce poiché il passaggio di immunoarricchimento del saggio permette la quantificazione di biomarcatori proteici e peptidici scarsamente abbondanti. Sebbene questo metodo possa fornire informazioni sull'attività della renina plasmatica, può essere applicato anche ad altri studi legati a malattie, come la quantificazione di proteine associate al cancro per la prognosi, la diagnosi e la gestione del trattamento. Per iniziare questa procedura, scongelare i campioni di plasma umano in un bagno d'acqua a temperatura ambiente per cinque minuti.
Successivamente, posizionare i campioni sul ghiaccio fino a completo scongelamento. Poi, trasferire manualmente 200 microlitri di ciascun campione di plasma in pozzetti separati di una piastra deep well da 1,1 millilitro. Centrifugare la piastra per 10 minuti a due gradi Celsius e 3.000 rpm.
Quindi, utilizzare il Bravo per diluire in serie una soluzione standard di Ang-1 NAT a 500 femtomoli per microlitro per preparare sei soluzioni calibratrici con albumina di albume d'uovo di pollo. Dopo la centrifugazione, trasferire con una pipetta 200 microlitri di ciascun calibratore in una pozzetta e 125 microlitri di tampone di generazione nella piastra campione. Utilizzando un sistema automatizzato di gestione dei liquidi, mescolare 125 microlitri di surnatante plasmatico oppure 125 microlitri della soluzione di albumina di albume d'uovo di pollo con 25 microlitri di tampone di generazione dell'angiotensina I in una nuova piastra a pozzette profonde da 1,1 millilitro.
Ora, trasferire automaticamente le soluzioni in una piastra a 96 pozzetti con tre replicati per soluzione e 34 microlitri di soluzione per pozzetto. Successivamente, incubare la piastra a 37 gradi Celsius per tre ore. Per la coniugazione dell'anticorpo con le perle di proteina G, trasferire innanzitutto 78 microlitri di sospensione di perle precedentemente preparata in un tubo da 1,5 millilitri.
Lavare le perle sette volte con un millilitro di acetonitrile al 25% in PBSC e tre volte con un millilitro di PBSC, utilizzando un supporto magnetico per formare il pellet delle perle tra ogni lavaggio. Dopo il lavaggio, risospendere le perle in 110 microlitri di PBSC e aggiungere 110 microlitri di anticorpo anti-angiotensina I. Mescolare le perle e la soluzione mediante pipettaggio.
Quindi, incubare le perle a temperatura ambiente per un'ora, ruotando a otto giri al minuto. Successivamente, lavare le perle tre volte con un millilitro di PBSC. Poi, risospendere le perle in 1.100 microlitri di PBSC.
Ora, trasferire manualmente la soluzione di perle in una piastra a 96 pozzetti. Successivamente, utilizzare il Bravo per aliquotare le perle nella stessa piastra a 96 pozzetti. Dopo il periodo di generazione dell'angiotensina I di tre ore, posizionare la piastra di incubazione sul ghiaccio per 10 minuti per interrompere la generazione dell'angiotensina I. Diluire automaticamente una soluzione madre di peptidi standard con isotopi stabili di 100 volte con tampone PBS.
Inoltre, aliquotare automaticamente la diluizione del peptide standard con isotopo stabile in una piastra PCR a 96 pozzetti. Trasferire 10 microlitri della soluzione peptidica diluita in ciascun pozzetto della piastra di incubazione. Mescolare la soluzione peptidica diluita con i campioni di plasma o con la soluzione di albumina d'uovo di pollo.
Aggiungere automaticamente le soluzioni campione o standard alle soluzioni di perline nella piastra di incubazione e mescolare. Dopo un'ora di incubazione, lavare automaticamente le perline tre volte con soluzione di bicarbonato di ammonio 5 millimolare. Utilizzare un magnete per far aderire le perline sul fondo dopo ogni lavaggio.
Dopo l'ultimo lavaggio, aggiungere 10 microlitri di soluzione di bicarbonato di ammonio in ogni pozzetto per risospendere le perle. Trasferire automaticamente sette microlitri della sospensione di perle su una piastra target MALDI con una dimensione del punto di 2.600 micrometri. Una volta che le perle sono asciutte, aggiungere automaticamente due microlitri della soluzione di matrice HCCA precedentemente preparata dal pozzetto della matrice su ciascun punto campione della piastra target.
In seguito, analizzare i punti campione con uno strumento MALDI-TOF utilizzando la modalità riflettore positiva. Eseguire la calibrazione interna, la levigatura dei dati e la sottrazione della linea di base mediante il software specifico del produttore. La procedura iMALDI automatizzata per la misurazione dell'angiotensina I consente un'analisi ad alto rendimento di un elevato numero di campioni con un coefficiente di variazione intragiornaliero inferiore al 10%. Qui vengono mostrati spettri rappresentativi ottenuti misurando l'angiotensina I in campioni di plasma umano.
Qui è mostrata la correlazione tra i valori di PRA ottenuti da 188 campioni di pazienti mediante il saggio iMALDI automatizzato e i valori di PRA ottenuti utilizzando un metodo clinico basato su LC-MS/MS. I due metodi presentano un coefficiente di correlazione pari a 0,98, e la differenza tra le pendenze potrebbe essere attribuita all'uso di standard interni diversi o di anticorpi differenti. Qui vengono mostrati l'intervallo lineare del saggio e la precisione del saggio.
Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in circa cinque ore. Nel tentativo di eseguire questa procedura, ricordarsi di regolare correttamente la punta e la velocità di aspirazione e dispensazione del liquido. Dopo questa procedura, possono essere utilizzati metodi aggiuntivi per confermare l'aldosteronismo primario nei pazienti, tra cui il carico orale di sale o i test di infusione di soluzione fisiologica.
La tecnica automatizzata iMALDI consente lo screening quantitativo specifico e preciso ad alto rendimento di campioni biologici, inclusi campioni di pazienti, per la ricerca di proteine o peptidi associati a malattie. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come eseguire un saggio iMALDI automatizzato per la quantificazione di proteine e peptidi basata sulla spettrometria di massa. Non dimenticare che lavorare con campioni biologici, come il plasma umano, è estremamente pericoloso e le necessarie precauzioni di sicurezza devono essere sempre adottate durante l'esecuzione della procedura.
Visualizza la trascrizione completa e accedi a migliaia di video scientifici
In questo articolo viene presentato un protocollo per la quantificazione di peptidi e proteine integre in fluidi biologici complessi mediante l'utilizzo della tecnologia immuno-MALDI (iMALDI) automatizzata. Il metodo è stato ideato per fornire misurazioni accurate e sensibili, utili per la diagnostica e il monitoraggio del trattamento.
L'iMALDI (immuno-MALDI) automatizzato affronta la sfida critica della quantificazione di biomarcatori peptidici e proteici a bassa abbondanza in biofluidi complessi, consentendo un rilevamento sensibile nell'intervallo da ng/mL a pg/mL richiesto per applicazioni cliniche. Integrando l'arricchimento immuno con la spettrometria di massa MALDI-TOF e automatizzando completamente il processo, questo metodo fornisce una quantificazione ad alta produttività e riproducibile, con coefficiente di variazione intra-giornaliero inferiore al 10%, supportando misurazioni affidabili dei biomarcatori nei flussi di lavoro diagnostici e di monitoraggio terapeutico. Questa capacità aumenta l'affidabilità predittiva nella validazione degli obiettivi e nello sviluppo di saggi per indicazioni cardiovascolari, endocrine e oncologiche in cui analiti a bassa abbondanza guidano le decisioni cliniche.
Il metodo iMALDI si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione iniziale del target fino allo sviluppo del saggio e allo screening traslazionale, fornendo misurazioni quantitative di proteine e peptidi che guidano l'identificazione dei composti promettenti e il passaggio alla fase preclinica.